Dergiler / Eurasian Journal of Veterinary Sciences / 2011 / Cilt: 27 - Sayı: 3

Three-dimensional reconstruction from computed tomography images of respiratory system in New Zealand rabbits

Yeni Zelanda tavşanlarında solunum sisteminin bilgisayarlı tomografi görüntülerinin üç boyutlu hale getirilmesi

Sayfa
145–148
Yayın Tarihi
2022-10-18
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Solunum sistemi organlarının yüzey alanı ve hacmi sırasıyla 22447 $mm^2$ ve 68028 $mm^3$ olarak tespit edildi.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Çalışmanın amacı solunum sistemi organlarının bilgisayarlı tomografi görüntülerinden üç boyutlu görüntü ve biyometrik değerler elde edilmesini sağlamaktır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Gereç ve Yöntem: Araştırmada 6 adet Yeni Zelanda tavşanı kullanıldı.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Solunum sistemi organlarının yüzey alanı ve hacmi sırasıyla 22447 $mm^2$ ve 68028 $mm^3$ olarak tespit edildi.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:6 adet
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Çalışmanın amacı solunum sistemi organlarının bilgisayarlı tomografi görüntülerinden üç boyutlu görüntü ve biyometrik değerler elde edilmesini sağlamaktır. Gereç ve Yöntem: Araştırmada 6 adet Yeni Zelanda tavşanı kullanıldı. Tavşanların yüzükoyun pozisyonda iken genel anestezi altında bilgisayarlı tomografi görüntüleri alındı. Bilgisayarlı tomografiden elde edilen axial görüntüler DI-COM formatında kaydedildi. MIMICS® 12.1 bilgisayar programı kullanılarak üç boyutlu rekonstrüksiyon işlemi gerçekleştirildi. Solunum sistemi organlarının hacim ve yüzey alanı program yardımıyla otomatik olarak hesaplandı. Bulgular: Solunum sistemi organlarının yüzey alanı ve hacmi sırasıyla 22447 $mm^2$ ve 68028 $mm^3$ olarak tespit edildi. Öneri: Bu çalışmada kullanılan teknolojiden elde dilen sonuçlar anatomi biliminde yeni araştırmalar ve yaklaşımlara kaynak olabilir.

Abstract

Aim: The aim of this study was to produce three-dimen-sional reconstructions of organs of the respiratory system obtained from computed tomography images, and also to determine the biometric parameters of the organs studied.Materials and Methods: A total of 6 New Zealand white rabbits were used. Computed tomographic imaging was performed under general anaesthesia with the rabbits in the prone position. Axial images obtained from computed tomography were stored in DICOM format. Three-dimensional reconstructions were produced using MIMICS® 12.1 computer software. The volume and surface area of the organs of the respiratory system were calculated automatically by the software.Results: The surface area and the volume of the respiratory system were 22447 $mm^2$ and 68028 $mm^3$, respectively.Conclusion: The results obtained using the technology applied in this study may be a key to future investigations and to a new approach to anatomical science.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BEŞOLUK, K., DAYAN, M. O. (2022). Three-dimensional reconstruction from computed tomography images of respiratory system in New Zealand rabbits. Eurasian Journal of Veterinary Sciences, Cilt: 27 - Sayı: 3, 145–148. https://ajindex.com/articles/510175

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (15)

  1. Altan S, Goksahin E, 2011. Incisor malocclusions in a rabbit Eurasian J Vet Sci, 27,135-137.
  2. Chen XB, Lee HP, Chong VF, Wang de Y, 2009. Assessment of septal deviation effects on nasal air flow: a computational fluid dynamics model. Laryngoscope, 119, 1730-1736.
  3. Cipone M, Diana A, Gandini D, Fava D, Trenti F, 2003. Use of computed tomography in thoracic diseases of small animals. Vet Res Commun, 27 Suppl 1, 381-384.
  4. Durgut R, Yarsan E, 2007. Laboratuvar Hayvanları Hastalıkları ve Sağaltımı, Medisan, Ankara,
  5. Turkey. Elad D, Einav S, 1990. Three-dimensional measurement of biological surfaces. ISPRS J Photogramm, 45, 247-466.
  6. Eslaminejad MR, Valojerdi MR, Yazdi PE, 2006. Computerized three-dimensional reconstruction of cartilage canals in chick tibial chondroepiphysis. Anat Histol Em-bryol, 35, 247-252.
  7. Fong IW, Chiu B, Viira E, Fong MW, Jang D, Mahony J, 1997. Rabbit model for Chlamydia pneumoniae Infection. J Clin Microbiol, 35,48-52
  8. Gittard SD, Narayan RJ, LuskJ, Morel P, Stockmans F, Ramsey M, Laverde C, Phillips J, Monterio-Riviere NA, Ovsianik-ov A, Chichkov BN, 2009. Rapid prototyping of scaphoid and lunate bones. Biotechnol J, 4,129-34.
  9. Guan Y, Yoganandan N, Zhang J, Pintar FA, Cusick JF, Wolfla CE, Maiman DJ, 2006. Validation of a clinical finite element model of the human lumbosacral spine. Med Bio Eng Comput, 44, 633-641.
  10. Henry JA, O'Sullivan G, Pandit AS, 2007. Using computed tomography scans to develop an ex-vivo gastric model. World J Gastroenterol, 13,1372-1377. Huerkamp MJ, 2003. The Rabbit, in: Exotic Animal Medicine for the Veterinary Technician, Eds; Ballard B, Cheek R, Iowa State Press,
  11. Iowa, USA. Karabork H, 2009. Three-dimensional measurements of glenohumeral joint surfaces in sheep, cat and rabbit by photogrammetry. JAVA, 8,1248-1251.
  12. Kimura J, Hirano Y, Takemoto S, Nambo Y, Ishinazaka T, Himeno R, Mishima T, Tsumagari S, Yokota H, 2005. Three-dimensional reconstruction of the equine ovary. Anat Histol Embryol, 34,48-51.
  13. Lewis JS, AchilefuS, Garbow JR, Laforest R, Welch MJ, 2002. Small animal imaging: current technology and perspectives for oncological imaging. Eur J Cancer, 38, 2173-2188.
  14. Lu S, Xu YQ, Zhang YZ, Li YB, Xie L, Shi JH, Guo H, Chen GP, Chen YB, 2009. A novel computer-assisted drill guide template for lumbar pedicle screw placement: a cadaveric and clinical study. Int J Med Robotics Comput Assist Surg, 5,184-191.
  15. Mahaisavariya B, Sitthiseripratip K, Tongdee T, Bohez EL, Vander Sloten J, Oris P, 2002. Morphological study of