SavedAdd your journal

Journals / Laboratuvar Hayvanları Bilimi ve Uygulamaları Dergisi / 2025 / Cilt: 5 Sayı: 2

Pinealektomi Uygulanmış Erkek Sıçanlarda Spermatolojik Parametrelerin Değerlendirilmesi

Tutku Can Acısu(FIRAT ÜNİVERSİTESİ, VETERİNER FAKÜLTESİ, KLİNİK BİLİMLER BÖLÜMÜ, DÖLERME VE SUNİ TOHUMLAMA ANABİLİM DALI)0000-0002-0882-937X
Eda Çoban Ercan(FIRAT ÜNİVERSİTESİ, TIP FAKÜLTESİ, TEMEL TIP BİLİMLERİ BÖLÜMÜ, FİZYOLOJİ ANABİLİM DALI)0000-0003-4867-690X
Gamze Uçak(ATATÜRK ÜNİVERSİTESİ, VETERİNER FAKÜLTESİ, KLİNİK BİLİMLER BÖLÜMÜ, DÖLERME VE SUNİ TOHUMLAMA ANABİLİM DALI)0009-0006-3532-973X
Nida Badıllı(FIRAT ÜNİVERSİTESİ, VETERİNER FAKÜLTESİ, KLİNİK BİLİMLER BÖLÜMÜ, DÖLERME VE SUNİ TOHUMLAMA ANABİLİM DALI)0000-0002-1007-9723
İlker Çoban(İSTANBUL OKAN ÜNİVERSİTESİ, TIP FAKÜLTESİ, TEMEL TIP BİLİMLERİ BÖLÜMÜ, FİZYOLOJİ ANABİLİM DALI)0000-0002-1950-3463
Pages
73–80
Publication Date
2025-09-19
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Çalışma neticesinde; pinealektomi uygulamasının, melatonin düzeyini azaltmasına bağlı olarak sıçan spermasında total motilite ve yoğunluğun azalmasına, DNA fragmantasyonu ve anormal spermatozoon oranının ise artmasına neden olarak sperma kalitesini olumsuz yönde etkilediği ortaya koyulmuştur.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Pinealektomi, pineal bezin cerrahi olarak uzaklaştırılması işlemine verilen isimdir.
📊
Key Findings & Data:Sunulan çalışmada, pinealektominin sıçanlarda sperma kalitesi üzerine etkisinin araştırılması amaçlanmıştır.
💡
Conclusion & Impact:Çalışma neticesinde; pinealektomi uygulamasının, melatonin düzeyini azaltmasına bağlı olarak sıçan spermasında total motilite ve yoğunluğun azalmasına, DNA fragmantasyonu ve anormal spermatozoon oranının ise artmasına neden olarak sperma kalitesini olumsuz yönde etkilediği ortaya koyulmuştur.
🔬Design:Araştırma Makalesi
📍Scope:36 adet
⚙️Variables:Melatonin · pinealektomi · sıçan

Özet

Pinealektomi, pineal bezin cerrahi olarak uzaklaştırılması işlemine verilen isimdir. Pineal bez, beynin orta kısmında yer alan ve melatonin hormonunun salınımından sorumlu olan yapıdır. Melatonin, reprodüktif sistemin düzenlenmesinde rol oynayan önemli hormonlardandır. Sunulan çalışmada, pinealektominin sıçanlarda sperma kalitesi üzerine etkisinin araştırılması amaçlanmıştır. Çalışmada 36 adet erkek Spraque-Dawley cinsi sıçan kullanıldı. Sıçanlar eşit üç gruba ayrıldı: kontrol, sham, pinealektomi. Pinealektomi grubundan cerrahi yöntemle pineal bez uzaklaştırıldı. Sham grubunda ise pinealektomi işleminin yöntemleri uygulanıp yalnızca pineal bez uzaklaştırılmadı. Çalışma sonunda dekapitasyon sonrasında hayvanların sperma örnekleri alınarak incelendi. Sabah ve gece yapılan uygulamalar arasında anlamlı bir fark gözlenmedi. Kontrol grubunda vücut ağırlığı pinealektomi ve sham gruplarından daha yüksek ölçüldü. Testis ağırlığında gruplar arasında anlamlı bir fark gözlenmezken; sağ epididimis ağırlığı ile sol epididimis ağırlığı gruplar arasında fark gösterdi. Sağ epididimis ağırlığı en fazla pinealektomi grubunda görüldü. Eklenti üreme bezi ağırlıkları da gruplar arasında farklılık göstermedi. Total motilite ve sperma yoğunluğu değerleri; en yüksek kontrol grubundan elde edilirken en düşük değer pinealektomi grubundan elde edildi. Anormal spermatozoon oranı ve DNA fragmantasyonu ise en fazla pinealektomi grubunda gözlendi. Çalışma neticesinde; pinealektomi uygulamasının, melatonin düzeyini azaltmasına bağlı olarak sıçan spermasında total motilite ve yoğunluğun azalmasına, DNA fragmantasyonu ve anormal spermatozoon oranının ise artmasına neden olarak sperma kalitesini olumsuz yönde etkilediği ortaya koyulmuştur.

🔖

Cite This Article

Acısu, T. C., Ercan, E. Ç., Uçak, G., Badıllı, N., Çoban, İ. (2025). Pinealektomi Uygulanmış Erkek Sıçanlarda Spermatolojik Parametrelerin Değerlendirilmesi. Laboratuvar Hayvanları Bilimi ve Uygulamaları Dergisi, Cilt: 5 Sayı: 2, 73–80. https://doi.org/10.62425/jlasp.1569687

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (40)

  1. Akarsu, S. A., Gür, C., Küçükler, S., Akaras, N., İleritürk, M., & Kandemir, F. M. (2024). Protective Effects of Syringic Acid Against Oxidative Damage, Apoptosis, Autophagy, Inflammation, Testicular Histopathologic Disorders, and Impaired Sperm Quality in the Testicular Tissue of Rats Induced by Mercuric Chloride. Environmental toxicology, 39(10), 4803–4814. https://doi.org/10.1002/tox.24395
  2. Akarsu, S. A., İleritürk, M., Küçükler, S., Akaras, N., Gür, C., & Kandemir, F. M. (2024). Ameliorative effects of sinapic acid against vancomycin-induced testicular oxidative damage, apoptosis, inflammation, testicular histopathologic disorders and decreased epididymal sperm quality. Reproductive Toxicology, 129, 108666. https://doi.org/10.1016/j.reprotox.2024.108666
  3. Aleandri, V., Spina, V., & Morini, A. (1996). The pineal gland and reproduction. Human Reproduction Update, 2(3), 225-235. https://doi.org/10.1093/humupd/2.3.225
  4. Ashrafi, I., Kohram, H., & Ardabili, F. F. (2013). Antioxidative effects of melatonin on kinetics, microscopic and oxidative parameters of cryopreserved bull spermatozoa. Animal reproduction science, 139(1-4), 25-30. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2013.03.016
  5. Binkley, S. (1993). Structures and molecules involved in generation and regulation of biological rhythms in vertebrates and invertebrates. Experientia, 49, 648-653. https://doi.org/10.1007/bf01923946
  6. Casao, A., Vega, S., Palacín, I., Pérez‐Pe, R., Laviña, A., Quintín, F., Sevilla, E., Abecia, J., Cebrian‐Perez, J., & Forcada, F. (2010). Effects of melatonin implants during non‐breeding season on sperm motility and reproductive parameters in Rasa Aragonesa rams. Reproduction in domestic animals, 45(3), 425-432. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01215.x
  7. Dair, E. L., Simoes, R. S., Simões, M. J., Romeu, L. R. G., Oliveira-Filho, R. M., Abi Haidar, M., Baracat, E. C., & Soares Jr, J. M. (2008). Effects of melatonin on the endometrial morphology and embryo implantation in rats. Fertility and sterility, 89(5), 1299-1305. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.03.050
  8. De Butte, M., & Pappas, B. (2007). Pinealectomy causes hippocampal CA1 and CA3 cell loss: reversal by melatonin supplementation. Neurobiology of aging, 28(2), 306-313. https://doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2005.12.004
  9. de Lima, E., Soares Jr, J. M., Garrido, Y. d. C. S., Valente, S. G., Priel, M. R., Baracat, E. C., Cavalheiro, E. A., da Graça Naffah-Mazzacoratti, M., & Amado, D. (2005). Effects of pinealectomy and the treatment with melatonin on the temporal lobe epilepsy in rats. Brain research, 1043(1-2), 24-31. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2005.02.027
  10. Diekman, M., Braun, W., Peter, D., & Cook, D. (2002). Seasonal serum concentrations of melatonin in cycling and noncycling mares. Journal of animal science, 80(11), 2949-2952. https://doi.org/10.2527/2002.80112949x
  11. Eleiwe, S. A., Al-Taii, A. A., & Mobarak, H. J. (2008). Effect of melatonin on histology of the epididymidis of adult rat. Iraqi Journal of Medical Sciences, 6(2).
  12. Espino, J., Bejarano, I., Ortiz, Á., Lozano, G. M., García, J. F., Pariente, J. A., & Rodríguez, A. B. (2010). Melatonin as a potential tool against oxidative damage and apoptosis in ejaculated human spermatozoa. Fertility and sterility, 94(5), 1915-1917. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.12.082
  13. Forsling, M. L., Stoughton, R. P., Zhou, V., Kelestimur, H., & Demaine, C. (1993). The role of the pineal in the control of the daily patterns of neurohypophysial hormone secretion. Journal of pineal research, 14(1), 45-51. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.1993.tb00484.x
  14. Frungieri, M. B., Calandra, R. S., & Rossi, S. P. (2017). Local actions of melatonin in somatic cells of the testis. International journal of molecular sciences, 18(6), 1170. https://doi.org/10.3390/ijms18061170
  15. Goldman, B. D., & Nelson, R. J. (2020). Melatonin and seasonality in mammals. Melatonin, 225-252. https://doi.org/10.1201/9781003068570-9
  16. Horodincu, L., & Solcan, C. (2023). Influence of different light spectra on melatonin synthesis by the pineal gland and influence on the immune system in chickens. Animals, 13(13), 2095. https://doi.org/10.3390/ani13132095
  17. İnanç, M. E., Güngör, Ş., Avdatek, F., Yeni, D., Gülhan, M. F., Olğaç, K. T., Denk, B., & Taşdemir, U. (2022). Thymoquinone improves motility, plasma membrane integrity and DNA integrity of frozen–thawed ram semen. Andrologia, 54(10), e14547. https://doi.org/10.1111/and.14547
  18. Kennaway, D. J. (2023). The mammalian gastro‐intestinal tract is a NOT a major extra‐pineal source of melatonin. Journal of pineal research, 75(4), e12906. https://doi.org/10.1111/jpi.12906
  19. Kim, M., Lee, S. M., Jung, J., Kim, Y. J., Moon, K. C., Seo, J. H., Ha, T. K., & Ha, E. (2020). Pinealectomy increases thermogenesis and decreases lipogenesis. Molecular Medicine Reports, 22(5), 4289-4297. https://doi.org/10.3892/mmr.2020.11534
  20. Kuszak, J., & Rodin, M. (1977). A new technique of pinealectomy for adult rats. Experientia, 33, 283-284. https://doi.org/10.1007/bf02124114
  21. Lee, B. H., Bussi, I. L., de la Iglesia, H. O., Hague, C., Koh, D. S., & Hille, B. (2020). Two indoleamines are secreted from rat pineal gland at night and act on melatonin receptors but are not night hormones. Journal of pineal research, 68(2), e12622. https://doi.org/10.1111/jpi.12622
  22. Lerchl, A., & Schlatt, S. (1993). Influence of photoperiod on pineal melatonin synthesis, fur color, body weight, and reproductive function in the female Djungarian hamster, Phodopus sungorus. Neuroendocrinology, 57(2), 359-364. https://doi.org/10.1159/000126380
  23. Maestroni, G. J. (1993). The immunoneuroendocrine role of melatonin. Journal of pineal research, 14(1), 1-10. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.1993.tb00478.x
  24. Malpaux, B., Chemineau, P., & Pelletier, J. (2020). Melatonin and reproduction in sheep and goats. In Melatonin, (pp. 253-287). https://doi.org/10.1201/9781003068570-10
  25. Masson-Pévet, M., & Gauer, F. (2004). Seasonality and melatonin receptors in the pars tuberalis in some long day breeders. Neurosignals, 3(2), 63-70. https://doi.org/10.1159/000109527
  26. Mir, S. M., Aliarab, A., Goodarzi, G., Shirzad, M., Jafari, S. M., Qujeq, D., Samavarchi Tehrani, S., & Asadi, J. (2022). Melatonin: A smart molecule in the DNA repair system. Cell Biochemistry and Function, 40(1), 4-16. https://doi.org/10.1002/cbf.3672
  27. Mohammadi, S., & Zahmatkesh, M. (2023). A surgical modification in the technique of rat pinealectomy. Anatomical Science International, 98(2), 164-175. https://doi.org/10.1007/s12565-022-00683-6
  28. Murala, S., Nagarajan, E., & Bollu, P. C. (2022). Melatonin. In Neurochemistry in Clinical Practice (pp. 149-163). Springer. https://doi.org/10.1007/978-3-031-07897-2_8
  29. Nir, I., & Hirschmann, N. (1980). The effect of pinealectomy on serum progesterone and oestradiol levels during the last stage of pregnancy in rats. Experientia, 36(2), 259-260. https://doi.org/10.1007/bf01953769
  30. Ortiz, A., Espino, J., Bejarano, I., Lozano, G., Monllor, F., García, J., Pariente, J., & Rodríguez, A. (2011). High endogenous melatonin concentrations enhance sperm quality and short‐term in vitro exposure to melatonin improves aspects of sperm motility. Journal of pineal research, 50(2), 132-139. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.2010.00822.x
  31. Paiva, R. V. N., Mondes, P. H. d. L., Brandão, B. d. J., Sant’Anna, J. N., Freire dos Santos, M. E., Fighera, Y. M., Santos, L. C., Markus, R. P., Fernandes, P. A. C. M., & Silva, J. F. (2024). Effects of acute hypothyroidism on plasma melatonin and Aanat and Asmt expression in the pineal gland and gonads of rats. Frontiers in Endocrinology, 15, 1322867. https://doi.org/10.3389/fendo.2024.1322867
  32. Pekmez, H., Kuş, İ., Çolakoğlu, N., Ögetürk, M., Kuloğlu, T., & Sarsılmaz, M. (2005). Pinealektomili Sıçanlarda Uterusun Işık Mikroskop Düzeyde İncelenmesi. Fırat Tıp Dergisi, 10(3), 92-95.
  33. Reiter, R. J. (1991). Neuroendocrine effects of light. International journal of biometeorology, 35, 169-175. https://doi.org/10.1007/bf01049063
  34. Sarabia, L., Maurer, I., & Bustos-Obregon, E. (2009). Melatonin prevents damage elicited by the organophosphorous pesticide diazinon on mouse sperm DNA. Ecotoxicology and Environmental Safety, 72(2), 663-668. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2008.04.023
  35. Semercioz, A., Onur, R., Ogras, S., & Orhan, I. (2003). Effects of melatonin on testicular tissue nitric oxide level and antioxidant enzyme activities in experimentally induced left varicocele. Neuroendocrinology Letters, 24(1/2), 86-90.
  36. Sun, T.-C., Li, H.-Y., Li, X.-Y., Yu, K., Deng, S.-L., & Tian, L. (2020). Protective effects of melatonin on male fertility preservation and reproductive system. Cryobiology, 95, 1-8. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2020.01.018
  37. Swanson, E. W., & Bearden, H. (1951). An eosin-nigrosin stain for differentiating live and dead bovine spermatozoa. Journal of animal science, 10(4), 981-987. https://doi.org/10.2527/jas1951.104981x
  38. Tuncer, S. Ç., Akarsu, S. A., Küçükler, S., Gür, C., & Kandemir, F. M. (2023). Effects of sinapic acid on lead acetate‐induced oxidative stress, apoptosis and inflammation in testicular tissue. Environmental Toxicology, 38(11), 2656-2667. https://doi.org/10.1002/tox.23900
  39. Varisli, O., Uguz, C., Agca, C., & Agca, Y. (2009). Various physical stress factors on rat sperm motility, integrity of acrosome, and plasma membrane. Journal of andrology, 30(1), 75-86. https://doi.org/10.2164/jandrol.107.004333
  40. Viola, I., Canto, F., & Abecia, J. A. (2023). Effects of melatonin implants on locomotor activity, body temperature, and growth of lambs fed a concentrate-based diet. Journal of Veterinary Behavior, 68, 24-31. https://doi.org/10.1016/j.jveb.2023.08.004