KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Eurasian Journal of Veterinary Sciences / 2021 / Cilt: 37 - Sayı: 3

Doğal balın honamlı teke spermasının kısa süreli saklanmasında yararlı etkisi var mıdır?

Does natural honey have beneficial effect on Honamlı buck semenduring liquid storage?

Muhammed Enes İnanç
Şükrü GÜNGÖR
Ayhan Ata
Sezgin Akyüz
Elif Andıl
Sayfa
180–185
Yayın Tarihi
2022-10-18
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Honamlı tekesi sperma motilitesi kontrol ve %1 bal ilave edilen gruplarda %3 ve %6 bal içeren gruplara göre daha yüksek bulundu (p

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bal, bal arıları tarafından üretilen bileşiminde yüksek oranda şeker ihtiva etmesi sayesinde spermatozoa üzerinde yaralı etkisi olabilceği düşünülen bir besin maddesidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmadaki temel amaç doğal bal ilavesinin Honamlı teke spermasının kısa süreli saklanmasında 4 °C 96 saat süresince spermatolojik parametreler üzerine etkinliğinin belirlenmesidir Gereç ve Yöntem: Çalışmada üreme sezonunda 3 baş Honamlı tekesi kullanıldı.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Honamlı tekesi sperma motilitesi kontrol ve %1 bal ilave edilen gruplarda %3 ve %6 bal içeren gruplara göre daha yüksek bulundu (p
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Bal, bal arıları tarafından üretilen bileşiminde yüksek oranda şeker ihtiva etmesi sayesinde spermatozoa üzerinde yaralı etkisi olabilceği düşünülen bir besin maddesidir. Bu çalışmadaki temel amaç doğal bal ilavesinin Honamlı teke spermasının kısa süreli saklanmasında 4 °C 96 saat süresince spermatolojik parametreler üzerine etkinliğinin belirlenmesidir Gereç ve Yöntem: Çalışmada üreme sezonunda 3 baş Honamlı tekesi kullanıldı. Tris-yumurta sarılı sulandırıcı ile sulandırılan spermalar ile kontrol (bal eklenmeyen), %1, 3 ve 6 oranlarında bal eklenen gruplar olacak şekilde 4 grup oluşturuldu. Spermatolojik parametrelerden sübjektif motilite, membran bütünlüğü ve anormal spermatozoa oranı 0, 24, 48, 72 ve 96. saatlerde değerlendirildi. Bulgular: Honamlı tekesi sperma motilitesi kontrol ve %1 bal ilave edilen gruplarda %3 ve %6 bal içeren gruplara göre daha yüksek bulundu (p

Abstract

Aim: Honey has been produced by honey bee comprises high level of sugars which could be beneficial effects on spermatozoa. The main goal of this study was to determine the natural honey addition on the spermatological parameters of Honamlı buck spermatozoa during liquid storage at 4 °C up to 96 hours. Materials and Methods: At the breeding season a total of three Honamlı bucks were used in this study. Four extenders were prepared with tris-egg yolk first was as a control (no honey added) and others had concentrate as 1, 3 and 6% honey into the base extender. Sperm parameters were assessed including subjective motility, membrane integrity and abnormality at 0, 24, 48, 72 and 96 th hours. Results: The motility of Honamlı buck spermatozoa was higher control and 1% honey added group compared the 3% and 6% up to 96 hour (p

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

İnanç, M. E., GÜNGÖR, Ş., Ata, A., Akyüz, S., Andıl, E. (2022). Doğal balın honamlı teke spermasının kısa süreli saklanmasında yararlı etkisi var mıdır?. Eurasian Journal of Veterinary Sciences, Cilt: 37 - Sayı: 3, 180–185. https://ajindex.com/articles/509782

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Abdelhafiz AT, Muhamad JA, 2008. Midcycle pericoital intravaginal bee honey and royal jelly for male factor infertility. Int J Gynaecol Obstet, 101, 146-49.
  2. Aitken J, Fisher H, 1994. Reactive oxygen species generation and human spermatozoa: the balance of benefit and risk. Bioessays, 16, 259-67.
  3. Akandi A, Ugwu SO, Machebe NS, 2015. Survivability of boar sperm stored under room emperature in extenders containing some natural products. Open Access Anim Physiol, 7, 57–64. Ball DW, 2007. The chemical composition of honey. J Chem Edu, 84, 1643-46.
  4. Bearden HJ, Willard JW, 2004.
  5. Applied Animal Reproduction, Pearson Education, 6th Edition. New Jersey, 115-121.
  6. Bertoncelj J, Dobersek U, Jamnik M, Golob T, 2007. Evaluation of the phenolic content, antioxidant activity and colour of Slovenian honey. Food Chem, 105, 822-28.
  7. Bogdanov S, Jurendic, T, Sieber R, Gallmann P, 2008. Honey for nutrition and health: A Review. J. Am Coll Nutr, 27, 677–89. Câmara DR, Mello-Pinto MMC, Pinto LC, Brasil OO, et al., 2011. Effects of reduced glutathione and catalase on the kinematics and membrane functionality of sperm during liquid storage of ram semen. Small Rumin Res, 100, 44–9.
  8. Çetin N C, Karaca F, 2019. Effect of different rates of honey supplementation on short term storage semen diluted with two different diluents in male goats. FÜ Sağ Bil Vet Derg, 33(2), 95 - 101. Donnelly ET, McClure N, Lewis SE, 2000. Glutathione and hypotaurine in vitro: effects on human sperm motility, DNA integrity and production of reactive oxygen species. Mutagenesis, 15, 61–8.
  9. El-Nattat WS, El-Sheshtawy RI, El-Batawy KA, Shahba MI, et al., 2016. Preservability of buffalo bull semen in tris-citrate extender enriched with bee’s honey. J Innov Pharm Biol Sci, 3, 180-5.
  10. El-Sheshtawy RI, El-Baldry DA El-Sisy GA, El-Nattat WS, et al., 2016. Natural honey as a cryoprotectant to improve Arab stallion post-thawing sperm parameters. Asian Pac J Reprod, 5, 331–34.
  11. Erejuwa OO, Siti A, Sulaiman MS, Wahab AB, 2012. Honey. A novel antioxidant. Molecules, 17, 4400-23.
  12. Eslami M, Ghasemiyan H, Zadeh HE, 2017. Semen supplementation with palmitoleic acid promotes kinematics, microscopic and antioxidative parameters of ram spermatozoa during liquid storage. Reprod Dom Anim, 52, 49–59.
  13. Fakhrildin MBMR, Alsaadi ARR, 2014. Honey supplementation to semen-freezing medium improves human sperm parameters post-thawing. J Family and Reprod Health, 8, 27-31. Fridovich I, 1995. Superoxide radical and superoxide dismutases. Biochem