Dergiler / Lalahan Hayvancılık Araştırma Enstitüsü Dergisi / 2005 / Cilt: 45 - Sayı: 1

Östrustaki inek serumu ve fötal buzağı serumunun in vitro embriyo elde edilmesine etkisi

The effect of estrous cow serum and fetal calf serum on in vitro embryo production

Sayfa
1–6
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak, Fötal Buzağı Serumunun (FCS), in vitro morula-blastosist elde etmede Östrustaki İnek Serumuna (ECS) göre daha üstün olduğu görülmüştür.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada, in vitro maturasyon medrumuna-eklenen Östrustaki İnek Serumu (ECS) ve Fötal Buzağı Serumunun (FCS) in vitro embriyo elde edilmesine etkisinin karşılaştırılması amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Maturasyon mediumlarına, %5, %10 ve %20 oranlarında ECS; kontrol grubunda ise aynı oranlarda FCS ilave edilmiş ve embriyolar morula-blastosist evresine kadar kültüre edilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak, Fötal Buzağı Serumunun (FCS), in vitro morula-blastosist elde etmede Östrustaki İnek Serumuna (ECS) göre daha üstün olduğu görülmüştür.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışmada, in vitro maturasyon medrumuna-eklenen Östrustaki İnek Serumu (ECS) ve Fötal Buzağı Serumunun (FCS) in vitro embriyo elde edilmesine etkisinin karşılaştırılması amaçlanmıştır. Çalışmada, morfolojik sınıflandırmaya göre A ve B kalite inek oositleri kullanılmıştır. Maturasyon mediumlarına, %5, %10 ve %20 oranlarında ECS; kontrol grubunda ise aynı oranlarda FCS ilave edilmiş ve embriyolar morula-blastosist evresine kadar kültüre edilmiştir. Veriler çift yönlü varyans analizi kullanılarak test edilmiştir. Çalışmada, ECS serum ekleme oranlarına göre sırasıyla; 0.12±0.023, 0.15±0.023 ve 0.15±0.020; FCS'de ise 0.17±0.036, 0.24±0.045 ve 0.19±0.025 morula-blastosiste ulaşma oranı elde edilmiştir. Sonuç olarak, Fötal Buzağı Serumunun (FCS), in vitro morula-blastosist elde etmede Östrustaki İnek Serumuna (ECS) göre daha üstün olduğu görülmüştür.

Abstract

The aim of this study was to compare influence of estrous cow sera (ECS) and fetal calf sera (FCS) on in vitro embryo production. Oocytes were selected and used as morphologically A and B quality grade in this study. Estrous Cow Serum was added in the maturation media 5%, 10% and 20%. The same proportions of FCS were added in the control groups. Embryos were cultured up to morula-blastocyst stage. Data were tested by two way ANOVA. The proportion of coming into morulae-blastocyst stage were 0.12±0.023, 0.15±0.023, 0.15±0.020 for ECS and 0.17±0.036, 0.24±0.045, 0.19±0.025 for FCS for 5%, 10% and 20% levels, respectively. As a result, the effect of fetal calf sera (FCS) was superior than estrous cow sera (ECS) for in vitro development into morulae-blastocyst stage of bovine oocytes.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

SULU, N., AKYOL, N. (2022). Östrustaki inek serumu ve fötal buzağı serumunun in vitro embriyo elde edilmesine etkisi. Lalahan Hayvancılık Araştırma Enstitüsü Dergisi, Cilt: 45 - Sayı: 1, 1–6. https://ajindex.com/articles/653073

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (2)

  1. Ayoub MA, Hunter AG (1993) Parthenogenetic activation of in vitro matured bovine oocytes. i. Dairy Sci., 76:421-429. 2.Bavister BD, Teresa ARH, Pinyopummintr T (1992) Development of in vitro matured / in vitro fertilized bovine embryos into morulae and blastocyts in defined culture media. Theriogenology, 37: 127-146. 3.Birler S, Pabuççuoğlu S, Atallah H, Aklan S, Özdaş ÖB, Bacmoğlu S, Cirit Ü, Zavar İ, Sönmez MEC, İleri İK (2002) İn vitro üretilen koyun embriyolarının transferi. Tr. J. Vet. Anim. Sci., 26: 1421-1426. 4.Brackett BG, Zuelke KA (1993) Analysis of factor involved in the in vitro production of bovine embryos. Theriogenology, 39:43-64 5.Fukui Y, Ono H (1988) In vitro development to blastocyst of in vitro matured and fertilized bovine oocytes. Vet. Record, 122: 282. 6.Fukui Y, Ono H (1989) Effects of sera, hormones and granulosa cells added to culture medium for in vitro maturation, fertilization, cleavage and development of bovine oocytes. J. Reprod. Fert., 86: 501-506. 7.Galli C, Lazzari G (1996) Practical aspects of IVM/IVF in cattle. Anim. Reprod. Sci., 42: 371- 379. 8.Gliedt DW, Rosenkrans CF, Rorie RW, Rakes JM (1996) Effects of oocyte maturation land, sperm capacitation time, and heparin on bovine embryo development. J. Dairy Sci., 79: 532-535. 9.Gordon I (1994) Laboratory Production of Cattle Embryos. Cab international Co., Wallingford UK. 10.Goto K, Iwai Y, Takuma Y, Nakanishi Y (1992) Co-culture of in vitro fertilized bovine embryos with different cell monolayers. J. Anim. Sci., 70: 1449-1453. 11.Hamano S, Kuwayama M (1993)In vitro fertilization and development of bovine oocytes recovered from the ovaries of individual donors: A comparison between the cutting and aspiration method. Theriogenology, 39: 703-712. 12.Kanagawa H, Shimohira I, Saitoh N (1995) Manual of Bovine Embryo Transfer. National Livestock Breeding Centre press JLTA, Shirakawa, Japan. 13.Kato H, Iritani A (1993) In vitro fertilization in cattle. Molecular Reprod. Develop., 36: 229-231. 14.Kojima T (1999) Embryo transfer (ET) in cattle - theory and practice. National Livestock Breeding Centre Press,
  2. Shirakawa, Japan. 15.Liu JM, Jin ZQ, Zhao XX, Zhu YD (1991) The development of bovine folUcular oocytes matured in different culture media. Veterinary Research Communications, 15: 257-260. 16.Marquant BL, Humblot P (1998) Practical measures to improve in vitro blastocyst production in the bovine. Theriogenology, 49: 3-11. 17.Miyano T (1998) In vitro growth development of bov