Dergiler / Bahçe / 2018 / Cilt: 47 - Sayı: Özel Sayı 1

ASMADA (Vitis vinifera L.) EKSPLANT YÜZEY STERİLİZASYON PROTOKOLÜNÜN OLUŞTURULMASI

ESTABLISHMENT OF EXPLANT SURFACE STERILIZATION PROTOCOL IN GRAPES (Vitis vinifera L.)

Dergi
Bahçe
Sayfa
195–200
Yayın Tarihi
2022-10-10
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Eksplant materyalleri, sürgünrejenerasyon çalışmaları için 1 mgl⁻¹ 6–benzylaminopurine (BAP) içeren Murashige ve Skoog (MS) besinortamına aktarıldıktan sonra kontaminasyon ve canlılık yüzdesi olarak iki parametrede değerlendirilmiştir.Yapılan sürgün rejenerasyonu sonunda sürgün ucu eksplantında en yüksek canlılık yüzdesini (%90–92.31)veren sterilizasyon uygulamasının %5’lik Actijen ile 5 dk muamele edilmesi olduğu tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada üzüm çeşitlerinin (Vitis vinifera L.) in vitro hücre ve doku kültürü mikroçoğaltım çalışmalarıiçin etkili yüzey sterilizasyon protokolünün oluşturulması amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Yüzey sterilizasyon denemelerinde sodyum hipoklorit (NaOCl) ve%100 doğal su bazlı ve %0.015 aktif klor içeren ticari sıvı yüzey dezenfektanı Actijenin (Natural ProtectionSystem, NPS Biyosidal) farklı konsantrasyonlarının; farklı süre ve uygulama şekilleri ile in vivo koşullardanalınan yaprak ve sürgün ucu eksplantları üzerindeki etkisi incelenmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Eksplant materyalleri, sürgünrejenerasyon çalışmaları için 1 mgl⁻¹ 6–benzylaminopurine (BAP) içeren Murashige ve Skoog (MS) besinortamına aktarıldıktan sonra kontaminasyon ve canlılık yüzdesi olarak iki parametrede değerlendirilmiştir.Yapılan sürgün rejenerasyonu sonunda sürgün ucu eksplantında en yüksek canlılık yüzdesini (%90–92.31)veren sterilizasyon uygulamasının %5’lik Actijen ile 5 dk muamele edilmesi olduğu tespit edilmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışmada üzüm çeşitlerinin (Vitis vinifera L.) in vitro hücre ve doku kültürü mikroçoğaltım çalışmalarıiçin etkili yüzey sterilizasyon protokolünün oluşturulması amaçlanmıştır. Çalışmada Sultani Çekirdeksizve Uslu üzüm çeşitleri kullanılmıştır. Yüzey sterilizasyon denemelerinde sodyum hipoklorit (NaOCl) ve%100 doğal su bazlı ve %0.015 aktif klor içeren ticari sıvı yüzey dezenfektanı Actijenin (Natural ProtectionSystem, NPS Biyosidal) farklı konsantrasyonlarının; farklı süre ve uygulama şekilleri ile in vivo koşullardanalınan yaprak ve sürgün ucu eksplantları üzerindeki etkisi incelenmiştir. Eksplant materyalleri, sürgünrejenerasyon çalışmaları için 1 mgl⁻¹ 6–benzylaminopurine (BAP) içeren Murashige ve Skoog (MS) besinortamına aktarıldıktan sonra kontaminasyon ve canlılık yüzdesi olarak iki parametrede değerlendirilmiştir.Yapılan sürgün rejenerasyonu sonunda sürgün ucu eksplantında en yüksek canlılık yüzdesini (%90–92.31)veren sterilizasyon uygulamasının %5’lik Actijen ile 5 dk muamele edilmesi olduğu tespit edilmiştir.

Abstract

The aim of this study was established an effective explant surface sterilization protocol for micro propagation of in vitro cell and tissue culture of grape varieties (Vitis vinifera L.). Sultana and Uslu grape varieties were used in this study. In surface sterilization experiments, effect of different time and methods with different concentrations of sodium hypochlorite and commercial liquid floor and surface disinfectant Actijen (Natural Protection System, NPS Biyosidal) containing 100% natural water based and 0.015% active chlorine were evaluated on leaf and shoot tips explants derived from in vivo. After explants transferred on shoot regeneration medium containing 1 mg l⁻¹ 6–benzylaminopurine (BAP), were evaluted two parameters as percentage of contamination and viability. At the end of the shoot regeneration, the highest percentage of viability (90–92.31%) was obtained with treatment of 5% Actijen for 5 min in shoot tips explant.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KUNTER, B. M., PEHLİVAN, E. C., ROYANDAZAGH, S. D. (2022). ASMADA (Vitis vinifera L.) EKSPLANT YÜZEY STERİLİZASYON PROTOKOLÜNÜN OLUŞTURULMASI. Bahçe, Cilt: 47 - Sayı: Özel Sayı 1, 195–200. https://ajindex.com/articles/459550

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (9)

  1. Abido, A.I.A., M.A.M. Aly, S.A. Hassanen and G. A. Rayan, 2013. In vitro Propagation of Grapevine (Vitis vinifera L.) ‘Muscat of Alexandria’ cv. For Conservation of Endangerment. Middle East J Sci Res, 13:328–370.
  2. Akbaş, F.D, Ç. Işıkalan, Y. Kara and D. Başaran, 2004. The Comparison on the Proliferation of Lateral Buds of Vitis vinifera L. cv. Perle de Csaba during Different Periods of the Year in in vitro Conditions. International Journal of Agriculture & Biology, 6(2):328–330.
  3. Alizadeh, M. and S.K. Singh, 2009. Molecular Assessment of Clonal Fidelity in Micropropagated Grape (Vitis spp.) Rootstock Genotypes Using RAPD and ISSR Markers. Iranian Journal of Biotechnology, 7(1):37–44.
  4. Babalık, Z ve N. Göktürk Baydar, 2008. Asmada (Vitis vinifera L.) Gövde ve Yaprak Sapı Eksplantlarından Adventif Sürgün Oluşumu Üzerine Bir Araştırma. Mediterranean Agricultural Sciences, 21(2):231–240.
  5. Badoni, A. and J.S. Chauhan, 2010. In vitro Sterilization Protocol for Micropropagation of Solanum tuberosum cv. ‘Kufri Himalini’. Academia Arena, 2(4):24–27. El–Agamy, S.Z., El–Mahdy, T.K. and Mohamed, A.A. 2009. In vitro Propagation of Some Grape Rootstocks. Acta Hort., 839:125–132.
  6. Jaskani, M.J., Abbas H., Sultana R., Khan, M.M., Qasim M. and Khan, I.A. 2008. Effect of Growth Hormones on Micropropagation of Vitis vinifera L. cv. Perlette. Pakistan J. Bot., 40:105–109.
  7. Krizan, B., Ondrusikova, E., Moudra, J. and M. Pidra, 2012. Effect of Genotype on Organogenesis in Six Grape Rootstocks. Acta Hort. 961:225–230.
  8. Laslo, V., Zapartan, M. and S. Vicas, 2010. In vitro Respons of Several Cultivars of Vitis vinifera L. on Media with Balanced Phytohormone Ratio. Research Journal of Agricultural Science, 42(2):269–274. Lazo–Jevelera, M.F., Troncoso‑Rojas, R., Tiznado‑Hernandez, M.E., Martinez‑Tellez, M.A., Vargas‑Arispuro, I., Islas‑Osuna, M.A. and M. Rivera‑Dominguez, 2016. Surface Disinfection Procedure and in vitro Regeneration of Grapevine (Vitis vinifera L.) Axillary Buds. Springer Plus, 5:453. Mhatre, M., Salunkhe, C.K.and P.S. Rao, 2000. Micropropagation of Vitis vinifera L.: Towards an Improved Protocol. Sci. Hort., 84:357–363.
  9. Mukherjee, P., Husain, N., Misra, S.C. and V.S. Rao, 2010. In vitro Propagation of a Grape Rootstock, deGrasset (Vitis champinii Planch.): Effects of Medium Compositions and Plant Growth Regulators. Scientia Horticulturae, 126:13– 19. Murashige, T. and F. Skoog, 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassay with Tobacco Tissue Cultures. Physiol Pl