Journals / Türk Oftalmoloji Dergisi / 2008 / Cilt: 38 - Sayı: 4

In vivo and in vitro proof for intravitreal implanted bone marrow mesenchimal stem cell (MSC) mediated gene therapy in rabbit tapetoretinal degeneration model: Green fluorescent protein(GFP)

Tavşan tapetoretinal dejenerasyon modelinde intravitreal uygulanan kemik iliği mezenkimal kök hücre aracılı gen tedavisi için canlı ve cansız ortamda kanıt: Yeşil Flöresan Protein (YFP)

Pages
320–329
Publication Date
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

This method may be developed as a new made of gene therapy in the retinal degeneration patients who has the advantage of using otolog MSCs.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:PURPOSE: We have shown the efficacy of intravitreal use of bone marrow mesenchimal stem cell (MSC) in rabbit tapetoretinal degeneration model.
📊
Key Findings & Data:In cultere environment, plasmid mediated green fluorescent protein (GFP) transmission to these cells was performed two times in 48 hours.
💡
Conclusion & Impact:This method may be developed as a new made of gene therapy in the retinal degeneration patients who has the advantage of using otolog MSCs.
🔬Design:Modeling & Simulation
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

PURPOSE: We have shown the efficacy of intravitreal use of bone marrow mesenchimal stem cell (MSC) in rabbit tapetoretinal degeneration model. In this study, the feasibility of MSC mediated gene therapy is investigated.MATERİAL-METHODS: In GATA Research Center, MSCs were differantiated in vitro from bone marrow which was obtained from proximal femur of a New Zelland albino rabbit, and the cells from the forth passage were used. In cultere environment, plasmid mediated green fluorescent protein (GFP) transmission to these cells was performed two times in 48 hours. Intravenous 40 mg/kg NAIO(3) injection was done to 3 adult pigmented rabbits.(study group). Afterwards 2.5x10(5) cell/0,1 ml to right eyes and 0,1 ml balanced salt solution to left eyes intravitrealy, were performed in the study and the control eyes (1 pigmented rabbit, two eyes). Clinical, angiographic (FA-HRA 2), ERG and hystopathological evaluations were performed during the observation period (1., 5., 10., 45th day).FINDINGS: On first day, abnormal ERG b-wave amplitudes and cluster of GFP loading cells in the vitreous were observed. On the fifth day, retinal edema, diminished b-wave amplitudes and hypofluorescent and hyperfluorescent areas on FA were noted. Immunofluorescence examination of the first rabbit showed GFP loading cells in the retinal layers. In vivo and ın vitro assays done on the 10th day showed GFP loading cells in the vitreous and in the retina which had angiographically increased hypo and hyperfluorescent spots. Our controlled observation showed that these cells were still in the retinal layers on the 45th day.RESULTS: In this acute tapetoretinal degeneration model intravitreally injected allogenic stem cells transfected by plasmid enabled GFP transmission to the damaged retina. This method may be developed as a new made of gene therapy in the retinal degeneration patients who has the advantage of using otolog MSCs.

Özet

AMAÇ: Tavşanlarda tapetoretinal dejenerasyon modelinde kemik iliği mezenkimal kök hücre (MKH) intravitreal uygulamasının etkinliğini göstermiştik (TOD UOK, 2006). Bu çalışmamızda MKH aracılı gen tedavisinin uygulanabilirliği araştırılmıştır. YÖNTEM-GEREÇLER: GATA Araştırma Merkezi’nde erişkin Yeni Zelanda albino tavşanın femur proksimali kemik iliğinden alınan MKH'ler vücut dışında farklılaştırıldı ve 4. pasajdaki hücreler kullanıldı. Kültür ortamında bu hücrelere plazmid aracılı olarak 48 saat içinde 2 defa Yeşil Flöresan Protein (YFP) aktarımı sağlandı. Erişkin, pigmentli 3 tavşana intravenöz 40 mg/kg sodyum iyodat-NaIO(3)- enjeksiyonu uygulandı (çalışma grubu). Hemen sonrasında bu tavşanlar yanısıra bir erişkin pigmentli tavşanın (kontrol) sağ gözlerine 2.5X10(5) hücre/0.1ml, sol gözlerine dengeli tuz solusyonu 0.1ml intravitreal uygulandı. 1, 5, 10 ve 45. günlerde enükleasyon uygulanan tavşanlarda, izlem sürecinde, klinik, Fundus Floresein Anjiyografi (FFA, HRA-2®), Elektroretinografi (ERG, Roland®) ve histopatoloji (immünflöresan) incelemeleri yapıldı. BULGULAR: Birinci günde çalışma grubundaki tavşanlarda anormal ERG b dalga değerleri ve HRA(Heidelberg Retinal Anjiografi)'da vitreusta YFP’li hücre kümeleri gözlendi. Beşinci günde retinada ödem, ERG’de b dalgasında silinme ve FFA’da lokalize hiper ve hipoflöresan odaklar saptandı. Birinci tavşanda uygulanan enükleasyon sonrası immünflöresan yöntemi ile retinada YFP taşıyan hücreler gösterildi. Onuncu günde FFA’da lokalize hiperflöresan ve hipoflöresan odaklarda artış, ERG'de silinme izlenen bir tavşanda canlı ve cansız ortamda uygulanan yöntemler (HRA ve immünflöresan) ile vitreusta ve retinada YFP’li hücrelerin varlığı gösterildi. Kırkbeşinci gündeki kontrollü gözlemlerde bu hücrelerin retina katmanlarındaki varlığının devam ettiği saptandı. SONUÇLAR: Akut tapetoretinal dejenerasyon modelinde, plazmid aracılığıyla transfekte edilen ve intravitreal uygulanan allojenik kök hücrelerden retinaya YFP aktarımı sağlanabilmektedir. Bu yöntem, otolog MKH’lerin kullanılma avantajı bulunan retinal dejenerasyon olguları için yeni bir gen tedavisi yaklaşımı olarak geliştirilebilir.

🔖

Cite This Article

ÖZGE, G., DEMİRİZ, M., AKDAĞ, E., GÜNGÖR, R., AVCU, F., URAL, A. U., SOBACI, G. (2022). In vivo and in vitro proof for intravitreal implanted bone marrow mesenchimal stem cell (MSC) mediated gene therapy in rabbit tapetoretinal degeneration model: Green fluorescent protein(GFP). Türk Oftalmoloji Dergisi, Cilt: 38 - Sayı: 4, 320–329. https://ajindex.com/articles/638585

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (15)

  1. Lakshmipathy U, Pelacho B, Sudo K, Linehan JL, Cou- couvanis E, Kaufman DS, Verfaillie CM, Efficient trans- fection of embryonic and adult stem cells. Stem Cells. 2004;22(4):531-43
  2. Okazaki A, Jo J, Tabata Y. A reverse transfection techno- logy to genetically engineer adult stem cells. Tissue Eng. 2007 Feb;13(2):245-51
  3. Wang F, Xia X, Hu H, Li L, Tian Y, Chen X, Huang Q. Liposome-mediated gene transfer into retina. Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 2002 Sep;38(9):520-2
  4. Brazelton TR, Rossi FM, Keshet GI, Blau HM. From marrow to brain: expression of neuronal phenotypes in adult mice. Science 2000; 290:1775-1779
  5. Le Blanc K, Ringden O. Mesenchymal stem cells: pro- perties and role in clinical bone marrow transplantation. Curr Opin Immunol. 2006; 18:586-591
  6. Li Y, Reca RG, Atmaca-Sonmez P, Ratajczak MZ, Ild- stad ST, Kaplan HJ, Enzmann V: Retinal pigment epithe- lium damage enhances expression of chemoattractants and migration of bone marrow-derived stem cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006 Apr;47(4):1646-52
  7. Özge G, Sobacı G, Avcu F, Safalı M, Pamuk K, Ural AU. Tavflan Tapetor etinal Dejenerasyon Modelinde Kemik iligi Mezankimal Kök Hücre Intravitreal implantasyonu- nun Uygulanabilirliginin Araştırılması. TOD 40. Ulusal Oftalmoloji Kongresi Program ve Özet Kitabı (Antalya). sf:145; 2006
  8. Baran Y, Ural AU, Avc› F, Sarper M, Elçi P, Pekel A: Mezenkimal Kök Hücrelerin invivo takibinde yeflil flore- san protein aktar›lmas›n›n optimizasyonu
  9. Ulusal He- matoloji Kongresi, 2007, Ref No:107
  10. Zhang J, Shan Q, Ma P, Jiang YM, Chen P, Wen JX, Zhou Y, Qian HW, Pei XT. Observation of bone marrow mesenchymal stem cells after subretinally transplanted into laser-injured rat retina. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2003 Nov 25;83(22):1993-8. Chinese
  11. Hara A, Niwa M, Kunisada T, Y oshimura N, Katayama M, Kozawa O et al. Embriyonic stem cells are capable of generating a neuronal network in adult mouse retina. Bra- in Res 2004; 999:216-221
  12. Young MJ: Stem cells in the mammalian eye: a tool for retinal repair. APMIS. 2005 Nov-Dec;113(11-12):845-57
  13. Koch CA, Jordan CE, Platt JL. Complement-Dependent Control of Teratoma Formation by Embryonic Stem Cells. J Immunol 2006; 177: 4803-4809
  14. Kociok N. Can the injection of the patient's own bone marrow-derived stem cells preserve cone vision in retini- tis pigmentosa and other diseases of the eye? Graefe's Arch Clin Exp Ophthalmol. 2005; 243:187-188
  15. Tomita M, Adachi Y, Yamada H, Takabashi K, Kluchi K,