Journals / Adnan Menderes Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi / 2018 / Cilt: 15 - Sayı: 2

Determination of Hypovirulence Strains of Cryphonectria parasitica by Using Non-Phenol-Chloroform dsRNA Analysis Method and Detection of Cryphonectria hypovirus 1 by RT-PCR

Cryphonectria parasitica’ nın Hipovirülent Strainlerinin Fenol ve Kloroform İçermeyen dsRNA Analiz Yöntemi ile Belirlenmesi ve Cryphonectria hypovirus 1’ in RT-PCR ile Tanılanması

Pages
25–32
Publication Date
2018-12-31
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

It was found that 15 of 25 dsRNAs belonged to the hypovirus Cryphonectria hypovirus 1 (CHV-1) by RT-PCR.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Chestnut blight, Cryphonectria parasitica, is a serious disease of Castanea spp. and causes bark cankers that progressively kill branches and trunks.
📊
Key Findings & Data:Hypovirulent cancers were first identified with the awareness of chestnut trees recovering in Italy in 1964, and followed by hypovirulent strains containing the dsRNA virus used as a biological control agent.
💡
Conclusion & Impact:It was found that 15 of 25 dsRNAs belonged to the hypovirus Cryphonectria hypovirus 1 (CHV-1) by RT-PCR.
🔬Design:Research Article
📍Scope:2008 Verileri
⚙️Variables:kestane kanseri · chestnut bligth · dsRNA analizi

Abstract

Chestnut blight, Cryphonectria parasitica, is a serious disease of Castanea spp. and causes bark cankers that progressively kill branches and trunks. Hypovirulent cancers were first identified with the awareness of chestnut trees recovering in Italy in 1964, and followed by hypovirulent strains containing the dsRNA virus used as a biological control agent. It has been determined that the hypovirulent isolates of C. parasitica have dsRNA which obtained from chestnut areas of the Black Sea and Marmara regions of Turkey. The dsRNA isolation and analysis method of Morris ve Dodds (1979) is usually used to determine the presence of dsRNA in hypovirulent isolates. In this study, to determine the presence of dsRNA in C. parasitica isolates, which may be hypovirulent, the method of Balijja and collaborators has been used (Balijja et al., 2008). This study was planned in order to investigate whether this method is applicable for conducting research in the future due to its advantages such as shorter time requirements, less amount of mycelium and chemicals used, and not involving phenol-chloroform compared to other isolation methods. For this purpose, the isolates collected from healing cankers of chestnut areas in the Aegean, Black Sea and Marmara regions of Turkey, where light-white mycelium formation was observed, were used. In this study, 30 isolates out of 68 were analyzed by Balijja et al.’s method and only 25 isolates were identified to contain dsRNA profile. dsRNA-containing six isolates were also analyzed by the method of Morris and Dodds, and the existence of dsRNA was confirmed. It was found that 15 of 25 dsRNAs belonged to the hypovirus Cryphonectria hypovirus 1 (CHV-1) by RT-PCR.

Özet

Kestane Kanseri (Cryphonectria parasitica), Castanea spp., nin önemli bir hastalığı olup dal ve gövdelerde kanserlere yol açmakta ve ağaçların zamanla ölmesine sebep olmaktadır. 1964 yılında İtalya’da iyileşmekte olan kestane ağaçlarında ilk olarak hipovirulent kanserlerin fark edilmesini takiben biyolojik kontrol ajanı olarak kullanılan dsRNA virüsü içeren hipovirulent strainler belirlenmiştir. Ülkemizde de Karadeniz ve Marmara Bölgeleri kestane alanlarından elde edilen C. parasitica‘nın hipovirulent izolatlarının dsRNA içermiş oldukları belirlenmiştir. Hipovirulent izolatlardaki dsRNA’nın varlığının belirlenmesinde genellikle Morris ve Dodds (1979)’un dsRNA izolasyon ve analiz yöntemi kullanılmaktadır. Bu çalışmada ise hipovirulent olabileceği belirlenen C. parasitica izolatlarında dsRNA varlığı belirlemek için Balijja ve ark. (2008) tarafından geliştirilen yöntem kullanılmıştır. Diğer izolasyon yöntemlerine kıyasla daha kısa süre gerektirmesi, kullanılan miselyum ve kimyasal madde miktarının daha az olması ve fenol- kloroform içermemesi gibi avantajları nedeniyle gelecekte ülkemiz ve bölgemizde bu konuda yapılacak olan araştırmalara kolaylık sağlaması amacıyla bu çalışma planlanmıştır. Bu amaçla Ege, Karadeniz ve Marmara Bölgeleri kestane alanlarından kestane kanseri hastalığı ile bulaşık ağaçların iyileşme belirtisi gösteren kanser yaralarının kabuk dokularından elde edilen ve açık renk-beyaz misel oluşumu gözlenen izolatlar kullanılmıştır. Çalışma kapsamında 68 izolattan 30 tanesi dsRNA ekstraksiyonuna olanak sağlayan Balijja ve ark. (2008)’ nın yöntemi ile analiz edilmiş ve 25 izolatın dsRNA profili içerdiği belirlenmiştir. dsRNA profili içeren altı izolat Morris ve Dodds (1979) yöntemi ile dsRNA varlığı yönünden doğrulanmıştır. Ardından, RT-PCR yöntemi ile 15 izolattan elde edilen dsRNA’ların hipovirüs Cryphonectria hypovirus 1 (CHV-1) olduğu belirlenmiştir.

🔖

Cite This Article

MERSİN, E., AÇIKGÖZ, S., ERİNCİK, Ö. (2018). Determination of Hypovirulence Strains of Cryphonectria parasitica by Using Non-Phenol-Chloroform dsRNA Analysis Method and Detection of Cryphonectria hypovirus 1 by RT-PCR. Adnan Menderes Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, Cilt: 15 - Sayı: 2, 25–32. https://ajindex.com/articles/451194

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (14)

  1. Açıkgöz S, Döken T, Erincik Ö, Değirmenci F (2009) Determination of hypovirulent isolates of Cryphonectria parasitica by dsRNA analysis in Aydın Province, Turkey. Acta Horticulture (866): 379–385.
  2. Akdoğan S, Erkan E (1968) Dikkat! Kestane kanseri hastalığı görüldü. Tomurcuk (1):4–5.
  3. Akıllı S, Katırcıoğlu YZ, Maden S (2009) Vegetative compatibility types of Cryphonectria parasitica, causal agent of chestnut blight, in the Black Sea region of Turkey. Forest Pathology (39):390–396.
  4. Akıllı S, Katırcıoğlu YK, Maden S (2011) Biological control of chestnut canker, caused by Cryphonectria parasitica, by antagonistic organisms and hypovirulent isolates. Turkish Journal Agriculture and Forestry (35): 515–523.
  5. Akıllı S, Ulubaş SÇ, Katırcıoğlu YZ, Maden S, Rigling, D (2012) Characterization of hypovirulent isolates of the chestnut blight fungus, Cryphonectria parasitica from the Marmara and Black Sea regions of Turkey. European Journal of Plant Pathology 135 (2): 323–334.
  6. Allemann C, Hoegger P, Heiniger U, Rigling D (1999) Genetic variation of Cryphonectria hypoviruses (CHV1) in Europe, assessed using RFLP markers. Molecular Ecology (8): 843–854.
  7. Anagnostakis SL, Day PR (1979) Hypovirulence conversion in Endothia parasitica. Phytopathology, (69): 1226–1229.
  8. Anagnostakis SL, Chen B, Geletka LM, Nuss DL (1998) Hypovirus transmission to ascospore progeny by fieldreleased transgenic hypovirulent strains of Cryphonectria parasitica. Phytopathology (88): 598–604.
  9. Anonim (2014) Türkiye İstatististik Kurumu Konularına Göre İstatistikler Veri Tabanı http://www.tuik.gov.tr Erişim Tarihi: 22.10.2016.
  10. Balijja A, Kvarnheden A, Turchetti T (2008) A non-phenolcholoroform extraction of double-Stranded RNA from plant and fungal tissues. Journal of Virological Methods (152): 32–37.
  11. Bissegger M, Rigling D, Heiniger U (1997) Population structure and disease development of Cryphonectria parasitica in European chestnut forests in the presence of natural hypovirulence. Phytopathology (87): 50–59.
  12. Bryner SF, Rigling D, Brunner PC (2012) Invasion history and demographic pattern of Cryphonectria hypovirus 1 across European populations of the chestnut blight fungus. Ecology and Evolution (2):3227–3241.
  13. Castano C, Bassie L, Oliach D, Gomez M, Medina V, Liu B, Colinas C (2014) Cryphonectria hypovirus 1 (CHV-1) survey reveals low occurrence and diversity of subtypes in NE Spain. Forest Pathology (45):51–59.
  14. Coşkun H, Kural I (1994) Kestane kanseri Cryphonectria parasitica (Murr.) Barr. Hastalığını