Dergiler / Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Dergisi / 2021 / Cilt: 32 - Sayı: 1

Mycoplasma gallisepticum ve Mycoplasma synoviae teşhisi için real-time PCR yöntemi geliştirilmesi

Development of real-time PCR method for the diagnosis of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae

Sayfa
40–44
Yayın Tarihi
2022-10-17
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Yapay kontaminasyon yapılan svap örneklerinde, geliştirilen metodun deteksiyon limiti (LOD)

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Kanatlı mikoplazmaları solunum yolu hastalığı, sinovitis, günlük civcivlerin kalitesizliği ve düşük performans ile ilişkilidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Kanatlı mikoplazmalarının teşhisinde kullanılan temel yaklaşım mikroorganizmanın izolasyonu ve identifikasyonudur.
💡
Sonuç & Katkı:Yapay kontaminasyon yapılan svap örneklerinde, geliştirilen metodun deteksiyon limiti (LOD)
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Kanatlı mikoplazmaları solunum yolu hastalığı, sinovitis, günlük civcivlerin kalitesizliği ve düşük performans ile ilişkilidir. Kanatlı mikoplazmalarının teşhisinde kullanılan temel yaklaşım mikroorganizmanın izolasyonu ve identifikasyonudur. Mikoplazma yavaş ve zor üreyen organizmalar olduğundan, konvansiyonel yöntemler zaman alıcı, zahmetli ve deneyimli personel gerektirir. Bu nedenle, kantitatif gerçek zamanlı polimeraz zincir reaksiyonu (qPCR) ile Mycoplasma gallisepticum (MG) ve Mycoplasma synoviae (MS) için hızlı bir tespit yöntemi geliştirmeyi amaçladık. Bu amaçla, sırasıyla lipoprotein (lp) ve değişken lipoprotein hemaglütinin (vlhA) genleri M. gallisepticum ve M. synoviae’nın teşhisi için kullanıldı. Yapay kontaminasyon yapılan svap örneklerinde, geliştirilen metodun deteksiyon limiti (LOD)

Abstract

Avian mycoplasmas are associated with respiratory disease, synovitis, poor quality of day-old chicks, andpoor performance. The main approach used for the diagnosis of avian mycoplasmas is isolation and identification ofthe microorganism. Since the Mycoplasma are slow-growing fastidious organisms, conventional methods are timeconsuming, laborious, and require experienced personnel. For this reason, we aimed to develop a rapid detectionmethod for Mycoplasma gallisepticum (MG) and Mycoplasma synoviae (MS) by quantitative real-time polymerasechain reaction (qPCR). For this purpose, the lipoprotein (lp) and variable lipoprotein hemagglutinin (vlhA) geneswere used to detect M. gallisepticum and M. synoviae, respectively. The limit of detection (LOD) of the assay wasdetermined to be

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

MÜŞTAK, İ. B., KOLUKIRIK, M. (2022). Mycoplasma gallisepticum ve Mycoplasma synoviae teşhisi için real-time PCR yöntemi geliştirilmesi. Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Dergisi, Cilt: 32 - Sayı: 1, 40–44. https://ajindex.com/articles/506651

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (3)

  1. Bencina D, Drobnic-Valic M, Horvat S, Narat M, Kleven SH, Dovc P (2001) Molecular basis of the length variation in the N-terminal part of Mycoplasma synoviae hemagglutinin. FEMS Microbiol Lett. 203(1), 115-23. DOI: 10.1111/j.1574- 6968.2001.tb10829.x Callison SA, Riblet SM, Sun S, Ikuta N, Hilt D, Leiting V, Kleven SH, Suarez DL, Garcia M (2006) Development and validation of a real-time Taqman polymerase chain reaction assay for the detection of Mycoplasma gallisepticum in naturally infected birds. Avian Dis. 50(4), 537-44. DOI: 10.1637/7639-050106R.1 Carli KT, Eyigor A (2003) Real-time polymerase chain reaction for Mycoplasma gallisepticum in chicken trachea. Avian Dis. 47(3), 712-7. DOI: 10.1637/6041 Felice V, Lupini C, Mescolini G, Silveira F, Guerrini A, Catelli E, Di Francesco A (2020) Molecular detection and characterization of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae strains in backyard poultry in Italy. Poult Sci. 99(2), 719-724. DOI: 10.1016/j.psj.2019.12.020 Fraga AP, de Vargas T, Ikuta N, Fonseca AS, Celmer AJ, Marques EK, Lunge VR (2013) A Multiplex real-time PCR for detection of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae in clinical samples from Brazilian commercial poultry flocks. Braz J Microbiol. 44(2), 505-10. DOI: 10.1590/S1517- 83822013000200028 Fujisawa S, Murata S, Takehara M, Katakura K, Hmoon MM, Win SY, Ohashi K (2019) Molecular detection and genetic characterization of Mycoplasma gallisepticum, Mycoplama synoviae, and infectious bronchitis virus in poultry in Myanmar. BMC Vet Res. 15(1), 261. DOI: 10.1186/s12917- 019-2018-2
  2. Ghaniei A (2016) Molecular characterization of Mycoplasma synoviae isolated from broiler chickens of West Azarbaijan province by PCR of vlhA gene. Vet Res Forum. 7(3), 197-202.
  3. Grodio JL, Dhondt KV, O’Connell PH, Schat KA (2008) Detection and quantification of Mycoplasma gallisepticum genome load in conjunctival samples of experimentally infected house finches (Carpodacus mexicanus) using real-time polymerase chain reaction. Avian Pathol. 37(4), 385-91. DOI: 10.1080/03079450802216629 Hess M, Neubauer C, Hackl R (2007) Interlaboratory comparison of ability to detect nucleic acid of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae by polymerase chain reaction. Avian Pathol. 36(2), 127-33. DOI: 10.1080/03079450701203082 Hong Y, Garcia M, Leiting V, Bencina D, Dufour-Zavala L, Zavala G, Kleven SH (2004) Specific detection and typing of Mycoplasma synoviae strains in poultry with PCR and DNA sequence an