KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Harran Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2019 / Cilt: 8 - Sayı: 2

Vibrio vulnificus Klinik İzolatlarının Virülens Genlerine Dayalı Olarak Selektif Zenginleştirme Ortamının Geliştirilmesi

Development of Selective Enrichment Medium for Clinical Isolates of Vibrio vulnificus Based upon Virulence Correlating Genes

Sedat CAM
Robin BRINKMEYER
Sayfa
173–179
Yayın Tarihi
2022-10-18
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Çalışmamız BHIB10'un virülans faktörlerini çalışmak için avantajlı olabileceğini ve APW10'un V. vulnificus'ta izolasyon ve MPN sayımı için uygun olabileceğini göstermektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmanın amacı, farklı zenginleştirme besiyerlerinin V. vulnificus'un klinik ve çevresel suşlarının seçimini etkileyip etkilemediğini bulmaktı.
📊
Temel Bulgular & Veri:Laboratuarda, aynı tuz konsantrasyonuna sahip Alkali Peptonlu Su (APW) ve Beyin Kalp İnfüzyon Broth (BHIB) eşit konsantrasyonlarda klinik ve çevresel suşlar ile ekimi yapıldı ve 35 °C' de 20 saat boyunca inkübe edildi.
💡
Sonuç & Katkı:Çalışmamız BHIB10'un virülans faktörlerini çalışmak için avantajlı olabileceğini ve APW10'un V. vulnificus'ta izolasyon ve MPN sayımı için uygun olabileceğini göstermektedir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Vibrio vulnificus · Selektif zenginleştirme · vcgC

Özet

Bu çalışmanın amacı, farklı zenginleştirme besiyerlerinin V. vulnificus'un klinik ve çevresel suşlarının seçimini etkileyip etkilemediğini bulmaktı. Bu nedenle, geleneksel zenginleştirme ve koruyucu besiyerlerinin selektif özellikleri, V. vulnificus’ un klinik ve çevresel suşları için test edildi. Laboratuarda, aynı tuz konsantrasyonuna sahip Alkali Peptonlu Su (APW) ve Beyin Kalp İnfüzyon Broth (BHIB) eşit konsantrasyonlarda klinik ve çevresel suşlar ile ekimi yapıldı ve 35 °C' de 20 saat boyunca inkübe edildi. Kantitatif Polimeraz Zincir Reaksiyon (PZR) sayım sonuçları; BHIB’ de geliştirilen suşların %85’ ini klinik suşlar olduğunu göstermiştir. Bu oran vcgC geninin vvhA genine yüzdelik hesaplamalarıyla belirlenmiştir. APW' de klinik suşların (47%) çevresel suşlara (53%) oranı neredeyse eşitti. BHIB, APW ve Luria Bertani (LB) broth ile zenginleştirilen deniz suyu numunelerinin büyük kısmında, klinik suşlarının toplam suşlara oranı BHIB’de yüksek çıkarken, APW ve LB’de çıkmamıştır. Ancak, deniz suyu örneklerinde klinik veya çevresel suşların birbirine oranında mevsimsel farklılıklar zenginleşme sürecini etkilemiştir. Çalışmamız BHIB10'un virülans faktörlerini çalışmak için avantajlı olabileceğini ve APW10'un V. vulnificus'ta izolasyon ve MPN sayımı için uygun olabileceğini göstermektedir. Tuzluluk oranı %10 olan BHIB besiyerinin klinik suşlar için selektif özelliği, demirin insanlarda oluşturduğu infeksiyonlarda önemli bir rol oynadığını gösterir.

Abstract

The objective of this study was to find out if different enrichment media would influence the selection of clinical and environmental strains of Vibrio vulnificus. Therefore, traditional enrichment and maintenance medium for V. vulnificus were tested for selective preference for clinical or environmental strains. In the laboratory, Alkaline Peptone Water (APW) and Brain Heart Infusion Broth (BHIB), with adjusted salinity to that of APW, were inoculated with equal concentrations of clinical and environmental strains and incubated for 20 hr at 35 °C. BHIB selected for clinical strains (85%) as indicated by percentage of vcgC to vvhA genes, enumerated with quantitative PCR. In APW, the ratio of clinical (47%) to environmental strains (53%) was roughly equal. Enrichments of seawater with BHIB, APW, and Luria Bertani broth (LB) resulted in higher percentage of clinical strains in BHIB but not in APW or LB, in most samples. However seasonal differences in predominance of clinical or environmental strains in the seawater samples influenced the enrichment process. Our study suggests that BHIB10 might be advantageous for studying virulence factors and APW10 could be suitable for isolation and MPN enumeration in V. vulnificus. The selective preference of the BHIB10 medium for clinical strains indicates that iron plays an important role in the infection of the human host.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

CAM, S., BRINKMEYER, R. (2022). Vibrio vulnificus Klinik İzolatlarının Virülens Genlerine Dayalı Olarak Selektif Zenginleştirme Ortamının Geliştirilmesi. Harran Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 8 - Sayı: 2, 173–179. https://ajindex.com/articles/534222

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (12)

  1. Abbott SL, Janda M, Farmer JJ, 2011: Vibrio and related organisms. In ''Manual of Clinical Microbiology'', Ed; Versalaovic J, Carroll KC, Jorgensen JH, Funke G, Landry ML, Warnock DW Inc., 10th ed. Washington, D.C. ASM Press. pp. 666-76.
  2. Alice AF, Naka H, Crosa JH, 2008: Global gene expression as a function of the iron status of the bacterial cell: Influence of differentially expressed genes in the virulence of the human pathogen Vibrio vulnificus. Infect Immun, 76, 4019-37. Cam S, 2016a: Environmental Influences on Virulence Factors in Vibrio Vulnificus. PhD thesis, Texas A&M University, USA, pp. 67-99
  3. Campbell MS, Wright AC, 2003: Real-time PCR analysis of Vibrio vulnificus from oysters. Appl Environ Microbiol, 69, 7137-44.
  4. Chase E, Harwood VJ, 2011: Comparison of the effects of environmental parameters on growth rates of Vibrio vulnificus biotypes I, II, and III by culture and quantitative PCR analysis. Appl Environ Microbiol, 77, 4200-7.
  5. Çam S, Brinkmeyer R, Schwarz JR, 2019: Quantitative PCR enumeration of vcgC and 16S rRNA type A and B genes as virulence indicators for environmental and clinical strains of Vibrio vulnificus in Galveston Bay oysters. Can J Microbiol, 65, 613-621.
  6. DePaola A, Capers GM, Alexander D, 1994: Densities of Vibrio vulnificus in the intestines of fish from the U.S. Gulf Coast. Appl Environ Microbiol, 60, 984-8.
  7. Elliot EL, Kaysner CA, Jackson HJ, Tamplin ML, 1995:
  8. V. cholerae, V. vulnificus, and other Vibrio spp. FDA Bacteriological Analytical Manual. Arlington, USA. Gholami P, Lew SQ, Klontz KC, 1998: Raw shellfish consumption among renal disease patients. A risk factor for severe Vibrio vulnificus infection. Am J Prev Med, 15, 243-5.
  9. Gordon KV, Vickery MC, DePaola A, Staley C, Harwood VJ, 2008: Real-time PCR assays for quantification and differentiation of Vibrio vulnificus strains in oysters and water. Appl Environ Microbiol, 74, 1704-9.
  10. Gulig PA, Bourdage KL, Starks AM, 2005: Molecular pathogenesis of Vibrio vulnificus. J Microbiol, 43, 118-31.
  11. Han F, Pu S, Hou A, Ge B, 2009: Characterization of clinical and environmental types of Vibrio vulnificus isolates from Louisiana oysters. Foodborne Pathog Dis, 6, 1251-8.
  12. Han F, Wang F, Ge B, 2011: Detecting potentially virulent Vibrio vulnificus strains in raw oysters by quantitative loop-mediated isothermal amplification. Appl Environ Microbiol, 77, 2589-95. Hlady WG, 1997: Vibrio infections associated with raw oyster consumption in Florida, 1981–1994. J Food Prot, 60, 353-7. Hueb