KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2026 / Cilt: 19 Sayı: 1

Şırnak İlinde Koyun ve Keçilerde Chlamydia abortus'un Real-Time PCR ile Araştırılması

Investigation of Chlamydia abortus in Sheep and Goats in Şırnak Province Using Real-Time PCR

Serdar Çavlı(HARRAN ÜNİVERSİTESİ, VETERİNER FAKÜLTESİ, KLİNİK ÖNCESİ BİLİMLERİ BÖLÜMÜ, VETERİNERLİK MİKROBİYOLOJİSİ ANABİLİM DALI)0009-0006-6870-3724
Osman Yaşar Tel(HARRAN ÜNİVERSİTESİ, VETERİNER FAKÜLTESİ)0000-0001-7848-3899
Sayfa
116–121
Yayın Tarihi
2026-06-30
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak, Şırnak ilinde yürütülen bu çalışmada, koyunlarda %7.8 (6/77) oranında C. abortus pozitifliği belirlenirken, keçilerde (%0.0; 0/23) etkene rastlanmamıştır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışma, Şırnak ilinde koyun ve keçilerde Chlamydia abortus (C. abortus), enfeksiyonunun prevalansını ve epidemiyolojisini belirlemek amacıyla gerçekleştirilmiştir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışma kapsamında, Şırnak ilinde farklı sürülerden toplanan toplam 100 adet fötal mide içeriği örneği (77 koyun, 23 keçi) C. abortus geninin tespiti için real-time PCR yöntemi kullanıldı.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak, Şırnak ilinde yürütülen bu çalışmada, koyunlarda %7.8 (6/77) oranında C. abortus pozitifliği belirlenirken, keçilerde (%0.0; 0/23) etkene rastlanmamıştır.
🔬Tür:Literatür & Derleme Çalışması
📍Kapsam:100 adet
⚙️Değişkenler:Chlamydia abortus · keçi · koyun

Özet

Bu çalışma, Şırnak ilinde koyun ve keçilerde Chlamydia abortus (C. abortus), enfeksiyonunun prevalansını ve epidemiyolojisini belirlemek amacıyla gerçekleştirilmiştir. C. abortus, başta koyun ve keçiler olmak üzere küçük ruminantlarda abortlara neden olarak ekonomik kayıplara yol açan zoonotik potansiyeli yüksek bir bakteriyel patojendir. Bu çalışma kapsamında, Şırnak ilinde farklı sürülerden toplanan toplam 100 adet fötal mide içeriği örneği (77 koyun, 23 keçi) C. abortus geninin tespiti için real-time PCR yöntemi kullanıldı. Real-time PCR analizleri sonucunda koyun numunelerinin %7.8 (6/77)C. abortus tespit edilirken, keçilerde herhangi bir pozitiflik saptanmamıştır. Ayrıca, çalışma kapsamında yer alan 9 aşılı koyunun hiçbirinde C. abortus tespit edilmemiştir. Sonuç olarak, Şırnak ilinde yürütülen bu çalışmada, koyunlarda %7.8 (6/77) oranında C. abortus pozitifliği belirlenirken, keçilerde (%0.0; 0/23) etkene rastlanmamıştır. Saptanan tüm pozitif vakaların göçer sürülerden köken alması, bölgedeki hayvan hareketliliğinin enfeksiyonun yayılımında potansiyel bir risk faktörü olabileceğini düşündürmüştür. Ayrıca, çalışmaya dahil edilen 9 aşılı hayvanın tamamında negatif sonuç elde edilmesi, aşılama programlarının etkinliği konusunda literatürle uyumlu ön veriler sağlamaktadır. Real-time PCR yöntemiyle elde edilen bu veriler, Şırnak ilindeki C. abortus varlığını moleküler düzeyde kanıtlayarak hem bölgesel tanı stratejilerinin optimize edilmesine hem de ulusal düzeyde koruyucu veteriner halk sağlığı politikalarının geliştirilmesine temel teşkil edecek niteliktedir

Abstract

This study was conducted to determine the prevalence and epidemiology of Chlamydia abortus (C. abortus) infection in sheep and goats in Şırnak province. C. abortus is a bacterial pathogen with high zoonotic potential that causes abortions in small ruminants, primarily sheep and goats, leading to economic losses. In this study, a total of 100 fetal stomach contents samples (77 sheep, 23 goats) collected from different herds in Şırnak province were analyzed using real-time PCR to detect the C. abortus gene. Real-time PCR analysis revealed C. abortus in 7.8% (6/77) of the sheep samples, while no positivity was found in the goats. Furthermore, none of the 9 vaccinated sheep included in the study showed C. abortus. In conclusion, this study conducted in Şırnak province revealed a 7.8% (6/77) positivity rate for C. abortus in sheep, while no pathogen was found in goats (0.0%; 0/23). The fact that all positive cases originated from nomadic herds suggests that animal mobility in the region may be a potential risk factor for the spread of infection. Furthermore, the negative results obtained in all 9 vaccinated animals included in the study provide preliminary data consistent with the literature regarding the effectiveness of vaccination programs. These data, obtained using the real-time PCR method, prove the presence of C. abortus in Şırnak province at the molecular level, and are of a nature that will serve as a basis for both optimizing regional diagnostic strategies and developing national preventive veterinary public health policies.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Çavlı, S., Tel, O. Y. (2026). Şırnak İlinde Koyun ve Keçilerde Chlamydia abortus'un Real-Time PCR ile Araştırılması. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 19 Sayı: 1, 116–121. https://doi.org/10.47027/duvetfd.1794615

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (34)

  1. Küçükayan U, Dakman A, Ülker U (2016). Burdur İlindeki koyunlarda Chlamydophila abortus araştırması. MAE Vet. Fac. J., 1(2):17-20.
  2. Gokce H, Kacar I, Genc O, Sozmen M (2007). Seroprevalence of Chlamydophila abortus in aborting ewes and dairy cattle in the northeast part of Turkey. Bov.Vet. Inst. Pulawy,, 51:9-13.
  3. Bassan Y, Ayalon N (1971). Abortion in dairy cows inoculated with epizootic bovine abortion agent (Chlamydia). Am. J. of Vet. Res., 32: 703-710.
  4. Esmaeili H, Bolourchi M, Mokhber D, M R (2015). Seroprevalence of Chlamydia abortus infection in sheep and goats in Iran. Isr. J. of Vet. Med., 9(2):73-77.
  5. Livingstone M, Longbottom D (2006). Serological diagnosis of ovine chlamydiosis. Small Rumin. Res., 62(1):211-216.
  6. Laroucau K (2001). Development of a Real-Time PCR assay for the detection of Chlamydia abortus. Vet. Microbiol., 78(3):457-466
  7. Pantchev A, Sting R, Bauerfeind R, Tyczka J, Sachse K (2010). Detection of all Chlamydophila and Chlamydia spp. of veterinary interest using species- specific real-time PCR assays. Comp. Immunol. Microbiol. and Infect. Dis., 33(6):473-484.
  8. Borel N, Kempf E, Hotzel H (2008). Direct identification of chlamydiae from clinical samples using a DNA microarray assay: A validation study. Mol. and Cell. Probes, 22(1):55-64.
  9. Malal M, Turkyilmaz S. (2021). Identification and genotyping of Chlamydia abortus with MLVA from ruminant abortions in the Marmara region of Turkey. The Thai Journal of Veterinary Medicine, 51(1):169-175.
  10. Jonker A, Michel A. L (2023). Optimization and application of real-time qPCR assays in detection and identification of chlamydiales in products of domestic ruminant abortion. Pathogens, 12(2):290.
  11. Caporaso J. G, Ackermann G, Apprill A, ve ark. (2018). EMP 16S Illumina amplicon protocol. Erişim: https://www.protocols.io/view/emp-16s-illumina-amplicon-protocol-kqdg3dzzl25z/v1. Erişim tarihi: 01.10.2025
  12. Zeeshan M, Ali S, Ahmed I ve ark. (2023). Sero-epidemiological study of zoonotic bacterial abortifacient agents in small ruminants. Frontiers in Veterinary Science, 10: 1195274.
  13. Nogarol C, Marchino M, Scala S ve ark. (2024). Seroprevalence and risk factors associated with Chlamydia abortus infection in sheep and goats in North-Western Italy. Animals, 14(2):291.
  14. Esmaeili H, Hamedi M, Madani SA, Barin A, Haji Agha Khiyabani F. (2024). Diagnosis of Chlamydia abortus by isolation in cell culture and real time PCR in aborted sheep and goats. Journal of Medical Bacteriology, 12(4):9-16.
  15. Schnee C, Laroucau K, Livingstone M, ve ark (2025). Cross-European laboratory evaluation of commercial and in- house real-time PCR assays for the detection of Chlamydia abortus in small ruminants. Res. in Vet. Sci., 188:105613.
  16. Hazlett M, McDowall R, DeLay J ve ark (2013). A prospective study of sheep and goat abortion using real-time polymerase chain reaction and cut point estimation shows Coxiella burnetii and Chlamydophila abortus infection concurrently with other major pathogens. J. of Vet. Diagn. Invest., 25(3):359-368.
  17. Longbottom D, Coulter J. (2003). Animal chlamydioses and zoonotic implications. J. of Comp. Pathol., 128(4):217-244.
  18. Nietfeld J (2001). Chlamydial infections in small ruminants. Vet. Clin. of North Am.: Food Anim. Pract., 17(2):301–314.
  19. Sachse K, Hotzel H, Slickers P, Ellinger T, Ehricht R. (2009). DNA microarray-based detection and identification of Chlamydia and Chlamydophila spp. Molecular and Cellular Probes, 23(4), 205–213.
  20. Gürsoy H, Aydın L, Taşkın V (2015). Güneydoğu Anadolu Bölgesi koyunlarında Chlamydophila abortus enfeksiyonunun PCR ile teşhisi. Fırat Univ. Sağ. Bil. Vet. Derg., 29(2):113–117.
  21. Kalender H, Kılıç A, Eröksüz H, Muz A, Kılınç Ü, Taşdemir B (2013). Identification of Chlamydophila abortus infection in aborting ewes and goats in Eastern Turkey. Revue Med. Vet., 164(6):295–301.
  22. Özer Y (2024). Hakkâri ili ve ilçelerinde abort yapmış koyunlardan Chlamydia abortus etkeninin Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) ile araştırılması. Yüksek lisans tezi, Van Yüzüncü Yıl Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Van.
  23. Kaya H, Karakuş A, Doğan B (2020). Kayseri ve Sivas yöresindeki koyunlarda Chlamydophila abortus’un seroprevalansı. Etlik Vet. Mikrobiyol. Derg., 31(1):7–13.
  24. Köksal A (2023). Chlamydia abortus seroprevalansının ELISA yöntemi ile araştırılması. Yüksek Lisans Tezi. Selçuk Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Konya.
  25. O’Neill DG, Baral L, Church DB, Brodbelt DC, Packer RMA. (2018). demography and disorders of the French bulldog population under primary veterinary care in the UK in 2013, Canine Genet Epidemiol, 5(1):3. doi:10.1186/s40575-018-0057-9.
  26. Tuzcu M, Akçakavak G. (2023). Veteriner Patolojide Güncel Değerlendirmeler, Modern Analiz, Bulgu ve Araştırmalar. Livre de Lyon, Lyon, Fransa.
  27. Aslan O, Demir Ş, Yavru S (2022). İzmir İlinde Koyunlarda Chlamydia abortus Seroprevalansı. Ege Univ.Ziraat Fak. Derg., 59(2):245-252.
  28. Demirci M, Kırkan Ş, Parın U (2021). Ankara İlinde Koyunlarda Chlamydophila abortus'un Serolojik Olarak Araştırılması. Etlik Vet. Mikrobiyol. Derg., 32(2):78-85.
  29. Çelik T, Arslan M, Korkmaz E (2023). Karadeniz Bölgesinde Koyunlarda Chlamydia abortus Seroprevalansı. Ondokuz Mayıs Univ. Vet. Fak. Derg., 40(1):12-18.
  30. Aydın N, Babür C, Kılıç, S (2021). Ege Bölgesinde Koyun ve Keçilerde Chlamydophila abortus Seropozitifliği. Türkiye Parazitol. Derg., 45(3):189-195.
  31. Jonker A, Michel L (2023). Optimization and application of real-time qPCR Assays in detection and identification of chlamydiales in products of domestic ruminant abortion. Pathogens, 12(2):290.
  32. Deniz İ (2022). Sığır, koyun ve keçi abortuslarında Chlamydia spp. üzerine patolojik ve moleküler araştırmalar. Doktora Tezi. Selçuk Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Konya.
  33. Sağlam G (2021). Koyunlarda Chlamydia abortus’a karşı gelişen serolojik yanıtın değerlendirilmesinde bir elisa protipinin geliştirilmesi. Yüksek Lisans Tezi. Harran Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Şanlıurfa.
  34. Gokce H, Kacar I, Genc O, Sozmen M (2007). Seroprevalence of Chlamydophila abortus in aborting ewes and dairy cattle in the northeast part of Turkey. Bov.Vet. Inst. Pulawy,, 51:9-13.