Dergiler / Black Sea Journal of Agriculture / 2018 / Cilt: 1 - Sayı: 3

ISI ŞOK PROTEİNLERİ VE İN VİTRO EMBRİYO

Heat Shock Proteins and In Vitro Embryo

Sayfa
89–93
Yayın Tarihi
2018-07-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Ayrıca bu proteinlerin in vitro embriyo üretim etkinliğine olan muhtemel etkileri de tartışılmıştır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Uzun yıllardır çeşitli şekillerde in vitro embriyo üretimi yapılmaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Stres proteinleri, organizmanın maruz kaldığı kültür medyumu bileşenleri, serum (FSC, ECS), UV ışınları, toksin, arsenik, pH değişimi, iskemia, oksidatif fosforilasyon, sıcak-soğuk ve enfeksiyon durumunda yanıt olarak üretimi artan ve büyüklükleri 100-8 kDA arasında değişen proteinlerdir.
💡
Sonuç & Katkı:Ayrıca bu proteinlerin in vitro embriyo üretim etkinliğine olan muhtemel etkileri de tartışılmıştır.
🔬Tür:Literatür & Derleme Çalışması
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Embriyo · Kültür medyumları · Isı şok proteinleri

Özet

Uzun yıllardır çeşitli şekillerde in vitro embriyo üretimi yapılmaktadır. Bu alanda önemli bir mesafe alınmasına rağmen istenilen seviyede in vitro embriyo üretiminin gerçekleştirilememesinin nedeni in vitro kültür ortamların da in vivo şartların tam olarak taklit edilememesidir. İn vitro kültür ortamlarında bir takım biyolojik, çevresel bileşen ve ortam sıcaklığında embriyonun strese maruz kalıp tepki olarak stres proteinleri üretmektedir. Stres proteinleri, organizmanın maruz kaldığı kültür medyumu bileşenleri, serum (FSC, ECS), UV ışınları, toksin, arsenik, pH değişimi, iskemia, oksidatif fosforilasyon, sıcak-soğuk ve enfeksiyon durumunda yanıt olarak üretimi artan ve büyüklükleri 100-8 kDA arasında değişen proteinlerdir. Bu proteinlerden HSP70, yüksek oranda korunmuş olan kompakt amino termal bölgesi ve zayıf ATPaz aktivitesi gibi iki büyük etki alanına sahiptir ve ısı şok faktörlerin (HSF) aktivitesini düzenler. İn vitro kültürde embriyo gelişimi çevresel streslerden etkilenmekte ve embriyo gelişim sürecinde HSP70’in apoptoziz de rol aldığına ilişkin deliller bulunmaktadır. Kültür ortamında serum varlığının embriyo implantasyon oranını düşürebileceği düşünülmektedir. Bu derlemede, in vitro oosit olgunlaştırması ve embriyo üretiminde strese bağlı olarak üretilen ısı şok proteinleri ve bunların çeşitleri açıklanmaya çalışılmıştır. Ayrıca bu proteinlerin in vitro embriyo üretim etkinliğine olan muhtemel etkileri de tartışılmıştır.

Abstract

For a long period of time significant progress attained in in vitro embryo production. Despite desired levels has not been reached the main reason are inability to imitate in vivo conditions of in vitro culture medium precisely and embryo be exposed to stress factors such as environmental conditions, temperature and biological components as a reaction produce stress proteins. Stress proteins which are increased in the organism during culture medium components, serums (FCS, ECS), UV rays, toxin, arsenic, pH, ischemia, oxidative phosphorylation, cold and hot conditions and during infections and vary in size between 100 to 8 kDA. HSP70 has two main domains, compact amino terminal site and low ATPase activity which been highly conserved and it regulate heat shock activity. During in vitro embryo production, the effect of environmental stress and embryo development processes in relation with the roll of HSP70 is very important. Presence of serum in the culture medium thought that it decreased the embryo development rate. In this review, we attempted to explain heat shock proteins and their varieties produced in vitro by oocyte maturation and embryo production. Furthermore, the possible effects of these proteins on in vitro embryo production activity have been discussed.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BENER, L., YAŞAR, R., KURAN, M. (2018). ISI ŞOK PROTEİNLERİ VE İN VİTRO EMBRİYO. Black Sea Journal of Agriculture, Cilt: 1 - Sayı: 3, 89–93. https://ajindex.com/articles/478457

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Al-Whaibi MH. 2011. Plant heat-shock proteins: a mini review. J King Saud Univ Sci, 23(2): 139-150.
  2. Aşkar TK, Ergün N, Turunç V. 2007. Isı şok proteinler ve fizyolojik rolleri. Kafkas Üniv Vet Fak Derg, 13 (1): 109-114. Aufricht C. 2005. Heat-shock protein 70: Molecular supertool? Pediat Nephrol, 20(6): 707-713.
  3. Beckmann RP, Mizzen L, Welch WJ. 1990. Interaction of Hsp 70 with newly synthesized proteins: Implications for protein folding and assembly. Sci, 248(4957): 850-854.
  4. Carcy B, Précigout E, Valentin A, Gorenflot A, Reese R T ve Schrével J. 1991. Heat shock response of Babesia divergens and identification of the hsp 70 as an immunodominant early antigen during ox, gerbil and human babesiosis. Biol Cell, 72(1‐2): 93-102.
  5. Chiang HL, Plant C, Dice J. 1989. A role for a 70-kilodalton heat shock protein in lysosomal degradation of intracellular proteins. Sci, 246(4928): 382-385.
  6. Choi YK, Jo PG, Choi CY. 2008. Cadmium affects the expression of heat shock protein 90 and metallothionein mRNA in the Pacific oyster, Crassostrea gigas. Compar Biochem Physiol Part C: Toxicol Pharmacol, 147(3): 286-292.
  7. Ciocca DR, Calderwood SK. 2005. Heat shock proteins in cancer: diagnostic, prognostic, predictive, and treatment implications. Cell Stress Chap, 10(2): 86-103.
  8. Dobson CM, Ellis RJ. 1998. Protein folding and misfolding inside and outside the cell. The EMBO J, 17(18): 5251-5254.
  9. Edwards JL, Hansen PJ. 1997. Differential responses of bovine oocytes and preimplantation embryos to heat shock. Molec Reprod Develop, 46(2): 138-145.
  10. Ferns G, Shams S, Shafi S. 2006. Heat shock protein 27: its potential role in vascular disease. Inter J Exper Pathol, 87(4): 253-274.
  11. Fields PI, Swanson RV, Haidaris CG, Heffron F. 1986. Mutants of Salmonella typhimurium that cannot survive within the macrophage are avirulent. Proceed National Acad Sci, 83(14): 5189-5193. Jaattela M. 1999. Heat shock proteins as cellular lifeguards. Annals Med, 31(4): 261-271.
  12. Kaneda M, Okano M, Hata K, Sado T, Tsujimoto N, Li E, Sasaki H. 2004. Essential role for de novo DNA methyltransferase Dnmt3a in paternal and maternal imprinting. Nature, 429(6994): 900. Lannett Edwards J, Hansen PJ. 1996. Elevated temperature increases heat shock protein 70 synthesis in bovine two-cell embryos and compromises function of maturing oocytes. Biol Reprod, 55(2): 340-346.
  13. Lyons C, Dowling V, Tedengren M, Gardeström J, Hartl MG, O'Brien N, van Pelt FN, O'Halloran J, Sheehan D. 2003. Variability of heat shock proteins and gluta