KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Afyon Kocatepe Üniversitesi Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi / 2024 / Cilt: 24 Sayı: 6

Rumex Crispus L.’dan Sekonder Metabolitlerin Kromatografik Yöntemlerle İzolasyonu ve Tayini

Isolation and Determination of Secondary Metabolites from Rumex Crispus L. by Chromatographic Methods

Elif Günay(ISTANBUL UNIVERSITY, INSTITUTE OF SCIENCE)0000-0001-5889-1617
Dilek Mutlu(ISTANBUL UNIVERSITY, FACULTY OF SCIENCE)0009-0001-7368-1287
Deniz Küpçük(ISTANBUL UNIVERSITY, INSTITUTE OF SCIENCE)0009-0005-1417-6503
Gizem Yıldırım Baştemur(ISTANBUL UNIVERSITY, FACULTY OF SCIENCE)0000-0002-4634-4525
Sabriye Perçin Özkorucuklu(Istanbul University, Science Faculty, Molecular Biology and Genetics Department)0000-0001-9778-2034
Sayfa
1305–1312
Yayın Tarihi
2024-12-02
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak, bitkilerdeki sekonder metabolitlerin araştırılmasında maliyeti düşük olan gravity kolon kromatografisi kullanılarak fenolik bileşiklerin ve antrakinonların saflaştırılabileceği ortaya konulmuştur.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:İnsanlar binlerce yıldır bitkilerin sağlık açısından faydalı özelliklerinden yararlanmaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmada Türkiye’de yetişen Rumex crispus L. bitkisinden katma değere sahip fenolik bileşik ve antrakinonların izolasyonu pratik ve ekonomik bir metot olan gravity kolon kromatografisi ile gerçekleştirilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak, bitkilerdeki sekonder metabolitlerin araştırılmasında maliyeti düşük olan gravity kolon kromatografisi kullanılarak fenolik bileşiklerin ve antrakinonların saflaştırılabileceği ortaya konulmuştur.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Rumex crispus L. · Gravity kolon kromatografi · RPLC

Özet

İnsanlar binlerce yıldır bitkilerin sağlık açısından faydalı özelliklerinden yararlanmaktadır. Günümüzde, tıp biliminin yanı sıra başta kozmetik endüstrisinde olmak üzere birçok sektörde bitkiler kullanılmaktadır ve bitkilerin fitokimyasal içeriklerinin belirlenmesine ilişkin çalışmalar da hızla artmaktadır. Halk arasında çeşitli amaçlarla kullanılan Rumex crispus L. bitkisi özellikle fenolik bileşikler ve antrakinonlar olmak üzere zengin sekonder metabolit içeriğinden dolayı dikkat çekmektedir. Bu çalışmada Türkiye’de yetişen Rumex crispus L. bitkisinden katma değere sahip fenolik bileşik ve antrakinonların izolasyonu pratik ve ekonomik bir metot olan gravity kolon kromatografisi ile gerçekleştirilmiştir. Ekstrakt apolar çözücü sistemden polar çözücü sistemine doğru fraksiyonlara ayrılmış ve bu fraksiyonlardaki fenolik bileşik ve antrakinon miktarları ters faz sıvı kromatografi (RPLC) yöntemi ile belirlenmiştir. Protokateşik asit, gentisik asit, kafeik asit, p-kumarik asit, polydatin, kumarin, resveratrol ve ellajik asit izolasyonu için etil asetat-metanol (6:4) çözücü sisteminin uygun olduğuna karar verilmiştir. Sonuç olarak, bitkilerdeki sekonder metabolitlerin araştırılmasında maliyeti düşük olan gravity kolon kromatografisi kullanılarak fenolik bileşiklerin ve antrakinonların saflaştırılabileceği ortaya konulmuştur.

Abstract

People have been benefiting from the health benefits of plants for thousands of years. Nowadays, plants are used in many sectors, especially in the cosmetic industry, as well as medical science, and studies on the determination of the phytochemical contents of plants are rapidly increasing. Rumex crispus L., a plant commonly used for various purposes by the public, attracts attention due to its rich secondary metabolite content, especially phenolic compounds and anthraquinones. In this study, the isolation of valuable phenolic compounds and anthraquinones from the Rumex crispus L. plant grown in Turkey was carried out by gravity column chromatography, which is a practical and economical method. The extract was divided into fractions from the nonpolar solvent system to the polar solvent system, and the amounts of phenolic compounds and anthraquinones in these fractions were determined by the reverse phase liquid chromatography (RPLC) method. It was decided that the ethyl acetate-methanol (6:4) solvent system was suitable for the isolation of protocatechuic acid, gentisic acid, caffeic acid, p-coumaric acid, polydatin, coumarin, resveratrol and ellagic acid. Consequently, it has been revealed that phenolic compounds and anthraquinones can be purified by using low-cost gravity column chromatography in the investigation of secondary metabolites in plants.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Günay, E., Mutlu, D., Küpçük, D., Baştemur, G. Y., Özkorucuklu, S. P. (2024). Rumex Crispus L.’dan Sekonder Metabolitlerin Kromatografik Yöntemlerle İzolasyonu ve Tayini. Afyon Kocatepe Üniversitesi Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi, Cilt: 24 Sayı: 6, 1305–1312. https://doi.org/10.35414/akufemubid.1483597

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (36)

  1. Abdisa Z. ve Zelalem G. (2022). Phytochemical Investigation of Rumex Abyssinicus Root Barks and In Vitro Evaluation of Its Antibacterial Activities. Journal of the Turkish Chemical Society Section A Chemistry, 9(4), 1063-1072. https://doi.org/10.18596/jotcsa.1035039
  2. Arora, M., Mahajan, A., ve Sembi, J. K. (2022). Extraction and characterization of secondary metabolites from Crepidium acuminatum (D. Don) Szlach: A miraculous orchid. South African Journal of Botany, 149, 693-700. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2022.06.014
  3. Akpınar, R., Yıldırım Baştemur, G., Bıçak, B., Sanli, N. O., Mertoğlu Kamalı, E., Pekmez, M., Kecel Gündüz, S., ve Perçin Özkorucuklu, S. (2024). Phytochemical profiling, in vitro biological activities, and in silico (molecular docking and absorption, distribution, metabolism, excretion, toxicity) studies of Polygonum cognatum Meissn. Journal of Separation Science, 47(1), 2300750. https://doi.org/10.1002/jssc.202300750
  4. Amarowicz, R., Shahiiİ, F., ve Wiczkowski, W. (2003). Separation of indıvidual catechins from green tea using silica gel column chromatography and HPLC. Journal of Food Lipids, 10(2), 165–177. https://doi.org/10.1111/j.1745-4522.2003.tb00013.x
  5. Aybastıer, Ö., (2021). Karaduttan (Morus Nigra L.) antioksidan bileşiklerin kromatografik yöntemlerle izolasyonu ve tayini. Gıda, 46 (1), 32-41. https://doi.org/10.15237/gida.GD20114
  6. Bajpai, V. K., Majumder, R., ve Park, J. G. (2016). Isolation and purification of plant secondary metabolites using column-chromatographic technique. Bangladesh Journal of Pharmacology, 11(4), 844-848. https://doi.org/10.3329/bjp.v11i4.28185
  7. Barba, F. J., Esteve, M. J., ve Frígola, A. (2014). Bioactive Components from Leaf VegetableProducts, Studies in Natural Products Chemistry, In: Atta ur, R. (ed.), Chapter 11, Elsevier, ISBN: 1572-5995, 321-346.
  8. Başkan, S., Daut-Ozdemir, A., Günaydin, K., ve Erim, F. B. (2007). Analysis of anthraquinones in Rumex crispus by micellar electrokinetic chromatography. Talanta, 71(2), 747–750. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2006.05.018
  9. Bulduk İ. ve Gökçe S., (2021). Farmasötik Formülasyonlarda Levodopa ve Karbidopa Miktarının Belirlenmesi için Etkili ve Güvenilir bir HPLC Yönteminin Geliştirilmesi ve Validasyonu. Hacettepe Journal of Biology and Chemistry, 49 (4), 413-422. https://doi.org/10.15671/hjbc.773988
  10. Çoruh, I., Gormez, A., Ercisli, S., ve Sengul, M. (2008). Total phenolic content, antioxidant, and antibacterial activity of Rumex crispus grown wild in Turkey. Pharmaceutical Biology, 46(9), 634-638. https://doi.org/10.1080/13880200802182240
  11. Duval, J., Pecher, V., Poujol, M., ve Lesellier, E. (2016). Research advances for the extraction, analysis and uses of anthraquinones: A review. Industrial Crops and Products, 94, 812-833. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2016.09.056
  12. Eom T, Kim E, ve Kim J.S. (2020), In vitro antioxidant, antiinflammation, and anticancer activities and anthraquinone content from Rumex crispus root extract and fractions. Antioxidants (Basel), 9(726), 1-13. https://doi.org/10.3390/antiox9080726
  13. Fan, M., Ding, H., Zhang, G., Hu, X., ve Gong, D. (2019). Relationships of dietary flavonoid structure with its tyrosinase inhibitory activity and affinity. LWT - Food Science and Technology, 107, 25-34. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2019.02.076
  14. Fouillaud, M., Venkatachalam, M., Girard-Valenciennes,E., Caro, Y., ve Dufossé, L. (2016). Anthraquinones and derivatives from marine-derived fungi: Structural diversity and selected biological activities. Marine Drugs, 14(4), 64. https://doi.org/10.3390/md14040064
  15. Guo, S., Feng, B., Zhu, R., Ma, J., ve Wang, W. (2011). Preparative isolation of three anthraquinones from Rumex japonicus by high-speed counter-current chromatography. Molecules, 16(2), 1201–1210. https://doi.org/10.3390/molecules16021201
  16. Huang, P-H., Huang, C-Y., Chen, M-C., Lee, Y-T., Yue, C-H., Wang, H-Y., ve Lin, H. (2013). Emodin and aloe-emodin suppress breast cancer cell proliferation through ER alpha Inhibition. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine, 376123. https://doi.org/10.1155/2013/376123
  17. Idris, O. A., Wintola, O. A., ve Afolayan, A. J. (2017). Phytochemical and antioxidant activities of Rumex crispus L. in treatment of gastrointestinal helminths in Eastern Cape Province, South Africa. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 7(12), 1071–1078. https://doi.org/10.1016/j.apjtb.2017.10.008
  18. Larayetan, R., Ojemaye, M.O., Okoh, O.O., ve Okoh, A.I. (2019). Silver nanoparticles mediated by Callistemon citrinus extracts and their antimalaria, antitrypanosoma and antibacterial efficacy. Journal of Molecular Liquids, 273, 615-625. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2018.10.020
  19. Li-Weber, M. (2013). Targeting apoptosis pathways in cancer by Chinese medicine. Cancer Letters, 332(2), 304-312. https://doi.org/10.1016/j.canlet.2010.07.015
  20. Minh, T. N., Van, T. M., Andriana, Y., Vinh, L. T., Hau, D. V., Duyen, D. H., ve Guzman-Gelani, C. D. (2019). Antioxidant, xanthine oxidase, α-amylase and α-glucosidase inhibitory activities of bioactive compounds from Rumex crispus L. root. Molecules, 24(21), 3899. https://doi.org/10.3390/molecules24213899
  21. Nazeam, J. A., Al-Shareef, W. A., Helmy, M. W., & El-Haddad, A. E. (2020). Bioassay-guided isolation of potential bioactive constituents from pomegranate agrifood by-product. Food Chemistry, 326, 126993. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.126993
  22. Nuzula, A. F., Kristanti, A. N., Aminah, N. S., Takaya, Y., Sahadatin, M. N., ve Wardana, A. P. (2023). Isolation and structure elucidation of secondary metabolite compounds from Curcuma aeruginosa. Jurnal Kimia Riset, 8(1), 81–91. https://doi.org/10.20473/jkr.v8i1.44073
  23. Ntemafack, A., Sabeena, A., Aristide, D., Ravi, S., Serge, A., Jules-Roger, K., Alain, W., Asha, Chaubey. (2023). Chemical profile, biological potential, bioprospection and biotechnological application of endophytes of Rumex: A systematic review. Industrial Crops & Products, 195, 116474. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2023.116474
  24. Orban-Gyapai, O., Liktor-Busa, E., Kusz, N., Stefko, D., Urban, E., Hohmann, J., ve Vasas, A. (2017). Antibacterial screening of Rumex species native to the Carpathian Basin and bioactivity-guided isolation of compounds from Rumex aquaticus. Fitoterapia, 118, 101-106. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2017.03.009
  25. Pham, D. Q., Han, J. W., Dao, N. T., Kim, J.-C., Pham, H. T., Nguyen, T. H., Choib G.J., Vu H.D., Le Dang, Q. (2020). In vitro and in vivo antimicrobial potential against various phytopathogens and chemical constituents of the aerial part of Rumex chinensis Campd. South African Journal of Botany, 133, 73–82. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2020.07.006
  26. Saoudi, M. M., Bouajila, J., Rahmani, R., ve Alouani, K. (2021). Phytochemical Composition, Antioxidant, Antiacetylcholinesterase, and Cytotoxic Activities of Rumex crispus L. International Journal of Analytical Chemistry, 6675436. https://doi.org/10.1155/2021/6675436
  27. Sarikahya, N. B., Goren, A. C., ve Kirmizigul, S. (2019). Simultaneous determination of several flavonoids and phenolic compounds in nineteen different Cephalaria species by HPLC-MS/MS. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 173, 120-125. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2019.05.019
  28. Seigler, D. S. (2012). Plant secondary metabolism. Springer Science & Business Media.
  29. Simoes, C.M.O., Schenkel, E.P., Gosman, G., Mello, J.C.P., Mentz, L.A., ve Petrovick, P.R. (2007). Farmacognosia: da planta ao medicamento. Editora da UFSC, Floriano´polis, 1102.
  30. Skoog, D. A., West, D. M., Holler, F. J., & Crouch, S. R. (2013). Fundamentals of Analytical Chemistry. Cengage learning.
  31. Smolarz, H.D., Swatko-Ossor, M., Ginalska, G., ve Medynska, E. (2013). Antimycobacterial effect of extract and its components from Rheum rhaponticum. Journal of AOAC International, 96(1), 155-160. https://doi.org/10.5740/jaoacint.12-010
  32. Tsamo, L. D. F., Yimgang, L. V., Wouamba, S. C. N., Mkounga, P., Nkengfack, A. E., Voutquenne-Nazabadioko, L., ve Sewald, N. (2021). A new ceramide (Rumexamide) and other chemical constituents from Rumex abyssinicus Jacq (Polygonaceae): isolation, characterization, antibacterial activities and chemophenetic significance. Advances in Biological Chemistry, 11(05), 266-282. https://doi.org/10.4236/abc.2021.115018
  33. Vasas, A., Orbán-Gyapai, O., ve Hohmann, J. (2015). The genus Rumex: review of traditional uses, phytochemistry, and pharmacology. Journal of Ethnopharmacology, 175, 198-228. https://doi.org/10.1016/j.jep.2015.09.001
  34. WHO. (1993) Summar WHO guidelines for the assessment of herbal medicines. Herbal Grom. 28:13–4.
  35. Yıldırım Baştemur, G., Akpınar, R., Kır, E., ve Perçin Özkorucuklu, S., (2024). Development and Validation of the HPLC-DAD Method for the Simultaneous Determination of Anthraquinones in Rumex crispus L. and Rumex acetosella L. Plants and Evaluation of Their Antioxidant Capacities. Journal of Analytical Chemistry,79(2), 179-189. https://doi.org/10.1134/S1061934824020035
  36. Yıldırım, A., Mavi, A., ve Kara, A.A. (2001). Determination of Antioxidant and Antimicrobial Activities of Rumex crispus L. Extracts. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49, 4083–4089. https://doi.org/10.1021/jf0103572