Dergiler / Hacettepe Journal of Biology and Chemistry / 2018 / Cilt: 46 - Sayı: 4

α-Glukozidazın Mısırdan Üçlü-Faz Ayırma ile Kısmi̇ Saflaştırılması ve Biyokimyasal Karakterizasyonu

Partial Purification and Biochemical Characterization of α-Glucosidase from Corn by Three-Phase Partitioning

Sayfa
481–494
Yayın Tarihi
2022-10-17
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

TPP α-glukozidazın uygulamaları için konsantre edilmesi ve saflaştırılması için kullanışlı bir stratejidir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:α-Glukozidaz önce mısırdan üçlü-faz ayırma (TPP) tekniği ile saflaştırıldı ve ardından karakterize edildi.
📊
Temel Bulgular & Veri:Mısır α-glukozidazının yüksek saflaştırma katı ve aktivite geri kazanımı ile etkin bir şekilde saflaştırılması için çeşitli proses parametrelerinin örneğin; amonyum sülfat konsantrasyonu, enzim: t-butanol oranı ve pH etkisi çalışıldı.
💡
Sonuç & Katkı:TPP α-glukozidazın uygulamaları için konsantre edilmesi ve saflaştırılması için kullanışlı bir stratejidir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

α-Glukozidaz önce mısırdan üçlü-faz ayırma (TPP) tekniği ile saflaştırıldı ve ardından karakterize edildi. Üç faz elde etmek için amonyum sülfat ve t-butanol kullanıldı. Mısır α-glukozidazının yüksek saflaştırma katı ve aktivite geri kazanımı ile etkin bir şekilde saflaştırılması için çeşitli proses parametrelerinin örneğin; amonyum sülfat konsantrasyonu, enzim: t-butanol oranı ve pH etkisi çalışıldı. TPP sisteminin optimum saflaştırma koşulları %50(w/v) amonyum sülfat saturasyonu, 1.0:0.75 (v/v) ham ekstrakt:t-butanol oranı ve pH 4.5 olarak belirlendi. Optimize koşullar altında α-glukozidaz %60 aktivite verimi ile 3.8 kat saflaştırıldı. α-Glukozidazın molekül kütlesi sodyum dodesil sülfat poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) ile yaklaşık 29 kDa olarak belirlendi. Karakterizasyon çalışmaları, enzimin optimum pH ve sıcaklığının pH 4.5 ve 55°C olduğunu gösterdi. Saflaştırılan enzimin 25-60°C sıcaklık aralığında ve pH 3.5-5.5 aralığında oldukça kararlı olduğu bulundu. Kinetik sabitler (KM ve Vmax) Lineweaver-Burk diyagramından 0.64 mM ve 0.45 U olarak hesaplandı. α-Glukozidaz aktivitesi 10 mM CaCl2 konsantrasyonunda oldukça arttı (%130). TPP α-glukozidazın uygulamaları için konsantre edilmesi ve saflaştırılması için kullanışlı bir stratejidir.

Abstract

α-Glucosidase was first purified from corn by three-phase partitioning(TPP) and then characterized. Ammonium sulfate and t-butanol were used in order to obtain three phases. Effect of different process parameters such as; ammonium sulfate concentration, enzyme to t-butanol ratio and pH required for efficient purification of the corn α-glucosidase was studied to get highest purification fold and activity recovery. Optimum purification parameters of the TPP system were determined as 50% (w/v) ammonium sulfate saturation with 1.0:0.75 (v/v) ratio of crude extract: t-butanol at pH 4.5. Under optimized conditions α-glucosidase was purified with 3.8 purification fold and 60% activity recovery. The molecular weight of α-glucosidase was determined approximately as 29 kDa by using sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide gel electrophoresis(SDS–PAGE). Characterization studies showed that, optimum pH and temperature of α-glucosidase were pH 4.5 and 55°C, respectively. The purified enzyme was found to be very stable at a temperature range of 25-60°C and a pH range of 3.5-5.5. Kinetic constants (KM and Vmax) were calculated from Lineweaver-Burk plot as 0.64 mM and 0.45 U, respectively. With 10 mM of CaCl2 concentration α-glucosidase activity was significantly increased to 130%. TPP is a useful strategy to concentrate and purify α-glucosidase for its applications.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BAYRAKTAR, H., ÖNAL, S., BİLEN, B. (2022). α-Glukozidazın Mısırdan Üçlü-Faz Ayırma ile Kısmi̇ Saflaştırılması ve Biyokimyasal Karakterizasyonu. Hacettepe Journal of Biology and Chemistry, Cilt: 46 - Sayı: 4, 481–494. https://ajindex.com/articles/529066

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (14)

  1. T. Yamamoto, T. Unno, Y. Watanabe, M. Yamamoto, H. Mori, S. Chiba, A. Kimura, Purification and characterization of Acremonium implicatum alphaglucosidase having regioselectivity for alpha-1,3glucosidic linkage, Biochim. Biophys. Acta., 1700 (2004) 189-98.
  2. G. Andreotti, A. Giordano, A. Tramice, E. Mollo, A. Trincone, Hydrolyses and transglycosylations performed by purified α-D-glucosidase of the marine mollusc Aplysia fasciata, J. Biotechnol., 1222 (2006) 74-84.
  3. G.C. Giannesi, M.L.T. Polizeli, H.F. Terenzi, J.A. Jorge, A novel α-glucosidase from Chaetomium thermophilum var. coprophilum that converts maltose into trehalose: Purification and partial characterisation of the enzyme, Process Biochem., 41 (2006) 1729-1735.
  4. S. Ramzi, V. Hosseininaveh, Biochemical characterization of digestive α-amylase, α-glucosidase and β-glucosidase in pistachio green stink bug, Brachynema germari Kolenati (Hemiptera: Pentatomidae), J. Asia-Pacific Entomol., 13 (2010) 215–219.
  5. H.J. Liu, Y.Tian, T.L. Zheng, C.L. Yan, H.S. Hong, Studies of glucosidase activities from surface sediments in mangrove swamp, J. Exp. Marine Biol. Ecol., 367 (2008) 111-117.
  6. H. Iwata, T. Suzuki, I. Aramaki, Purification and characterization of rice alpha-glucosidase, a key enzyme for alcohol fermentation of rice polish, J. Biosci. Bioeng., 95 (2003) 106-108.
  7. O.A. Akinloye, E.A. Balogun, S.O. Kareem, O.S. Mosaku, Partial purification and some properties of α-glucosidase from Trichoderma longibrachiatum,Biokemistri, 24 (2012) 31-37.
  8. C. Dennison, R. Lovrien, Three phase partitioning, concentration and purification of proteins, Prot. Exp. Purif., 11 (1997) 149-161.
  9. R.E. Lovrien, C. Goldensoph, P.C. Anderson, B. Odegaard, Three phase partitioning (TPP) via t-butanol: enzyme separation from crudes, in: R Burgess (Ed), Protein Purification: Micro to macro, A. R. Liss, Inc., New York, 1987, pp. 131–148.
  10. R.N. Pike, C. Dennison, Protein fractionation by threephase partitioning in aqueous/t-butanol mixtures, Biotechnol. Bioeng., 33 (1989) 221–228.
  11. I. Roy, M.N. Gupta, Three-phase affinity partitioning of proteins, Anal. Biochem.,300 (2002) 11–14.
  12. S.K. Dhananjay, V.H. Mulimani, Purification of α-galactosidase and invertase by three-phase partitioning from crude extract of Aspergillus oryzae, Biotechnol. Lett., 30 (2008) 1565–1569.
  13. S.M. Harde, R.S. Singhal, Extraction of forskolin from Coleus forskohlii roots using three phase partitioning, Sep. Purif. Technol., 96 (2012) 20-25.
  14. H.S. Choonia, S.S. Lele, Three-phase par