Dergiler / Turkish Journal of Pharmaceutical Sciences / 2021 / Cilt: 18 - Sayı: 2

Betahistinin Farklı Orijinlere Sahip Hücreler Üzerindeki İn Vitro Fizyolojik Etkileri

In Vitro Physiological Effects of Betahistine on Cell Lines of Various Origins

Sayfa
28–33
Yayın Tarihi
2022-11-03
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Betahistin uygulamasının (0,1-0,5 mg/mL, 24 saat), HUVEC, A549, Ishikawa ve L929 hücre hatlarında hücre proliferasyonunu baskılayabileceği ve apoptozu indükleyebileceği belirlenmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Betahistin vertigo semptomlarının semptomatik tedavisi amacıyla sıklıkla reçete edilen bir histamin analoğudur.
📊
Temel Bulgular & Veri:İn vitro çalışmalar, betahistinin reçete edilen dozlarda nazal epiteliyal hücreler üzerinde toksik etkisi olmadığını göstermiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Betahistin uygulamasının (0,1-0,5 mg/mL, 24 saat), HUVEC, A549, Ishikawa ve L929 hücre hatlarında hücre proliferasyonunu baskılayabileceği ve apoptozu indükleyebileceği belirlenmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Betahistin vertigo semptomlarının semptomatik tedavisi amacıyla sıklıkla reçete edilen bir histamin analoğudur. İn vitro çalışmalar, betahistinin reçete edilen dozlarda nazal epiteliyal hücreler üzerinde toksik etkisi olmadığını göstermiştir. Ancak, betahistinin diğer hücre hatlarındaki üzerindeki etkileri hakkında çalışma bulunmamaktadır. Bu çalışmada, betahistinin L929 fibroblast, A549 akciğer kanseri, insan umbilikal ven endoteliyal (HUVEC) ve Ishikawa endometriyal hücre hatları üzerindeki bazı fizyolojik etkilerini araştırmayı amaçladık. Gereç ve Yöntemler: Hücre proliferasyonu 3-(4,5-dimetiltiyazol-2-yl)-2,5-difeniltetrazolyum-bromür yöntemiyle, apoptoz akridin turuncusuetidyum ikili boyama yöntemiyle ve hücre göçü hızı çizik deneyi ile araştırılmıştır. Bulgular: Betahistin uygulamasının (0,1-0,5 mg/mL, 24 saat), HUVEC, A549, Ishikawa ve L929 hücre hatlarında hücre proliferasyonunu baskılayabileceği ve apoptozu indükleyebileceği belirlenmiştir. Betahistin’nin (≥0,1 mg/mL) apoptotik hücrelerin sayısında önemli bir artışa neden olmuştur (HUVEC: %26,3, A549: %17,3, L929: %8,6 ve Ishikawa: %2,3). Betahistin 0,1 mg/mL dozun üzerinde tüm hücre hatlarında hücre göçü hızını önemli derecede baskılamıştır. Buna karşılık, düşük dozlarda betahistin uygulaması (0,025 mg/mL) HUVEC ve Ishikawa hücre hatlarında hücre göçü hızını sırasıyla %81 ve %48 oranlarında artırmıştır. Sonuç: Betahistinin hücre proliferasyonu, apoptoz ve hücre göçü hızını hücre tipi ve doza bağımlı şekilde etkileyebilir. Bu kapsamda, betahistin uygulamasına yanıt olarak bazı kanser hücrelerinin proliferatif ve metastatik özellikleri de potansiyel olarak değişebilir.

Abstract

Objectives: Betahistine is a histamine analog commonly prescribed for symptomatic treatment of vertiginous symptoms. In vitro studies have shown that betahistine was not toxic at the prescribed doses in a nasal epithelial cell line. However, the effect of betahistine on other cell types has not been studied. In this study, we aimed to investigate some of the physiological effects of betahistine on L929 fibroblast, A549 lung cancer, human umbilical vein endothelial (HUVEC), and Ishikawa endometrial cell lines. Materials and Methods: Cellular proliferation was assed assessed by 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide assay, apoptosis was evaluated by acridine orange-ethidium bromide staining, and cellular migration was assed assessed by scratch assay. Results: Betahistine treatment (0.1-0.5 mg/mL, 24 hours) can inhibit cell proliferation and induce apoptosis in HUVEC, A549, Ishikawa, and L929 cell lines. Betahistine (≥0.1 mg/mL) significantly increased the number of apoptotic cells (HUVEC: 26.3%, A549: 17.3%, L929: 8.6%, and Ishikawa: 2.3%). Betahistine at doses over 0.1 mg/mL significantly suppressed the cell migration rate in all of the cell lines. In contrast, exposure to a low dose of betahistine (0.025 mg/mL) induced migration rates of HUVEC and Ishikawa cells by 81% and 48%, respectively. Conclusion: Betahistine may alter the processes of cellular proliferation, apoptosis, and cellular migration in a cell line- and dose-dependent manner. In this sense, proliferative and metastatic properties of certain cancer cells can potentially be altered in response to betahistine treatment.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KEPEKÇİ, A. H., GÜNDOĞAN, G. İ., KIG, C. (2022). Betahistinin Farklı Orijinlere Sahip Hücreler Üzerindeki İn Vitro Fizyolojik Etkileri. Turkish Journal of Pharmaceutical Sciences, Cilt: 18 - Sayı: 2, 28–33. https://ajindex.com/articles/613650

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Lacour M, van de Heyning PH, Novotny M, Tighilet B. Betahistine in the treatment of Ménière’s disease. Neuropsychiatr Dis Treat. 2007;3:429- 440. Laurikainen E, Miller J, Nuttall A, Quirk W. The vascular mechanism of action of betahistine in the inner ear of the guinea pig. Eur Arch Otorhinolaryngol. 1998;255:119-123.
  2. Lacour M, Sterkers O. Histamine and betahistine in the treatment of vertigo. CNS Drugs. 2001;15:853-870.
  3. Pamies D, Hartung T. 21st century cell culture for 21st century toxicology. Chemical Res Toxicol. 2016;30:43-52.
  4. Kreft ME, Jerman UD, Lasič E, Rižner TL, Hevir-Kene N, Peternel L, Kristan K. The characterization of the human nasal epithelial cell line RPMI 2650 under different culture conditions and their optimization for an appropriate in vitro nasal model. Pharm Res. 2015;32:665-679.
  5. Pilicheva B, Draganova-Filipova M, Zagorchev P, Kassarova M. Investigation of betahistine dihydrochloride biocompatibility and nasal permeability in vitro. J Appl Biomed. 2016;14:299-305.
  6. Shamma RN, Basalious EB, Shoukri R. Development of novel sustained release matrix pellets of betahistine dihydrochloride: effect of lipophilic surfactants and co-surfactants. Pharm Dev Technol. 2012;17:583-593. Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983;65:55-63.
  7. Liu K, Liu PC, Liu R, Wu X. Dual AO/EB staining to detect apoptosis in osteosarcoma cells compared with flow cytometry. Med Sci Monit Basic Res. 2015;21:15-20.
  8. Liang CC, Park AY, Guan JL. In vitro scratch assay: a convenient and inexpensive method for analysis of cell migration in vitro. Nat Protoc. 2007;2:329-333.
  9. Murdin L, Hussain K, Schilder AGM. Betahistine for symptoms of vertigo. Cochrane Database Syst Rev. 2016;2016:CD010696. Gbahou F, Davenas E, Morisset S, Arrang JM. Effects of betahistine at histamine H3 receptors: Mixed inverse agonism/agonism in vitro and partial inverse agonism in vivo. J Pharmacol Exp Ther. 2010;334:945- 954. Laurikainen E, Miller JM, Nuttall AL, Quirk WS. The vascular mechanism of action of betahistine in the inner ear of the guinea pig. Eur Arch Otorhinolaryngol. 1998;255:119-123.
  10. Ihler F, Bertlich M, Sharaf K, Strieth S, Strupp M, Canis M. Betahistine exerts a dose-dependent effect on cochlear stria vascularis blood flow in guinea pigs in vivo. PLoS One. 2012;7:e39086. Strupp M, Hupert D, Frenzel C, Wagner J, Hahn A, Jahn K, Zingler VC, Mansmann U, Brandt T. Long-term prophylact