Dergiler / Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2026 / Cilt: 19 Sayı: 1

Riosiguat'ın Soğukta Saklanan Koç Spermasında Motilite, Membran Fonksiyonu ve DNA Bütünlüğü Üzerindeki Etkileri

Effects of Riociguat on Sperm Motility, Membrane Function and DNA Integrity in Chilled Stored Ram Sperm

Serkan Ali Akarsu(ATATÜRK ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-4450-6540
Sayfa
17–21
Yayın Tarihi
2026-06-30
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Elde edilen bulgular, riosiguatın sperm fonksiyonları üzerinde doza bağlı bifazik etki gösterdiğini ortaya koymuştur.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada, koç spermasının 5°C’de kısa süreli saklanması sırasında sulandırıcıya eklenen riosiguatın sperm fonksiyonları üzerindeki etkileri araştırılmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Çalışmada üreme mevsiminde sekiz sağlıklı Tuj koçundan elde edilen ejakülatlar pooling yapılıp, 400×10⁶ sperm/mL yoğunluğa ayarlanarak beş eşit gruba ayrılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Elde edilen bulgular, riosiguatın sperm fonksiyonları üzerinde doza bağlı bifazik etki gösterdiğini ortaya koymuştur.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:DNA · koç · riosiguat

Özet

Bu çalışmada, koç spermasının 5°C’de kısa süreli saklanması sırasında sulandırıcıya eklenen riosiguatın sperm fonksiyonları üzerindeki etkileri araştırılmıştır. Çalışmada üreme mevsiminde sekiz sağlıklı Tuj koçundan elde edilen ejakülatlar pooling yapılıp, 400×10⁶ sperm/mL yoğunluğa ayarlanarak beş eşit gruba ayrılmıştır. Deney grupları; kontrol (0 µM), 0.5 µM, 5 µM, 50 µM ve 250 µM riosiguat içerecek şekilde hazırlanmış ve örnekler 5 °C’de 72 saat süreyle saklanmıştır. Spermatolojik değerlendirmeler 0. ve 72. saatlerde total motilite, canlılık, plazma membran bütünlüğü, anormal spermatozoon oranı ve DNA bütünlüğü açısından gerçekleştirilmiştir. Elde edilen bulgular, riosiguatın sperm fonksiyonları üzerinde doza bağlı bifazik etki gösterdiğini ortaya koymuştur. Özellikle 0.5 ve 5 µM riosiguat içeren gruplarda 72. saatte total motilite ve canlılık oranlarının daha iyi korunduğu, plazma membran bütünlüğünün ise kontrol grubuna kıyasla anlamlı düzeyde yüksek olduğu belirlenmiştir (P<0.05). Ayrıca, 72. saatte DNA bütünlüğü, kontrol grubuna kıyasla riociguat ile tedavi edilen tüm gruplarda önemli ölçüde daha yüksekti (P<0.05). Buna karşın, yüksek doz riosiguat (250 µM) uygulamasında spermatozoona ait baş ve kuyruk anomalilerinin arttığı gözlenmiştir. Sonuç olarak, riosiguatın düşük dozlarda (özellikle 0.5 ve 5 µM) koç spermasının kısa süreli soğukta saklanması sırasında motilite, membran fonksiyonu ve DNA bütünlüğünü koruyucu etki gösterdiği; ancak yüksek dozlarda morfolojik bozukluk riskini artırabileceği belirlenmiştir. Bu bulgular, riosiguatın uygun dozlarda kullanıldığında sperm sulandırıcılarına potansiyel bir katkı maddesi olabileceğini göstermektedir.

Abstract

This study aimed to investigate the effects of riociguat supplementation in semen extender on sperm functional parameters during short-term storage of ram semen at 5°C. Semen samples were collected from eight healthy, sexually mature Tuj rams during the breeding season, pooled, and diluted to a final concentration of 400×10⁶ sperm/mL. The samples were divided into five equal groups: control (0 µM), 0.5 µM, 5 µM, 50 µM and 250 µM riociguat. All groups were stored at 5 °C for 72 hours, and sperm evaluations were performed at 0 and 72 hours. Spermatological assessments included total motility, viability, plasma membrane integrity, abnormal spermatozoa rates, and DNA integrity. The results demonstrated that riociguat exerted a dose-dependent biphasic effect on sperm quality. At 72 hours, sperm samples supplemented with 0.5 and 5 µM riociguat showed significantly higher total motility and viability compared to the control group (P<0.05). Plasma membrane integrity was also better preserved in these low-dose groups, with the highest values observed in the 5 µM riociguat group. Moreover, DNA integrity at 72 hours was significantly higher in all riociguat-treated groups compared to the control (P<0.05). Conversely, high-dose riociguat supplementation (250 µM) resulted in an increased incidence of sperm head and tail abnormalities, indicating potential detrimental effects at excessive concentrations. These findings suggest that while physiological activation of the NO–sGC–cGMP pathway by low-dose riociguat supports mitochondrial function and cellular homeostasis, excessive stimulation may disrupt sperm morphology and function. In conclusion, low-dose riociguat supplementation, particularly at 0.5 and 5 µM, effectively preserves motility, membrane integrity, and DNA integrity of ram sperm during short-term chilled storage. However, higher doses may negatively affect sperm morphology. Riociguat may represent a novel additive for semen extenders, provided that optimal dose ranges are carefully determined.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Koca, R. H., Akarsu, S. A. (2026). Riosiguat'ın Soğukta Saklanan Koç Spermasında Motilite, Membran Fonksiyonu ve DNA Bütünlüğü Üzerindeki Etkileri. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 19 Sayı: 1, 17–21. https://doi.org/10.47027/duvetfd.1849764

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (18)

  1. Salamon S, Maxwell WMC (2000). Storage of ram semen. Anim Rep Sci., 62(1-3):77-111.
  2. Gillan L, Evans G, Maxwell W (2005). Flow cytometric evaluation of sperm parameters in relation to fertility potential. Theriogenology, 63(2):445-57.
  3. Evans G, Maxwell WC (1987). Salamons' artificial insemination of sheep and goats: Butterworths, Australia.
  4. Aitken RJ, Baker MA (2006). Oxidative stress, sperm survival and fertility control. Mol. Cell. Endocrinol., 250(1-2):66-69.
  5. Tremellen K (2008). Oxidative stress and male infertility—a clinical perspective. Hum Reprod Update.,14(3):243-258.
  6. Bucak MN, Çoyan K, Öztürk C ve ark. (2012). Methionine supplementation improves ram sperm parameters during liquid storage at 5°C. Cryobiology, 65(3):335-7.
  7. Uysal O, Bucak M (2007). Effects of oxidized glutathione, bovine serum albumin, cysteine and lycopene on the quality of frozen-thawed ram semen. Acta Vet Brno., 76(3):383-90.
  8. Marchetti C, Jouy N, Leroy-Martin B ve ark. (2004). Defossez A, Formstecher P, Marchetti P. Comparison of four fluorochromes for the detection of the inner mitochondrial membrane potential in human spermatozoa and their correlation with sperm motility. Hum Reprod Open., 19(10):2267-76.
  9. Paulenz H, Söderquist L, Pérez-Pé R ve ark. (2002). Effect of different extenders and storage temperatures on sperm viability of liquid ram semen. Theriogenology, 57(2):823-36.
  10. Seker U, Kavak DE, Guzel BC ve ark. (2022). Targeting soluble guanylate cyclase with Riociguat has potency to alleviate testicular ischaemia reperfusion injury via regulating various cellular pathways. Andrologia, 54(11):e14616.
  11. Makowski CT, Rissmiller RW, Bullington WM (2015). Riociguat: a novel new drug for treatment of pulmonary hypertension. Pharmacotherapy, 35(5):502-519.
  12. Aslanoglu B, Kaya S, Gunara SO, ve ark. (2024). Neuroprotective potential of a novel soluble guanylate cyclase stimulator the riociguat alone or in a combination manner with resveratrol in experimental stroke model in rats. Int J Morphol., 42(4):984-920.
  13. Özmen MF, Cirit Ü, Arıcı R ve ark. (2020). Evaluation of synergic effects of iodixanol and trehalose on cryosurvival of electroejaculated ram semen. Andrologia. 52(9):e13656.
  14. Özer Kaya Ş, Güngör İH, Dayan Cinkara S ve ark. (2021). Effect of different doses of hydrated C60 fullerene nanoparticles on ram semen during cool - storage. Turk J Vet Anim Sci. 45(1), 139-147.
  15. Söderquist L, Madrid-Bury N, Rodriguez-Martinez H (1997). Assessment of ram sperm membrane integrity following different thawing procedures. Theriogenology, 48(7):1115-1125.
  16. Akarsu SA, Gür C, Küçükler S, ve ark. (2024). Protective effects of syringic acid against oxidative damage, apoptosis, autophagy, inflammation, testicular histopathologic disorders, and impaired sperm quality in the testicular tissue of rats induced by mercuric chloride. Environ Toxicol., 39(10):4803-4814.
  17. Nur Z, Zık B, Ustuner B, ve ark. (2010). Effects of different cryoprotective agents on ram sperm morphology and DNAintegrity. Theriogenology, 73(9), 1267-1275.
  18. Open AI, (2025). Koçlardan sperma alma, işleme ve spermada yapılan analizler. AI-generated image. ChatGPT. Erişim Tarihi: 15.12.2025. Erişim Linki: https://chat.openai.com/.