Dergiler / Iğdır Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi / 2018 / Cilt: 8 Sayı: 4

Iğdır İlinin Yerel Üzümü Kırmızı Kişmişi (Vitis vinifera L.) Çeşidinden Polifenol Oksidazın Kısmi Saflaştırılması ve Karakterizasyonu

The Partial Purification and Characterization of Polyphenol Oxidase in Native Grape Kirmizi Kismisi Cultivar (Vitis vinifera L.) Grown in Iğdır Province

Sayfa
153–161
Yayın Tarihi
2018-12-30
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Yerel üzüm çeşidi Kırmızı Kişmişi, Türkiye’nin Iğdır ilinin Necefali köyünden toplandı ve daha sonra

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Yerel üzüm çeşidi Kırmızı Kişmişi, Türkiye’nin Iğdır ilinin Necefali köyünden toplandı ve daha sonra
📊
Temel Bulgular & Veri:Yerel üzüm çeşidi Kırmızı Kişmişi, Türkiye’nin Iğdır ilinin Necefali köyünden toplandı ve daha sonra
💡
Sonuç & Katkı:Yerel üzüm çeşidi Kırmızı Kişmişi, Türkiye’nin Iğdır ilinin Necefali köyünden toplandı ve daha sonra
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Kırmızı kişmişi · kısmi saflaştırma · karakterizasyon

Özet

Yerel üzüm çeşidi Kırmızı Kişmişi, Türkiye’nin Iğdır ilinin Necefali köyünden toplandı ve daha sonra

Abstract

The native grape Kirmizi Kismisi cultivar was gathered from the Necefali village of Igdir province in Turkey, and then caried into the laboratory and stored in deep-frozen at -20°C. Polyphenol oxidase (PPO) was partial purified 5.45 times using the cold acetone precipitation from Kirmizi Kismisi Grape and was characterized. 50 gr of Kirmizi Kismisi Grape were placed in a porcelain mortar and pestled in order to decompose cell membranes. The frozen Kirmizi Kismisi Grapes were homogenised by using a porcelain mortar in 100 mL of 50 mM sodium acetate buffer (pH 5.0) containing 1% (w/v) polyethylene glycol (PEG). Then homogenate was percolated through 4-fold muslin and the resulting filtrate was santrifuged for 30 minutes at 10,000 rpm at 4°C. The supernatant obtained after centrifugation was mixed with cold acetone as much as the volume of the supernatant in the ice bath and the mixture was incubated overnight at 4°C for precipitation of proteins. After centrifugation at 10,000 rpm for 30 min at 4°C, the precipitate was redissolved in 20 mL 50 mM sodium acetate buffer (pH 5.0). Protein concentration was determined according to the Lowry method. Protein concentrations of crude extract and acetone precipitation were determined as 7.04 and 3.83 mg/mL, respectively. Optimum pH and temperature values were found to be 6.0 and 20°C, respectively, using catechol as a substrate. In addition, some biochemical properties such as Km and Vmax values were investigated. PPO activity was inhibited from ascorbic acid, citric acid, sodium metabisulfite and benzoic acid and the IC50 for each inhibitor was calculated.The data obtained from this study showed that this enzyme could be useful for food industrial purposes.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Kaya, E. D., Türkhan, A., Eyduran, S. P., Akın, M. (2018). Iğdır İlinin Yerel Üzümü Kırmızı Kişmişi (Vitis vinifera L.) Çeşidinden Polifenol Oksidazın Kısmi Saflaştırılması ve Karakterizasyonu. Iğdır Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, Cilt: 8 Sayı: 4, 153–161. https://doi.org/10.21597/jist.423449

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (26)

  1. Önez Z, 2006. Üzümden (Vitis Vinifera L.) İzole Edilen Polifenol Oksidaz Enziminin Özelliklerinin Belirlenmesi. Ankara Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi.
  2. Khan AA, Akhtar S, Husain Q, 2006. Direct immobilization of polyphenol oxidases on celite 545 from ammonium sulphate fractionated proteins of potato (solanum tuberosum). Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 40:58-63.
  3. Bravo K, Osorio E, 2016. Characterization of polyphenol oxidase from Cape gooseberry (Physalis peruviana L.) fruit. Food Chemistry, 197:185–190.
  4. Turan P, 2005. Ocimum basilicum L.’den Elde Edilen Polifenol Oksidaz Enziminin Saflaştırılması, Kinetik ve Elektroforotik Özelliklerinin İncelenmesi. Balıkesir Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi.
  5. Ülker-Yerlitürk F, Arslan O, Sınan S, Gencer N, Özensoy Ö, 2008. Characterızatıon Of Polyphenoloxıdase from Wıld Pear (Pyrus Elaegrıfolıa). Journal of Food Biochemistry, 32:368–383.
  6. Öz F, Colak A, Özel A, Sağlam-Ertunga N, Sesli E, 2013. Purification and Characterization of A Mushroom Polyphenol Oxidase and Its Activity in Organic Solvents. Journal of Food Biochemistry, 37:36–44.
  7. Yoruk R, Marshall MR, 2003. Physicochemical properties and function of plant polyphenoloxidase:a review. Journal of Food Biochemistry, 27;361–422.Kolcuoğlu Y, 2012. Purification and comparative characterization of monophenolase and diphenolase activities from a wild edible mushroom (Macrolepiota gracilenta). Process Biochemistry, 47;2449–2454.
  8. Mason HS, 1948. Chemistry of melanin Mechanism of oxidation of 3,4-dihydroxyphenylalanine by tyrosinase. Journal of Biological Chemistry, 72;83–99.
  9. Prota G, 1988. Progress in the chemistry of melanins and related metabolites. Medicinal Research Review, 8;525–556.
  10. Mathewson PR, 2000. Enzymes. Eagen Press Handbook Series, 37-38.
  11. Mcweeny DJ, 1974. The chemistry of non-enzymatic browning in foods and its control by sulphites. Journal of the Science of Food and Agriculture, 25;735.
  12. Labuza TP, Lillemo JH, Taoukis PS, 1992. Inhibition of polyphenol oxidase by proteolytic enzymes. Fruit Processing, 2;9-13.
  13. Çelik H, 2014. Üzümün besin değeri. Türkiye Tohumcular Birliği Dergisi.
  14. Gıda, Tarım ve Hayvancılık Bakanlığı Tarımsal, Ekonomi ve Politika Geliştirme Enstitüsü, 2015.
  15. Aydemir T, 2004. Partial purification and characterization of polyphenol oxidase from artichoke (Cynara scolymus L.) heads. Food Chemistry, 87;59–67.
  16. Özen A, Colak A, Dincer B, Güner S, 2004. A diphenolase from persimmon fruits (Diospyros kaki L., Ebenaceae). Food Chemistry, 85;431–437.
  17. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ, 1951. Protein Measurement With The Folin Phenol Reagent. Journal of Biological Chemistry, 193;265-275.
  18. Espin JC, Morales M, Varon R, Tudela J, Garcia-Canovas F, 1995. A continuous spectrophotometric method for determining the monophenolase and diphenolase activities of apple polyphenol oxidase. Analytical Biochemistry, 43;2807-2812.
  19. Galeazzi MAM, Sgarbieri VCJ, 1981. Substrate Specificity and İnhibition of Polyphenoloxidase from a Dwarf Variety of Banana (Musa Cavendishii, L.). Journal Of Food Science, 46;1404-1406.
  20. Colak A, Özen A, Dincer B, Güner S, Ayaz AF, 2005. Diphenolases from Two Cultivars of Cherry Laurel (Laurocerasus Officinalis Roem.) Fruits at Early Stage of Maturation. Food Chemistry, 90;801-807.
  21. Dincer B, Colak A, Aydin N, Kadioglu A, Güner S, 2002. Characterization of Polyphenoloxidase from Medlar Fruits (Mespilus Germanica L. Rosaceae). Food Chemistry, 77;1-7.
  22. Lineweaver H, Burk D, 1934. The Determination of Enzyme Dissociation Constant. Journal of American Chemical Society, 56;658-661.
  23. Kuyumcu İ, 2014. Yabani Ve Yenilebilir Bir Mantar Olan Lactarıus Eucalyptı O. K. Mıll & R. N. Hılton’ dan Polifenol Oksidazın Saflaştırılması ve Karakterizasyonu,” Karadeniz Teknik Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi.
  24. Tozak KÖ, 2013. Nevşehir Patatesinden (Solanum Tuberosum L.)Polifenoloksidaz Enziminin Afinite Kromatografisi İle Saflaştırılarak Kinetik Ve Elektroforetik Özelliklerinin İncelenmesi, Aksaray Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi.
  25. Dedeoğlu N, 2009. Yenilebilir Mantar Türlerinden Polifenol Oksidaz Enziminin Saflaştırılması ve Karakterizasyonu, Balıkesir Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi.
  26. Özel A, Colak A, Arslan O, Yildirim M, 2010. Purification and characterisation of a polyphenol oxidase from Boletus erythropus and investigation of its catalytic efficiency in selected organic solvents. Food Chemistry, 119;1044–1049.