KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2021 / Cilt: 14 - Sayı: 2

Anadolu Mandalarında Vajinal Bakteriyel ve Fungal Flora

Nurdan KARACAN SEVER
Mehmet Ferit ÖZMEN
Sayfa
104–106
Yayın Tarihi
2022-10-12
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak S. haemolyticus, E.casseliflavus, E. faecium ve E. coli’ nin Anadolu Mandası vajinal mikroflorasının bir parçası olabileceği düşünüldü.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Vajinal mikrobiyal flora, genital sistemi infeksiyonlara karşı korumada önemli bir rol oynamaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Eğitim Araştırma ve Uygulama Çiftliği’ndeki daha önce çiftleşmemiş ve klinik olarak sağlıklı 14 Anadolu Mandası’ ndan vajinal svap örnekleri toplandı.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak S. haemolyticus, E.casseliflavus, E. faecium ve E. coli’ nin Anadolu Mandası vajinal mikroflorasının bir parçası olabileceği düşünüldü.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Anadolu Mandası · vajinal bakteriyel flora · vajinal fungal flora

Özet

Vajinal mikrobiyal flora, genital sistemi infeksiyonlara karşı korumada önemli bir rol oynamaktadır. Bu çalışmada Anadolu Manda’ larının vajinal bakteriyel ve fungal florası araştırıldı. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Eğitim Araştırma ve Uygulama Çiftliği’ndeki daha önce çiftleşmemiş ve klinik olarak sağlıklı 14 Anadolu Mandası’ ndan vajinal svap örnekleri toplandı. Bakteriyel ve fungal etkenlerin izolasyon ve identifikasyonları standart yöntemler kullanılarak gerçekleştirildi. Staphylococcus spp., Enterococcus spp., Escherichia spp. ve Citrobacter spp. cinslerine ait 59 suş izole edildi. En yaygın tür S. haemolyticus (%100)’ tu ve bunu E. casseliflavus (%92.86), E. faecium ve E. coli (%85.71), S. chromogenes (%57.14) ve C. farmeri (%14.29) izledi. Örneklerden fungal etken izole edilmedi. Sonuç olarak S. haemolyticus, E.casseliflavus, E. faecium ve E. coli’ nin Anadolu Mandası vajinal mikroflorasının bir parçası olabileceği düşünüldü.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

SEVER, N. K., ÖZMEN, M. F. (2022). Anadolu Mandalarında Vajinal Bakteriyel ve Fungal Flora. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 14 - Sayı: 2, 104–106. https://ajindex.com/articles/488148

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (17)

  1. Yilmaz O, Ertugrul M, Wilson RT. (2012). Domestic livestock resources of Turkey. Trop Anm Health Pro. 44(4): 707-714
  2. Warriach HM, McGill DM, Bush RD, Wynn PC, Chohan FR. (2015). A review of recent developments in buffalo reproduction. Asian Australas J Anim Sci. 28: 451-455
  3. FAO (2014) FAOSTAT Database. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, Italy. Erişim: http://www.fao.org/3/a-i3590e.pdf. Erisim tarihi: 01 Temmuz 2021
  4. Sariozkan S. (2011). Türkiye’ de manda yetiştiriciliğinin önemi. Kafkas Univ Vet Fak Derg. 17(1): 163-166
  5. Purohit GN. (2008). Recent development of in the diagnosis and therapy of repeat breeding cows and buffaloes. CAB Rev Perspect Agricul Vet Sci Nutr Natur Res. 3(62): 1-33
  6. Barile VL. (2005). Improving reproductive efficiency in female buffaloes. Livest Prod Sci. 92: 183-194
  7. Perera BM. (2008). Reproduction in domestic buffalo. Reprod Domest Anim. 43: 200-206
  8. Saraswat CS, Purohit GN. (2016). Repeat breeding: Incidence, risk factors and diagnosis in buffaloes. Asian Pac J Reprod. 5(2): 87-95
  9. Ali A, Abdel-Razek AK, Derar R, Abdel-Rheem HA, Shehata SH. (2009). Forms of reproductive disorders in cattle and buffaloes in middle Egypt. Reprod Domest Anim. 44(4): 580-586
  10. Srinivasan M, Adnane M, Archunan G. (2021). Significance of cervico-vaginal microbes in bovine reproduction and pheromone production–A hypothetical review. Res Vet Sci. 135: 66-71
  11. Azawi OI. (2010). Uterine infection in buffalo cows: a review. Buffalo Bull. 29(3): 54-171
  12. Appiah MO, Wang J, Lu W. (2020). Microflora in the reproductive tract of cattle: a review. Agriculture. 10(6): 232
  13. Markey B, Leonard F, Archambault M, Cullinane A, Maguire D. (2013). Section 3: Mycology. In: Clinical Veterinary Microbiology. Edwards R, Hewat C (editors). 2th. ed. Missouri, USA: Mosby Elsevier; 2013. pp. 457-521
  14. Sheldon IM, Dobson H. (2004). Postpartum uterine health in cattle. Anim Reprod Sci. 82: 295-306
  15. Kumar S, Sharma U, Malik MA, Kumar S. (2019). Vaginal bacterial profile in buffaloes following treatment with progesterone insert. J Anim Res. 9(2): 359-361
  16. Wakayo BU, Brar PS, Prabhakar S et al. (2016). Impact of Vaginal-microflora at Artificial Insemination on Pregnancy Outcomes in Murrah Buffalo. Indian Vet. J. 93(03): 76-78
  17. Ahmed WM, El-Jakee JA, El-Seedy FR, El-Ekhnawy KI, Abd El-Moez SI. (2007). Vaginal bacterial profile of buffalo-cows in relation to ovarian activity. Glob Vet. 1(1): 01-08. 18.