KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Afyon Kocatepe Üniversitesi Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi / 2023 / Cilt: 23 - Sayı: 1

Laktik Asit Bakterilerinin (LAB) Citrobacter spp. İzolatlarına Karşı Antimikrobiyal ve Antibiyofilm Aktivitelerinin Değerlendirilmesi

Evaluation of Antimicrobial and Antibiofilm Activities of Lactic Acid Bacteria (LAB) Against Citrobacter spp. Isolates

Safiye Elif KORCAN
Sevim Feyza ERDOĞMUŞ
Mine ERİK
Arzu ÜNAL
Beytullah KENAR
Sayfa
27–36
Yayın Tarihi
2023-03-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Antibiyofilm test sonuçlarına göre L1, L2, L4, L6, L7, L8 ekstraktlarının en yüksek dozlarının tüm Citrobacter izolatlarında biyofilm oluşumunu engellendiği görülmüştür.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmanın amacı; Citrobacter izolatlarına karşı laktik asit bakterilerinin antimikrobiyal ve antibiyofilm aktivitelerini belirlemektir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmada kullanılan Citrobacter izolatları (C1, C2, C3) BD PhoenixTM otomasyon sistemi ile Citrobacter braakii olarak tanımlanmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Antibiyofilm test sonuçlarına göre L1, L2, L4, L6, L7, L8 ekstraktlarının en yüksek dozlarının tüm Citrobacter izolatlarında biyofilm oluşumunu engellendiği görülmüştür.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Antibiyobiyotik direnci · Biyofilm · Citrobacter spp.

Özet

Bu çalışmanın amacı; Citrobacter izolatlarına karşı laktik asit bakterilerinin antimikrobiyal ve antibiyofilm aktivitelerini belirlemektir. Bu çalışmada kullanılan Citrobacter izolatları (C1, C2, C3) BD PhoenixTM otomasyon sistemi ile Citrobacter braakii olarak tanımlanmıştır. Biyofilm oluşumu Kongo kırmızılı agar ve mikrotitrasyon plak metodu kullanılarak incelenmiştir. Antibiyogram test sonuçlarına göre, tüm izolatlar amfisilin ve amoksilin-klavulanata karşı dirençli bulunmuştur. Antimikrobiyal aktivite test sonuçları laktik asit bakterilerinden elde edilen ekstraktların (Lactococcus lactis (L1), Lactobacillus fermentum (L2), Enterococcus faecalis (L3), Lactobacillus casei (L4), Lactobacillus plantarum (L5), Enterococcus faecium (L6), Lactobacillus curvatus (L7), Enterococcus durans (L8) Lactococcus garviae (L9), Enterococcus faecalis (L10)) Citrobacter braakii üzerinde antimikrobiyal ve antibiyofilm etkinliğinin olduğu saptanmıştır. En yüksek antimikrobiyal etki C2 izolatı üzerinde ve en düşük etki C3 izolatı üzerinde belirlenmiştir. Antibiyofilm test sonuçlarına göre L1, L2, L4, L6, L7, L8 ekstraktlarının en yüksek dozlarının tüm Citrobacter izolatlarında biyofilm oluşumunu engellendiği görülmüştür.

Abstract

The aim of this research was to evaluate the antimicrobial and antibiofilm effects of LABs against Citrobacter isolates. In this study, Citrobacter isolates (C1, C2, C3) which were identified as Citrobacter braakii with the BD PhoenixTM automation system. Biofilm formation investigated by Congo red agar method and microtiter plate method. Acording to antibiogram test results, all isolates was resistance to ampicillin, amoxicillin-clavulanate. Antimicrobial activity test results revealed that extracts of LABs (Lactococcus lactis (L1), Lactobacillus fermentum (L2), Enterococcus faecalis (L3), Lactobacillus casei (L4), Lactobacillus plantarum (L5), Enterococcus faecium (L6), Lactobacillus curvatus (L7), Enterococcus durans (L8) Lactococcus garviae (L9), Enterococcus faecalis (L10)) extracts have an antimicrobial effect on Citrobacter braakii. The highest antimicrobial effect determined on C2 isolate and the lowest effect determined on C3. According to antibiofilm test results, it was observed that high doses of L1, L2, L4, L6, L7, L8 extracts inhibited biofilm formation in all Citrobacter isolates.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KORCAN, S. E., ERDOĞMUŞ, S. F., ERİK, M., ÜNAL, A., KENAR, B. (2023). Laktik Asit Bakterilerinin (LAB) Citrobacter spp. İzolatlarına Karşı Antimikrobiyal ve Antibiyofilm Aktivitelerinin Değerlendirilmesi. Afyon Kocatepe Üniversitesi Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi, Cilt: 23 - Sayı: 1, 27–36. https://ajindex.com/articles/884696

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (11)

  1. Aydemir-Hançer, D., 2018. The biological significance of bacterial biofilms and effective control strategies. Turkish Journal of Life Sciences, 3(1), 218-230.
  2. Bae, I.K., Park, I., Lee, J.J., Sun, H.I., Park, K.S., Lee, J.E., 2010. Novel variants of the qnrB gene, qnrB22 and qnrB23, in Citrobacter werkmanii and Citrobacter freundii. Antimicrobrobial Agents and Chemotheraphy, 54, 3068-3069.
  3. Bayram, M. and Yıldırım, Z., 2016. Isolation of bacteriocin producing bacterium (Enterococcus faecium) from white cheese and characterization of its bacteriocin. Gaziosmanpasa Journal of Scientific Research, 13, 103-115.
  4. Bendjeddou, K., Fons, M., Strocker, P., Sadoun, D., 2012. Characterization and purification of a bacteriocin from Lactobacillus paracasei subsp. paracasei BMK2005, an intestinal isolate active against multidrug-resistant pathogens. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 28 (4), 1543-1552.
  5. Carminati, D., Giraffa, G., Quiberoni, A., Binetti, A., Suárez, V., Reinheimer, J., 2010. Advances and trends in starter cultures for dairy fermentations. Biotechnology of lactic acid bacteria novel applications edited by Fernanda Mozzi, Raul R. Raya and Graciela M. Vignolo Blackwell Publishing, 177-192. Cerning J., 1990. Exocellular polysaccharides produced by lactic acid bacteria. FEMS Microbiology Reviews, 87, 113-130.
  6. Ciccio, P., Vergara, Di A., Festino, A.R., Paludi, D., Zanardi, E., Ghidini S., Lanieri, A., 2015. Biofilm formation by Staphylococcus aureus on food contact surfaces: Relationship with temperature and cell surface hydrophobicity. Food Control, 50, 930-936.
  7. Corcoran, M., Morris, D., De Lappe N., O'Connorb, J., Lalor, P., Dockery, P., Cormican, M., 2014. Commonly used disinfectants fail to eradicate Salmonella enterica biofilms from food contact surface materials. Applied and Environmental Microbiology, 80(4), 1507-1514.
  8. Costerton, J.W., 1999. Introduction to biofilm. International Journal of Antimicrobial Agents, 11, 217-221.
  9. Deziel, E., Comeau, Y., Villemur, R., 2001. Initiation of biofilm formation by P. aeruginosa 57RP correlates with emergence of hyperpiliated and highly adherent phenotypic variants deficient in swimming, swarming, and twitching motilities. Journal of Bacteriology, 183, 1195-1204.
  10. Dinçer, E., Kıvanç, M., Karaca, H., 2010. Lactic acid bacteria as biopreservative and bacteriocins. Journal of Food, 35 (1), 1-8.
  11. Dixon, M., Flint, S., Palmer, J., Love, R., Biggs, P., Beuger, A., 2018. Analysis of culturable and non-culturable b