Dergiler / Trakya University Journal of Natural Sciences / 2020 / Cilt: 21 - Sayı: 2

PIONEERING in vitro STUDIES FOR CALLUS FORMATION OF Colchicum chalcedonicum Azn.

Sayfa
131–137
Yayın Tarihi
2020-10-15
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bununla birlikte, çalışmamız endemik tür olan C. chalcedonicum'un in vitro korunması ve kallus oluşum protokolünün geliştirilmesinde öncü bir çalışmadır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Colchicum calcedonicum Azn, pek çok endemik bitki türünün görüldüğü Türkiye'de yayılış gösteren endemik türlerden biridir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Toprak altında uzun-oval şekilli soğanı ile genellikle 3-4 yapraklıdır.
💡
Sonuç & Katkı:Bununla birlikte, çalışmamız endemik tür olan C. chalcedonicum'un in vitro korunması ve kallus oluşum protokolünün geliştirilmesinde öncü bir çalışmadır.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Colchicum chalcedonicum · Tissue Culture · Callus Formation

Özet

Colchicum calcedonicum Azn, pek çok endemik bitki türünün görüldüğü Türkiye'de yayılış gösteren endemik türlerden biridir. Toprak altında uzun-oval şekilli soğanı ile genellikle 3-4 yapraklıdır. Kallus kültürü kullanarak endemik türlerin in vitro üretimi, bu türlerin korunmasında umut verici bir çalışma haline gelmiştir. Bu çalışmanın amacı, in vitro C. chalcedonicum üretimi için verimli kallus protokolünün oluşturulabilmesidir. Explantların sterilizasyonunda, 20 dk %0.25 (w/v) cıva klorür (HgCl2) kullanılmıştır. Cıva klorüre ilaveten, yüzey sterilizasyonunda 30 dk boyunca Tween 80, %6,5 NaCl ile birlikte kullanılmıştır. Bu çalışmada, 19 farklı besiyeri kullanılmış olup primer kallus oluşumu 2,4-D (2 mg L-1), 2IP (0,5 mg L-1), %3 sükroz ve %0,05 aktif karbon içeren Murashige & Skoog bazal besiyerinde elde edilmiştir. Çalışmamız, aktif karbon kullanımının primer kallus oluşumunda etkili olduğunu göstermiştir. Bu çalışma, C. chalcedonicum’un primer kallus oluşumu için ilk rapordur. Bununla birlikte, çalışmamız endemik tür olan C. chalcedonicum'un in vitro korunması ve kallus oluşum protokolünün geliştirilmesinde öncü bir çalışmadır.

Abstract

Colchicum calcedonicum Azn is one of the endemic species distributed in Turkey, where many endemic plant species occur. It has long-oval shaped corm under the soil, and usually 3-4 leaves on it. In vitro production of endemic species using callus culture has become promising study for conservation. The aim of this study is to generate an efficient callus protocol for in vitro production of C. chalcedonicum. To sterilize the explants, 0.25% (w/v) mercuric chloride (HgCl2) was used for 20 min. In addition to mercuric chloride, surface sterilization was conducted by using 6.5% NaCl with Tween 80 for 30 min. We used 19 different mediums and the primary callus formation was obtained in Murashige & Skoog’s basal medium (MS) supplemented with 2,4-D (2 mg L-1), 2IP (0.5 mg L-1), 3% sucrose and 0.05% active carbon. Our study demonstrated the active carbon usage was effective for the primary callus formation. This study is the first report for primary callus formation of C. chalcedonicum. However, our work is a pioneering study to improve callus formation protocol system for in vitro conservation of endemic species C. chalcedonicum.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KARLIK, E., DEĞER, M., ÜZEN, E., GOZUKİRMİZİ, N. (2020). PIONEERING in vitro STUDIES FOR CALLUS FORMATION OF Colchicum chalcedonicum Azn.. Trakya University Journal of Natural Sciences, Cilt: 21 - Sayı: 2, 131–137. https://ajindex.com/articles/83504

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (12)

  1. Akan, H. & Eker, İ. 2005. Check-list of the genus Colchicum in the flora of Turkey. Turkish Journal of Botany, 29: 327-331
  2. Aznavour, G.Y. 1897. Note sur la flore des environs dc Constantinople. Bulletin de la Société Botanique de France, 44: 164-177
  3. Bisi, A., Gobbi, S., Merolle, L., Farruggia, G., Belluti, F., Rampa, A., Molnar, J., Malucelli, E. & Cappadone, C. 2015. Design, synthesis and biological profile of new inhibitors of multidrug resistance associated proteins carrying a polycyclic scaffold. European Journal of Medicinal Chemistry, 92: 471-80.
  4. Brickell, C.D. 1984. Colchicum L, In: Davis PH (ed) Flora of Turkey and the East Aegean Islands. Vol. 8, University Press, Edinburgh
  5. Chang, C., Chen, C.T., Tsai, Y.C. & Chang, W.C. 2000. A tissue culture protocol for propagation of a rare plant, Lilium speciosum Thunb. var. gloriosoides Baker. Botanical bulletin of Academia Sinica, 41: 139-142.
  6. Cocco, G., David, C.C. & Pandolfi, S. 2010. Colchicine in Clinical Medicine. A Guide for Internists. European Journal of Internal Medicine, 21: 503-508.
  7. Combeau, C., Provost, J., Lancelin, F., Tournoux, Y., Prod’homme, F., Herman, F., Lavelle, F., Leboul, J. & Vuilhorgne, M. 2000. RPR112378 and RPR115781: two representatives of a new family of microtubule assembly inhibitors. Molecular Pharmacology, 57(3): 553-63.
  8. Dahlgren, R.M.T., Clifford, H.T. & Yeo, P.F. 1985. The Families of the Monocotyledons -Structure, Evolution and Taxonomy. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, New York
  9. Daradkeh, N.Q., Shibli, R.A., Makhadmeh, I.M., Alali, F. & Al-Qudah, T.S. 2012. Cell suspension and in vitro production of colchicine in wild Colchicum hierosolymitanum Feib. The Open Conference Proceedings Journal, 3: 52-59.
  10. Dumontet, C. & Sikic, B.I. 1999. Mechanisms of action of and resistance to antitubulin agents: microtubule dynamics, drug transport, and cell death. Journal of Clinical Oncology, 17(3): 1061-1070.
  11. Engelmann, F. 1997. In vitro conservation methods. In: Ford-Lloyd BV, Newburry HJ, Callow JA, (Eds) Biotechnology and plant genetic resources conservation and use. Wallingford: CABI, pp. 119-162
  12. Engelmann F. 1998. In vitro conservation of horticultural genetic resources: Review of th