KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Iğdır Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi / 2024 / Cilt: 14 Sayı: 4

Aspir Tohumu (Carthamus Tinctorius L.) ve Çörek Otu Tohumu (Nigella Sativa L.) Soğuk Sıkım Yağlarının Fitokimyasal Özellikleri

Phytochemical Properties of Safflower Seed (Carthamus Tinctorius L.) and Black Cumin Seed (Nigella Sativa L.) Cold Pressed Oils

Muhammed Güngören(MARDİN ARTUKLU ÜNİVERSİTESİ)0000-0002-3122-7086
Mustafa Yunus Emre(MARDİN ARTUKLU ÜNİVERSİTESİ)0000-0001-6602-8872
Sayfa
1602–1614
Yayın Tarihi
2024-12-01
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Yağların peroksit değerleri 7.230.46-6.450.51 meq O2/kg yağ, serbest yağ asidi değerleri %3.750.11-7.110.50 oleik asit aralıklarında tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:İçerdikleri yağ asitleri, fenolik maddeler ve uçucu bileşenler başta olmak üzere birçok özelliklerinden ötürü yemeklik yağlar lezzet ve sağlık açısından oldukça önemlidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bunlar arasında doymamış yağ asidi oranı yüksek bitkisel yağlar ön plana çıkmaktadır.
💡
Sonuç & Katkı:Yağların peroksit değerleri 7.230.46-6.450.51 meq O2/kg yağ, serbest yağ asidi değerleri %3.750.11-7.110.50 oleik asit aralıklarında tespit edilmiştir.
🔬Tür:Literatür & Derleme Çalışması
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Aspir tohumu yağı · Çörek otu tohumu yağı · Antioksidan

Özet

İçerdikleri yağ asitleri, fenolik maddeler ve uçucu bileşenler başta olmak üzere birçok özelliklerinden ötürü yemeklik yağlar lezzet ve sağlık açısından oldukça önemlidir. Bunlar arasında doymamış yağ asidi oranı yüksek bitkisel yağlar ön plana çıkmaktadır. Bu çalışmada doymuş yağ oranı düşük, doymamış yağ oranı yüksek, antioksidan özellikteki aspir ve çörek otu tohumları soğuk sıkım yağlarının kalite parametreleri, antioksidan özellikleri, yağ asidi kompozisyonu ve uçucu bileşenleri literatüre uygun yöntemlerle analiz edilerek karşılaştırılmıştır. Yağların peroksit değerleri 7.230.46-6.450.51 meq O2/kg yağ, serbest yağ asidi değerleri %3.750.11-7.110.50 oleik asit aralıklarında tespit edilmiştir. Aspir ve çörek otu tohumu yağlarının toplam fenolik bileşimleri sırasıyla 149.503.47-274.4715.04 mg gallik asit/kg yağ ve toplam antioksidan kapasiteleri sırasıyla 28.570.62-68.350.39 mg troloks/kg yağ olarak tespit edilmiştir. Linoleik asit (70.4580.70-56.3131.13) ve oleik asit (16.9720.17-24.7800.50) yüzdeleri toplamı 80’in üzerinde ölçülmüştür. Aspir tohumu yağında 11 aldehit, 4 terpen, 2 alkol, 1 keton, 5 asit-ester bulunan 27 uçucu bileşen; çörek otu tohumu yağında 6 aldehit, 14 terpen, 3 alkol, 1 keton, 5 asit-ester bulunan 38 uçucu bileşen tespit edilmiştir. Çörek otu tohumu yağının serbest asitlik değeri, karakteri dahilinde olmakla beraber, biraz yüksek bir değerde bulunmuştur. Buna karşılık daha iyi antioksidan özelliğe sahip olduğu görülmüştür. Her iki yağın yapısında, özelliklerini olumlu etkileyecek, kendine özgü uçucu bileşenleri yanında istenmeyecek duyusal etkilere sahip bazı asitler de bulunmaktadır. Elde edilen sonuçlar, her iki yağın da içeriğindeki doymamış yağ asidi kompozisyonu ve antioksidan özellikleri için tüketici tarafından tercih edilebilecek olduğunu göstermiştir. Bunun yanında, tüketiciye ulaşıncaya kadarki aşamaların iyileştirilmesiyle bu özelliklere çok daha olumlu nitelik kazandırılabilir.

Abstract

Edible oils are very important in terms of taste and health due to their many properties, especially the fatty acids, phenolic substances and volatile compounds they contain. Among these, vegetable oils with high ratio unsaturated fatty acids attract attention. In this study, the quality parameters, antioxidant properties, fatty acid composition and volatile components of cold-pressed oils of safflower seeds and black cumin seeds, which have antioxidant properties and are low in saturated fat and high in unsaturated fat, were analyzed and compared using methods in accordance with the literature. Peroxide values of oils (7.230.46-6.450.51 meq O2/kg oil) gave better results than free fatty acid values (3.750.11-7.110.50 % oleic acid). Total phenolic compositions of safflower and black cumin seed oils were determined as 149.503.47-274.4715.04 mg gallic acid/kg oil, respectively, and total antioxidant capacities were determined as 28.570.62-68.350.39 mg trolox/kg oil, respectively. The sum of the percentages of linoleic acid (70.4580.70-56.3131.13) and oleic acid (16.9720.17-24.7800.50) was measured to be over 80. 27 volatile components in safflower seed oil, including 11 aldehydes, 4 terpenes, 2 alcohols, 1 ketone, 5 acid-esters; 38 volatile compounds, including 6 aldehydes, 14 terpenes, 3 alcohols, 1 ketone, and 5 acid-esters, were detected in black cumin seed oil. The free acidity value of black cumin seed oil was found to be slightly high, although it was within its character. On the other hand, it has been seen to have better antioxidant properties. In the structure of both oils, there are some volatile acids that have undesirable sensory effects as well as volatile components that will positively affect their properties. The results showed that the antioxidant and unsaturated fatty acid properties of both oils were at preferable levels. In addition, much more positive features can be gained by improving the stages until it reaches the end user.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Güngören, M., Emre, M. Y., *, M. G. (2024). Aspir Tohumu (Carthamus Tinctorius L.) ve Çörek Otu Tohumu (Nigella Sativa L.) Soğuk Sıkım Yağlarının Fitokimyasal Özellikleri. Iğdır Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, Cilt: 14 Sayı: 4, 1602–1614. https://doi.org/10.21597/jist.1501043

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (44)

  1. Ahmad, M. F., Ahmad, F. A., Ashraf, S. A., Saad, H. H., Wahab, S., Khan, M. I., & Athar, M. T. (2021). An updated knowledge of Black seed (Nigella sativa Linn.): Review of phytochemical constituents and pharmacological properties. Journal of Herbal Medicine, 25, 100404. doi:https://doi.org/10.1016/j.hermed.2020.100404
  2. Al Surmi, N., El Dengawi, R., Khalefa, A., & Yahia, N. (2015). Characteristics and oxidative stability of some safflower (Carthamus Tinctorius L.). J Nutr Food Sci S, 14, 2.
  3. Al-Owaisi, M., Al-Hadiwi, N., & Khan, S. A. (2014). GC-MS analysis, determination of total phenolics, flavonoid content and free radical scavenging activities of various crude extracts of Moringa peregrina (Forssk.) Fiori leaves. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 4(12), 964-970. doi:https://doi.org/10.12980/APJTB.4.201414B295
  4. Aydeniz, B., Güneşer, O., & Yılmaz, E. (2014). Physico‐chemical, sensory and aromatic properties of cold press produced safflower oil. Journal of the American Oil Chemists' Society, 91(1), 99-110.
  5. Baydar, H., & Erbaş, S. (2007). Türkiye'de Yemeklik Yağ ve Biyodizel Üretimine Uygun Aspir Islahı. I. Ulusal Yağlı Tohumlu Bitkiler ve Biyodizel Sempozyumu, 28-31.
  6. BAYDAR, H., & TURGUT, İ. (1993). Aspir (Carthamus tinctorius L.)'in Antalya koşullarında kışlık olarak yetiştirme olanakları üzerine araştırmalar. Akdeniz University Journal of the Faculty of Agriculture, 5(1-2), 75-92.
  7. Beyyavas, V., Haliloglu, H., Copur, O., & Yilmaz, A. (2011). Determination of seed yield and yield components of some safflower (Carthamus tinctorius L.) cultivars, lines and populations under the semi-arid conditions. African Journal of Biotechnology, 10(4), 527-534.
  8. Blois, M. S. (1958). Antioxidant Determinations by the Use of a Stable Free Radical. Nature, 181(4617), 1199-1200. doi:10.1038/1811199a0
  9. Burdock, G. A. (2022). Assessment of black cumin (Nigella sativa L.) as a food ingredient and putative therapeutic agent. Regulatory Toxicology and Pharmacology, 128, 105088. doi:https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2021.105088
  10. Capanoglu, E., De Vos, R. C., Hall, R. D., Boyacioglu, D., & Beekwilder, J. (2013). Changes in polyphenol content during production of grape juice concentrate. Food Chemistry, 139(1-4), 521-526.
  11. Castro, R. C., Ribeiro, D. S. M., Santos, J. L. M., & Páscoa, R. N. M. J. (2021). Comparison of near infrared spectroscopy and Raman spectroscopy for the identification and quantification through MCR-ALS and PLS of peanut oil adulterants. Talanta, 230. doi:10.1016/j.talanta.2021.122373
  12. De Leonardis, A., Macciola, V., & Di Rocco, A. (2003). Oxidative stabilization of cold-pressed sunflower oil using phenolic compounds of the same seeds. Journal of the Science of Food and Agriculture, 83(6), 523-528. doi:https://doi.org/10.1002/jsfa.1376
  13. Francois, L., & Bernstein, L. (1964). Salt Tolerance of Safflower 1. Agronomy Journal, 56(1), 38-40.
  14. Genovese, A., Caporaso, N., & Sacchi, R. (2015). Temporal changes of virgin olive oil volatile compounds in a model system simulating domestic consumption: The role of biophenols. Food Research International, 77, 670-674. doi:https://doi.org/10.1016/j.foodres.2015.09.018
  15. Gıda, Tarım ve Hayvancılık Bakanlığı (2012). TÜRK GIDA KODEKSİ BİTKİ ADI İLE ANILAN YAĞLAR TEBLİĞİ, https://www.resmigazete.gov.tr/eskiler/2012/04/20120412-7.htm, Erişim Tarihi:24.08.2024.
  16. Gıda, Tarım ve Hayvancılık Bakanlığı (2017). TÜRK GIDA KODEKSİ ZEYTİNYAĞI VE PİRİNA YAĞI TEBLİĞİ, https://www.resmigazete.gov.tr/eskiler/2017/09/20170917-9.htm, Erişim Tarihi:12.06.2024.
  17. Guan, L., Wu, W., & Zheng, Y. (2008). Seed oil and fatty acids of different safflower genotypes and their correlations with agronomic traits and photosynthetic parameters.
  18. Günç Ergönül, P., & Aksoylu Özbek, Z. (2020). Chapter 29 - Cold pressed safflower (Carthamus tinctorius L.) seed oil. In M. F. Ramadan (Ed.), Cold Pressed Oils (pp. 323-333): Academic Press.
  19. Hagr, T., Adam, I., & Mohammed, E. (2021). GC/MS analysis and antioxidant activity of fixed oil from sudanese safflower (Carthamus tinctorius L) seeds. Int J Adv Biol Biomed Res, 9(2), 138-146.
  20. Hashempour-Baltork, F., Torbati, M., Azadmard-Damirchi, S., & Savage, G. P. (2018). Chemical, rheological and nutritional characteristics of sesame and olive oils blended with linseed oil. Advanced pharmaceutical bulletin, 8(1), 107.
  21. Isabel Minguez‐Mosquera, M., Rejano‐Navarro, L., Gandul‐Rojas, B., SanchezGomez, A. H., & Garrido‐Fernandez, J. (1991). Color‐pigment correlation in virgin olive oil. Journal of the American Oil Chemists' Society, 68(5), 332-336.
  22. İlkdoğan, U. (2012). Türkiye’de aspir üretimi için gerekli koşullar ve oluşturulacak politikalar. Fen Bilimleri Enstitüsü, Tarım Ekonomisi Anabilim Dalı, Doktora tezi, Ankara Üniversitesi.
  23. Kaur, A., Singh, B., Kaur, A., & Singh, N. (2019). Chemical, thermal, rheological and FTIR studies of vegetable oils and their effect on eggless muffin characteristics. Journal of food processing and preservation, 43(7), e13978.
  24. Kim, H.-W., Hwang, K.-E., Song, D.-H., Kim, Y.-J., Ham, Y.-K., Lim, Y.-B., Kim, C.-J. (2015). Wheat fiber colored with a safflower (Carthamus tinctorius L.) red pigment as a natural colorant and antioxidant in cooked sausages. LWT-Food science and Technology, 64(1), 350-355.
  25. Kıralan, M. (2014). Changes in volatile compounds of black cumin (Nigella sativa L.) seed oil during thermal oxidation. International journal of food properties, 17(7), 1482-1489.
  26. Kiralan, M., Özkan, G., Bayrak, A., & Ramadan, M. F. (2014). Physicochemical properties and stability of black cumin (Nigella sativa) seed oil as affected by different extraction methods. Industrial Crops and Products, 57, 52-58. doi:https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2014.03.026
  27. Korkmaz, A. (2023). Characterization and Comparison of Extra Virgin Olive Oils of Turkish Olive Cultivars. Molecules, 28(3), 1483. Retrieved from https://www.mdpi.com/1420-3049/28/3/1483
  28. Lee, Y.-C., Oh, S.-W., Chang, J., & Kim, I.-H. (2004). Chemical composition and oxidative stability of safflower oil prepared from safflower seed roasted with different temperatures. Food Chemistry, 84(1), 1-6. doi:https://doi.org/10.1016/S0308-8146(03)00158-4
  29. Nakagava, Y. (2020-rev.2022). Fast Analysis of Fatty Acids in Brans by GC/MS. Shimadzu Application News No. M306 A. Retrieved from https://www.shimadzu.com/an/sites/shimadzu.com.an/files/pim/pim_document_file/applications/application_note/13451/m306_e.pdf
  30. Naz, H. (2011). Nigella sativa: the miraculous herb. Pak. J. Biochem. Mol. Biol, 44(1), 44-48.
  31. Osei, J. B. D., Amiri, A., Wang, J., Tavares, M. T., Kiatkittipong, W., & Najdanovic-Visak, V. (2022). Recovery of oils and antioxidants from olive stones. Biomass and Bioenergy, 166, 106623. doi:https://doi.org/10.1016/j.biombioe.2022.106623
  32. Öztürk, Ö., Akınerdem, F., Bayraktar, N., & Ada, R. (2007). Konya koşullarında bazı aspir çeşitlerinin verim, verim unsurları ve yağ oranlarının incelenmesi. I. Ulusal Yağlı Tohumlu Bitkiler ve Biyodizel Sempozyumu, 28-31.
  33. Rahamatalla, A., Babiker, E., Krishna, A., & El Tinay, A. (1998). Changes in chemical composition, minerals and amino acids during seed growth and development of four safflower cultivars. Plant Foods for Human Nutrition, 52, 161-170.
  34. Roh, J. S., Han, J. Y., Kim, J. H., & Hwang, J. K. (2004). Inhibitory effects of active compounds isolated from safflower (Carthamus tinctorius L.) seeds for melanogenesis. Biological and Pharmaceutical Bulletin, 27(12), 1976-1978.
  35. Salem, N., Msaada, K., Hamdaoui, G., Limam, F., & Marzouk, B. (2011). Variation in phenolic composition and antioxidant activity during flower development of safflower (Carthamus tinctorius L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59(9), 4455-4463.
  36. Sharma, P., & Longvah, T. (2021). Nigella (Nigella sativa) Seed. In B. Tanwar & A. Goyal (Eds.), Oilseeds: Health Attributes and Food Applications (pp. 331-350). Singapore: Springer Singapore.
  37. Singh, V., & Nimbkar, N. (2006). Safflower (Carthamus tinctorius L.). Chapter, 6, 167-194.
  38. Soleimanifar, M., Niazmand, R., & Jafari, S. M. (2019). Evaluation of oxidative stability, fatty acid profile, and antioxidant properties of black cumin seed oil and extract. Journal of Food Measurement and Characterization, 13(1), 383-389. doi:10.1007/s11694-018-9953-7
  39. Sultan, M. T., Butt, M. S., Anjum, F. M., Jamil, A., Akhtar, S., & Nasir, M. (2009). Nutritional profile of indigenous cultivar of black cumin seeds and antioxidant potential of its fixed and essential oil. Pak. J. Bot, 41(3), 1321-1330.
  40. Suri, K., Singh, B., Kaur, A., Yadav, M. P., & Singh, N. (2019). Impact of infrared and dry air roasting on the oxidative stability, fatty acid composition, Maillard reaction products and other chemical properties of black cumin (Nigella sativa L.) seed oil. Food Chemistry, 295, 537-547.
  41. Turan, Z., & Göksoy, A. (1998). Yağ Bitkileri Uludağ Üniversitesi Ziraat Fakültesi Ders Notları No: 80. Bursa. S, 225.
  42. Velasco, L., & Fernandez-Martinez, J. (2001). Breeding for oil quality in safflower.
  43. Wang, P., Ou, S., & Peilin, C. (1999). Optimization of conditions for safflower cell culture and accumulation of cellicolous product tocopherols. Chinese Journal of Biotechnology, 15(4), 231-237.
  44. Zemour, K., Labdelli, A., Adda, A., Dellal, A., Talou, T., & Merah, O. (2019). Phenol Content and Antioxidant and Antiaging Activity of Safflower Seed Oil (Carthamus Tinctorius L.). Cosmetics, 6(3), 55. Retrieved from https://www.mdpi.com/2079-9284/6/3/55