Dergiler / Iğdır Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi / 2019 / Cilt: 9 - Sayı: 3

Aspergillus sclerotıorum’dan Elde Edilen Biyoaktif Bileşiklerin Antimikrobiyal ve Antibiyofilm Aktivitelerinin Değerlendirilmesi

The Evaluation of Antimicrobial and Antibiofilm Activity of Bioactive Compounds Obtained from Aspergillus Sclerotiorum

Sayfa
1666–1673
Yayın Tarihi
2019-09-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu sonuçlar, topraktan izole edilen fungus, A. sclerotiorum'un antimikrobiyal ve antibiyofilm bileşikleri için potansiyel bir kaynak olduğunu göstermektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışma, topraktan izole edilen funguslardan antimikrobiyal bileşiklerin taranmasını ve bu bileşiklerin antibiyofilm aktivitelerinin değerlendirilmesini kapsamaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:A. sclerotiorum maya pepton glikoz (YPG) besiyerinde geliştirilmiş ve ekstrasellüler besiyeri 1:1 oranında etil asetat ile ekstrakte edilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Bu sonuçlar, topraktan izole edilen fungus, A. sclerotiorum'un antimikrobiyal ve antibiyofilm bileşikleri için potansiyel bir kaynak olduğunu göstermektedir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Antimikrobiyal · Antibiyofilm · Aspergillus sclerotiorum

Özet

Bu çalışma, topraktan izole edilen funguslardan antimikrobiyal bileşiklerin taranmasını ve bu bileşiklerin antibiyofilm aktivitelerinin değerlendirilmesini kapsamaktadır. Antimikrobiyal ve antibiyofilm özellikteki bileşiklere sahip izolat, moleküler olarak karakterize edilmiş ve Aspergillus sclerotiorum olarak tanılanmıştır. A. sclerotiorum maya pepton glikoz (YPG) besiyerinde geliştirilmiş ve ekstrasellüler besiyeri 1:1 oranında etil asetat ile ekstrakte edilmiştir. Ekstraksiyon ürünü ince tabaka kromotografisi (TLC, silica gel 60 HF254) ile karakterize edilmiş ve 5 bant elde edilmiştir. Gram pozitif (Staphylococcus aureus ATCC 25923, metisiline dirençli S. aureus (MRSA), Enterococcus faecalis ATCC 29212) ve Gram negatif (Escherichia coli ATCC 25922, Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853) bakterilere karşı agar difüzyon ve TLC kapama deneyleri yapılmıştır. Rf değeri 0.42 olan bantın antimikrobiyal aktivite gösterdiği bulunmuştur. Bu bant TLC plaktan geri kazanılarak, minimum inhibitör konsantrasyonu (MIC) belirleme ve kristal viyole testi ile S. aureus ve MRSA’ ya karşı antibiyofilm aktivitesi değerlendirilmiştir. Bu sonuçlar, topraktan izole edilen fungus, A. sclerotiorum'un antimikrobiyal ve antibiyofilm bileşikleri için potansiyel bir kaynak olduğunu göstermektedir.

Abstract

This study was concerned with the screening of antimicrobial products from fungi collected from soil and evalution of their antibiofilm activity. The isolate having antimicrobial and antibiofilm compounds was characterized by the molecular methods and identified as Aspergillus sclerotiorum. A. sclerotiorum was grown in yeast peptone glucose (YPG) medium and extracellular medium was extraction by 1:1 ethyl acetate. Crude extraction characterized through thin layer chromatography (TLC) on silica gel 60 HF254 and was detected five bands. Agar diffusion and TLC overlay assays were done against Gram-positive (Staphylococcus aureus ATCC 25923, meticilin resistance S. aureus (MRSA) and Enterococcus faecalis ATCC 29212) and Gram-negative bacteria (Escherichia coli ATCC 25922 and Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853). The most dense band (Rf:0.42) showed the best inhibition zone on TLC overlay. The results showed that the most dense band can potential source for antimicrobial compound. After the most dense band in silica gel was scraped and dissolved ethyl acetate for minimum inhibitory concentration (MIC) determination and crystal violet assay against S. aureus and MRSA. These results indicate that fungi, A. sclerotiorum, isolated from soil was potential source for antimicrobial and antibiofilm compounds.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÜSTÜN, A., YAZICI, A., İSKENDER, N. A., ÖRTÜCÜ, S. (2019). Aspergillus sclerotıorum’dan Elde Edilen Biyoaktif Bileşiklerin Antimikrobiyal ve Antibiyofilm Aktivitelerinin Değerlendirilmesi. Iğdır Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, Cilt: 9 - Sayı: 3, 1666–1673. https://ajindex.com/articles/256809

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Balouiri M, Sadiki M, Ibnsouda SK, 2016. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis, 6 (2): 71-79. Blackwell M, 2011. The Fungi: 1, 2, 3 … 5.1 million species? American Journal of Botany, 98(3): 426–438. Bueno J, 2014. Anti-biofilm drug susceptibility testing methods: looking for new strategies against resistance mechanism. Journal of Microbial & Biochemical Technology S3(004):1-9.
  2. Cragg GM, Newman DJ, & Snader KM, 1997. Natural products in drug discovery and development. Journal of Natural Products, 60(1): 52-60.
  3. Deepika VB, Murali TS, & Satyamoorthy K, 2016. Modulation of genetic clusters for synthesis of bioactive molecules in fungal endophytes: A review. Microbiological Research, 182, 125-140. Dongari-Bagtzoglou A, 2008. Pathogenesis of mucosal biofilm infections: challenges and progress. Expert review of anti-infective therapy, 6(2): 201-208.
  4. Feoktistova M, Geserick P, & Leverkus M. 2016. Crystal violet assay for determining viability of cultured cells. Cold Spring Harbor Protocols, 2016(4), pdb-prot087379. Gootz TD, 2010. The global problem of antibiotic resistance. Critical Reviews™ in Immunology, 30 (1): 70-93.
  5. Gray AI, Igoli JO, & Edrada-Ebel R, 2012. Natural products isolation in modern drug discovery programs. In Natural Products Isolation (pp. 515-534). Humana Press. Hamburger MO, & Cordell GA, 1987. A direct bioautographic TLC assay for compounds possessing antibacterial activity. Journal of Natural Products, 50 (1): 19-22.
  6. Kang SW, Hong SI, & Kim SW, 2005. Identification of Aspergillus strain with antifungal activity against Phytophthora species. Journal of Microbiology and Biotechnology, 15 (2): 227-233.
  7. Leone S, Molinaro A, Alfieri F, Cafaro V, Lanzetta R, Di Donato A, & Parrilli M, 2006. The biofilm matrix of Pseudomonas sp. OX1 grown on phenol is mainly constituted by alginate oligosaccharides. Carbohydrate research, 341 (14): 2456-2461.
  8. Lihan S, Choon YK, Hua NK, & Wasli ME, 2014. Screening for antimicrobial activity of fungi in soil samples collected from Kubah national park. International Journal of Scientific & Technology Research, 3 (2): 1-9.
  9. Marques SC, Rezende JDGOS, Alves LADF, Silva BC, Alves E, Abreu LRD, & Piccoli RH, 2007. Formation of biofilms by Staphylococcus aureus on stainless steel and glass surfaces and its resistance to some selected chemical sanitizers. Brazilian Journal of Microbiology, 38 (3): 538-543.
  10. Murali M, Mahendra C, Hema P, Rajashekar N, Nataraju A, S