KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Türk Biyokimya Dergisi / 2019 / Cilt: 44 - Sayı: 3

Yeşil, beyaz ve siyah çayın antioksidan, sitotoksik, tirozinaz inhibitör aktiviteleri ve fenolik profillerinin araştırılması

Investigation of antioxidant, cytotoxic, tyrosinase inhibitory activities, and phenolic profiles of green, white, and black teas

Ezgi ÖZTAŞ
Nuriye KORKMAZ
Ufuk ÖZGEN
Şeyda AKKAYA
Rezzan ALİYAZICIOĞLU
Mahmoud ABUDAYYAK
Merve BADEM
Sıla Özlem ŞENER
Sayfa
278–288
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

TI aktivite, pozitif kontrol olarak kojik asit kullanılarak difenolaza (DOPA) karşı incelendi.Bulgular: Yeşil çay ekstresi beyaz ve siyah çay ekstresinden daha güçlü antioksidan aktivite gösterdi.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Yeşil, beyaz ve siyah çayın antioksidan, sitotoksik ve tirozinaz inhibitör (TI) aktivitelerini ve yeni yüksek performanslı sıvı kromatografisi (HPLC) metodu ile fenolik içeriklerini belirlemek.
📊
Temel Bulgular & Veri:Metod: Çayların antioksidan aktiviteleri; 2,2-difenil-1-pikril hidrazil (DPPH) serbest radikalin süpürülmesi, demir indirgeyici antioksidan güç (FRAP) ve bakır indirgeyici antioksidan kapasite (CUPRAC) ile incelendi.
💡
Sonuç & Katkı:TI aktivite, pozitif kontrol olarak kojik asit kullanılarak difenolaza (DOPA) karşı incelendi.Bulgular: Yeşil çay ekstresi beyaz ve siyah çay ekstresinden daha güçlü antioksidan aktivite gösterdi.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Yeşil, beyaz ve siyah çayın antioksidan, sitotoksik ve tirozinaz inhibitör (TI) aktivitelerini ve yeni yüksek performanslı sıvı kromatografisi (HPLC) metodu ile fenolik içeriklerini belirlemek. Metod: Çayların antioksidan aktiviteleri; 2,2-difenil-1-pikril hidrazil (DPPH) serbest radikalin süpürülmesi, demir indirgeyici antioksidan güç (FRAP) ve bakır indirgeyici antioksidan kapasite (CUPRAC) ile incelendi. Fenolik içeriği HPLC ile incelendi. MTT yöntemi normal ve kanser hücre hatlarında çay ekstrelerinin sitotoksik potansiyelini değerlendirmek için kullanıldı. TI aktivite, pozitif kontrol olarak kojik asit kullanılarak difenolaza (DOPA) karşı incelendi.Bulgular: Yeşil çay ekstresi beyaz ve siyah çay ekstresinden daha güçlü antioksidan aktivite gösterdi. Yeşil çay şiringaldehid, p-kumarik asit, benzoik asit ve kersetin içerdi. Beyaz çay ekstresi en yüksek tirozinaz inhibitör aktivite gösterdi. Ekstreler, kanser hücrelerine karşı normal hücrelerden daha yüksek sitotoksik güce sahipti. Yeşil çayın su ekstresi daha az toksik iken, metanol ekstresi en yüksek sitotoksik güce sahipti. Sonuç: Yeşil, beyaz ve siyah çay hem farmasötik hem de besin endüstrisinde zengin antioksidan, tirozinaz inhibitör ve sitotoksik aktiviteleri açısından önemli olarak düşünülebilir.

Abstract

tyrosinase inhibitory (TI) activities, and phenolic profileswith a new high performance liquid chromatography(HPLC) method of green, white and black teas.Methods: Antioxidant activities of the teas were examinedby means of scavenging of the free radical 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), ferric reducing antioxidantpower (FRAP), and cupric reducing antioxidant capacity(CUPRAC). The phenolic contents were investigated bymeans of HPLC. 3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazoliumbromide (MTT) assay was used to evaluatethe cytotoxic potential of tea extracts in cancer and normalcell lines. TI activity was investigated against diphenolase(DOPA), using kojic acid as a positive control.Results: The green tea extract exhibited stronger antioxidantthan white and black tea extracts. The greentea contained syringaldehyde, p-coumaric acid, benzoicacid, and quercetin. The white tea extract had thehighest tyrosinase inhibitor activity. The extracts exhibitedhigher cytotoxic potential toward cancer cells thannormal cells. The methanol extract of green tea had thehighest cytotoxic potential, while the water extracts wereless toxic.Conclusion: The green, white, and black teas can beregarded as an important in terms of rich antioxidant,tyrosinase inhibitor, and cytotoxic activities in both thepharmaceutical and food industries.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÖZTAŞ, E., KORKMAZ, N., ÖZGEN, U., AKKAYA, Ş., ALİYAZICIOĞLU, R., ABUDAYYAK, M., BADEM, M., ŞENER, S. Ö. (2022). Yeşil, beyaz ve siyah çayın antioksidan, sitotoksik, tirozinaz inhibitör aktiviteleri ve fenolik profillerinin araştırılması. Türk Biyokimya Dergisi, Cilt: 44 - Sayı: 3, 278–288. https://ajindex.com/articles/620833

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (18)

  1. Fridovich I. The biology of oxygen radicals. Science 1978;201:875–80
  2. Harman D. Aging: a theory based on free radical and radiation chemistry. J Gerontol 1956;11:298–300
  3. Duthie GG. Lipid peroxidation. Eur J Clin Nutr 1993;47:759–64
  4. Weisburger JH. Mechanism of action of antioxidants as exemplified in vegetables, tomatoes and tea. Food Chem Toxicol 1999;37:943–8
  5. Balentine DA, Wiseman SA, Bouwens LC. The chemistry of tea flavonoids. Crit Rev Food Sci 1997;37:693–704
  6. Salah N, Miller NJ, Paganga G, Tijburg L, Bolwell GP, Rice-Evans C. Polyphenolic flavanols as scavengers of aqueous phase radicals and as chain-breaking antioxidants. Arch Biochem Biophys 1995;322:339–46
  7. Jovanovic S, Steenken S, Tosic M, Marjanovic B, Simic MG. Flavonoids as antioxidants. J Am Chem Soc 1994;116:4846–51
  8. Hilal Y, Engelhardt U. Characterisation of white tea comparison to green and black tea. J Ver Leb 2007;2:414–21
  9. Vaibhav S, Lakshman K. Tyrosinase enzyme inhibitory activity of selected Indian herbs. Int J Pharm Biomed Res 2012;3:977–82
  10. Kim YJ, Uyama H. Tyrosinase inhibitors from natural and synthetic sources: structure, inhibition mechanism and perspective for the future. Cell Mol Life Sci 2005;62:1707–23
  11. Parvez S, Kang M, Chung HS, Bae H. Naturally occurring tyrosinase inhibitors: mechanism and applications in skin health, cosmetics and agriculture industries. Phytother Res 2007;21:805–16
  12. Singh J. International Conference on Harmonization (ICH) of Technical Requirements for the Registration of Pharmaceuticals for Human Use Validation of Analytical Procedures: Methodology, ICH-Q2B, Geneva, 1996
  13. Singleton VL, Rossi JA Jr. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am J Enol Viticult 1965;16:144–58
  14. Kolayli S, Sahin H, Aliyazicioglu R, Sesli E. Phenolic components and antioxidant activity of three edible wild mushrooms from Trabzon, Turkey. Chem Nat Comp 2012;48:137–40
  15. Benzie IF, Strain JJ. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Anal Biochem 1996;239:70–6
  16. Molyneux P. The use of the stable free radical diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) for estimating antioxidant activity. Songk J Sci Technol 2004;26:211–9
  17. Apak R, Güçlü K, Ozyürek M, Karademir SE, Erça E. The cupric ion reducing antioxidant capacity and polyphenolic content of some herbal teas. Int J Food Sci Nutr 2006;57:292–304
  18. Abudayyak M, Özdemir Nath E, Özhan G.