Dergiler / Türkiye Entomoloji Dergisi / 2019 / Cilt: 43 - Sayı: 4

Larva dönemindeki Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae)’dan bir esterazın saflaştırılması ve karakterizasyonu

Purification and characterization of an esterase from larval Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae)

Sayfa
367–376
Yayın Tarihi
2019-12-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Tüm bu veriler, enzimin diğer böcek türlerinden bildirilen esterolitik enzimlerden farklı kinetik özellik ve molekül kütlesi ile klasik bir esteraz olabileceğini göstermektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae) Rosaceae türlerinde zararlara yol açan en önemli böcek türlerinden birisidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Biyokimyasal veri elde etmek için Cumhuriyet Üniversitesi, Fen Fakültesi, Biyokimya Anabilim Dalı laboratuvarında 2018 yılında başlatılan bu çalışma ile D. fructuum’un larvasından bir esteraz (EC 3.1.1.X) Q Sefaroz anyon değişim, fenil Sefaroz CL-4B ve Sefakril S 100 HR jel filtrasyon kromatografisini kullanarak saflaştırılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Tüm bu veriler, enzimin diğer böcek türlerinden bildirilen esterolitik enzimlerden farklı kinetik özellik ve molekül kütlesi ile klasik bir esteraz olabileceğini göstermektedir.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:2018 Verileri
⚙️Değişkenler:Kolon kromatografisi · Diplolepis fructuum · esteraz

Özet

Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae) Rosaceae türlerinde zararlara yol açan en önemli böcek türlerinden birisidir. Biyokimyasal veri elde etmek için Cumhuriyet Üniversitesi, Fen Fakültesi, Biyokimya Anabilim Dalı laboratuvarında 2018 yılında başlatılan bu çalışma ile D. fructuum’un larvasından bir esteraz (EC 3.1.1.X) Q Sefaroz anyon değişim, fenil Sefaroz CL-4B ve Sefakril S 100 HR jel filtrasyon kromatografisini kullanarak saflaştırılmıştır. Enzim 6.94 U/mg protein spesifik aktivite, yaklaşık 29 kat saflık ve %8.80 verime sahipti. Nativ-PAGE çalışmalarında sadece bir aktivite bandı gözlenmiştir. Nativ-PAGE ve SDS-PAGE tekniklerini kullanarak, esterazın molekül kütlesi yaklaşık olarak 60 kDa olarak tahmin edilmiştir. Kinetik datadan, enzimin optimum sıcaklık ve pH’ı sırasıyla 40ºC ve 9.0 olarak belirlenmiştir. Enzim, 40ºC ve pH 8.0’da 4 saat kararlıydı. 4 nitrofenil butirat (p-NPB) substrat olarak kullanılarak, Km ve Vmax değerlerinin 0.035 mM and 1.41 µmol/mL.dk olduğu bulunmuştur. Enzim en yüksek aktivitesinip-NPB (%100) ve 4-nitrofenil asetat (%52) üzerinde sergilemiştir. Tüm bu veriler, enzimin diğer böcek türlerinden bildirilen esterolitik enzimlerden farklı kinetik özellik ve molekül kütlesi ile klasik bir esteraz olabileceğini göstermektedir.

Abstract

Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae) is one of the important insect species that causes damages on Rosaceae species. With this study commenced in 2018 at the laboratory of Department of Biochemistry, Faculty of Science, Cumhuriyet University to get a biochemical data, an esterase (EC 3.1.1.X) from the larvae of D. fructuum was purified using Q Sepharose anion exchange, phenyl Sepharose CL-4B and Sephacryl S100 HR gel filtration chromatography, respectively. The enzyme had 6.94 U/mg protein specific activity, about 29-fold purity, and 8.8% yield. Only one activity band was observed in native-PAGE studies. The molecular weight of the esterase was estimated as 60 kDa using native-PAGE and SDS-PAGE techniques. By the kinetic data, optimum temperature and pH for the enzyme was determined as 40ºC and 9.0, respectively. The enzyme was stable for 4 h at 40ºC and pH 8.0. Km and Vmax values were found to be 0.035 mM and 1.41 µmol/mL.min., using 4-nitrophenyl butyrate (p-NPB) as substrate. The enzyme exhibited its highest activities on p-NPB (100%) and 4-nitrophenyl acetate (52%). All of these data indicate that the enzyme might be a typical esterase with different kinetic properties and molecular weight than esterolytic enzymes reported from other insect species.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ALTHALJI, M., GÖRGÜN, S. (2019). Larva dönemindeki Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae)’dan bir esterazın saflaştırılması ve karakterizasyonu. Türkiye Entomoloji Dergisi, Cilt: 43 - Sayı: 4, 367–376. https://ajindex.com/articles/93071

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Arrese, E. L. & M. A. Wells, 1994. Purification and properties of a phosphorylatable triacylglycerol lipase from the fat body of an insect, Manduca sexta. Journal of Lipid Research, 35: 1652-1660.
  2. Fahmy, A. S., S. S. Abdel-Gany, T. M. Mohamed & S. A. Mohamed, 2004. Esterase and lipase in camel tick Hyalomma dromedarii (Acari: Ixodidae) during embryogenesis. Comparative Biochemistry and Physiology Part B, 137: 159-168.
  3. Akpınar, M. A., S. Görgün, L. Gençer & A. Aktümsek, 2017. Fatty acid composition of Diplolepis fructuum (Rübsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae) during its developmental stages. Journal of the Entomological Research Society, 19 (3): 109-118.
  4. Ma, M., H. Jia, X. Cui, N. Zhai, H. Wang & X. Guo, 2018. Isolation of carboxylesterase (esterase FE4) from Apis cerana cerana and its role in oxidative resistance during adverse environmental stress. Biochimie, 144: 85-97.
  5. Nauen, R., 2007. Insecticide resistance in disease vectors of public health importance. Pest Management Science, 63: 628-633.
  6. Qerioz, J. A., C. T. Tomaz & J. M. S. Cabral, 2001. Hydrophobic interaction chromatography of proteins. Journal of Biotechnology, 87: 143-159.
  7. Raman, A., 2011. Morphogenesis of insect-induced plant galls: facts and questions. Flora, 206: 517-533.
  8. Ronquist, F., 1999. Phylogeny, classification and evolution of the Cynipoidea. Zoologica Scripta, 28: 139-164.
  9. Rossiter, L. C., C. M. Conyers, A. D. MacNicoll & H. A. Rose, 2001. Two qualitatively different B-esterases from two organophosphate-resistant strains of Oryzaephilus surinamensis (Coleoptera: Silvanidae) and their roles in fenitrothion and chlorpyrifos-methyl resistance. Pesticide Biochemistry and Physiology, 69: 118-130.
  10. Arrese, E. L., R. T. Patel & J. L. Soulages, 2006. The main triglyceride-lipase from the insect fat body is an active phospholipase A1: identification and characterization. Journal of Lipid Research, 47: 2656-2667.
  11. Yaicharoen, R., R. Kiatfuengfoo, T. Chareonviriyaphap & P. Rongnoparut, 2005. Characterization of deltamethrin resistance in field populations of Aedes aegypti in Thailand. Journal of Vector Ecology, 30 (1): 144-150.
  12. Bhardwaj, K., A. Raju & R. Rajasekharan, 2001. Identification, purification, and characterization of a thermally stable lipase from rice bran. A new member of the (phospho) lipase family. Plant Physiology, 127 (4): 1728-1738.
  13. Bollag, D. M., M. D. Rozycki & S. J. Edelstein, 1996. Protein Methods. A John Wiley and Sons Inc. Publication, 432pp. Bompensieri, S., R. Gonzal