Dergiler / Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2014 / Cilt: 11 - Sayı: 3

Çeşitli Hayvansal Klinik Örneklerden İzole Edilen Staphylococcus aureus Suşlarında Slaym Pozitifliği ve Antibiyotik Direnci

Slime Positivity and Antibiotic Resistance in Staphylococcus aureus Strains Isolated from Various Animal Clinical Samples

Sayfa
163–168
Yayın Tarihi
2022-10-18
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Eritromisin, trimetoprim/sulfametoksazol, rifampin ve gentamisine karşı ise direnç tespit edilemedi.Slaym pozitif ve negatif suşların antibiyotik dirençleri karşılaştırıldığında, slaym pozitif suşlarda penisilin G, sefalotin veoksasiline karşı direnç önemli oranda yüksekti (p<0.05).

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada, inek sütü, inek uterus sıvabı, köpek kulak sıvabı, köpek deri sıvabı ve tavuk sinoviyal sıvı örneklerindenizole edilen toplam 50 Staphylococcus aureus suşu slaym faktör üretimi ve antibiyotik direnci yönünden incelendi.Suşların slaym üretimi Congo red agar ve standart tüp yöntemleri kullanılarak belirlendi.
📊
Temel Bulgular & Veri:Elli S. aureus suşunun 21’i(%42) Congo red agarda, 18’i (%36) standart tüp yöntemi ile slaym pozitif olarak belirlendi.
💡
Sonuç & Katkı:Eritromisin, trimetoprim/sulfametoksazol, rifampin ve gentamisine karşı ise direnç tespit edilemedi.Slaym pozitif ve negatif suşların antibiyotik dirençleri karşılaştırıldığında, slaym pozitif suşlarda penisilin G, sefalotin veoksasiline karşı direnç önemli oranda yüksekti (p<0.05).
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Antibiyotik direnci · slaym faktör · Staphylococcus aureus

Özet

Bu çalışmada, inek sütü, inek uterus sıvabı, köpek kulak sıvabı, köpek deri sıvabı ve tavuk sinoviyal sıvı örneklerindenizole edilen toplam 50 Staphylococcus aureus suşu slaym faktör üretimi ve antibiyotik direnci yönünden incelendi.Suşların slaym üretimi Congo red agar ve standart tüp yöntemleri kullanılarak belirlendi. Elli S. aureus suşunun 21’i(%42) Congo red agarda, 18’i (%36) standart tüp yöntemi ile slaym pozitif olarak belirlendi. İki farklı yöntem arasındaistatistiksel olarak önemli bir farklılık bulunmadı (p>0.05). İzolatların antibiyotik dirençlerinin belirlenmesinde standart Etestyöntemi kullanıldı. İzolatlar arasında en yüksek direnç oranı penisilin G’ye (%20) karşı iken, bunu sefalotin (%16),oksasilin (%16) ve tetrasikline (%14) karşı direnç oranları izledi. Test edilen izolatlardan sadece biri (%2) enrofloksasinekarşı dirençliydi. Eritromisin, trimetoprim/sulfametoksazol, rifampin ve gentamisine karşı ise direnç tespit edilemedi.Slaym pozitif ve negatif suşların antibiyotik dirençleri karşılaştırıldığında, slaym pozitif suşlarda penisilin G, sefalotin veoksasiline karşı direnç önemli oranda yüksekti (p<0.05).

Abstract

In this study, a total of 50 Staphylococcus aureus strains isolated from bovine milk, bovine uterus swabs,dog ear swab, dog skin swab and chicken synovial fluid samples were examined in terms of slime factor productionand antibiotic resistance. The slime production of strains was determined by using Congo red agar and standard tubemethods. Of 50 S. aureus strains, 21 (42%) and 18 (36%) were determined as slime positive in the Congo red agarand standard tube methods, respectively. A significant difference was not found between two different methods(p>0.05). Standard E-test method was used to detect the antibiotic resistance of isolates. Among the isolates, thehighest resistance rate was against penicillin G (20%), followed by cephalothin (16%), oxacillin (16%) and tetracycline(14%). Only one (2%) of the tested strains was resistant to enrofloxacin. However, resistance to erythromycin,trimethoprim/sulfamethoxazole, rifampin and gentamicin were not determined in any strains. When the antibioticresistance of slime positive and negative strains was compared, resistance to penicillin G, cephalothin and oxacillinwas significantly high in slime positive strains (p<0.05).

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ŞEKER, E., ÜNAL, N. (2022). Çeşitli Hayvansal Klinik Örneklerden İzole Edilen Staphylococcus aureus Suşlarında Slaym Pozitifliği ve Antibiyotik Direnci. Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 11 - Sayı: 3, 163–168. https://ajindex.com/articles/503891

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Aguilar B, Amorena B, Iturralde M. Effect of slime on adherence of Staphylococcus aureus isolated from bovine and ovine mastitis. Vet Microbiol 2001; 78(2): 183-91
  2. Amorena B, Gracia E, Monzon M, Leiva J, Oteiza C, Perez M, Alabart JL, Hernandez-Yago J. Antibiotic susceptibility assay for Staphylococcus aureus in biofilms developed in vitro. J Antimicrob Chemother 1999; 44(1): 43-55
  3. Archer NK, Mazaitis MJ, Costerton JW, Leid JG, Powers ME, Shirtliff ME. Staphylococcus aureus biofilms. Properties, regulation and roles in human disease. Virulence 2011; 2(5): 445-59
  4. Arciola CR, Baldassarri L, Montanaro L. Presence of icaA and icaD genes and slime production in a collection of staphylococcal strains from catheter-associated infections. J Clin Microbiol 2001; 39(6): 2151-6
  5. Arslan S, Özkardeş F. Slime production and antibiotic susceptibility in staphylococci isolated from clinical samples. Mem Inst Oswaldo Cruz 2007; 102(1): 29-33
  6. Barrio B, Vangroenweghe F, Dosogne H, Burvenich C. Decreased neutrophil bactericidal activity during phagocytosis of a slime-producing Staphylococcus aureus strain. Vet Res 2000; 31(6): 603-9
  7. Baselga R, Albizu I, de la Cruz M, Del Cacho E, Barberan M, Amorena B. Phase variation of slime production in Staphylococcus aureus: implications in colonization and virulence. Infect Immun 1993; 61(11): 4857-62
  8. Boles BR, Horswill AR. Staphylococcal biofilm disassembly. Trends Microbiol 2011; 19(9): 449-55
  9. Cassat JE, Lee CY, Smeltzer MS. Investigation of biofilm formation in clinical isolates of Staphylococcus aureus. Methods Mol Biol 2007; 391: 127-44
  10. Ceri H, Olson ME, Stremick C, Read RR, Morck D, Buret A. The Calgary Biofilm Device: new technology for rapid determination of antibiotic susceptibilities of bacterial biofilms. J Clin Microbiol 1999; 37(6): 1771-6
  11. Christiensen G, Simpson WA, Jounger JJ, Baddour LM, Barret FF, Melton DM, Beachey EH. Adherence of coagulase-negative staphylococci to plastic tissue culture plates: a quantitative model for the adherence of staphylococci to medical devices. J Clin Microbiol 1985; 22(6): 996-1006
  12. Ciftci A, Findik A, Onuk EE, Savasan S. Detection of methicillin resistance and slime factor production of Staphylococcus aureus in bovine mastitis. Brazilian J Microbiol 2009; 40(2): 254-61
  13. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Sixteenth Informational Supplement 2006; M1000-S16. Way