Dergiler / Harran Tarım ve Gıda Bilimleri Dergisi / 2022 / Cilt: 26 - Sayı: 1

‘Candidatus Phytoplasma asteris’ (16SrI-B alt grup) ile infekteli marul (Lactuca sativa L.)’da biyokimyasal değişimler

Biochemical alterations in lettuce (Lactuca sativa L.) infected with ‘Candidatus Phytoplasma asteris’ related strain (16SrI-B subgroup)

Sayfa
15–24
Yayın Tarihi
2022-03-25
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak bu çalışma, Ca.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Dünya genelinde marulda verimi sınırlayan fitoplazma infeksiyonları görülmektedir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmada Candidatus Phytoplasma asteris tarafından etkilenen marul bitkisinin yapraklarındaki total protein ve klorofil içeriği, prolin, malondialdehid (MDA) birikimi, peroksidaz (POD) ve katalaz (CAT) enzimlerindeki değişimler incelenmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak bu çalışma, Ca.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:biyokimyasal değişimler · fitoplazma · marul

Özet

Dünya genelinde marulda verimi sınırlayan fitoplazma infeksiyonları görülmektedir. Marul bitkisinde fitoplazma etmeninin konukçu fizyolojisinde meydana getirdiği biyokimyasal bileşenlerindeki değişimler anlaşılmaya devam etmektedir. Bu çalışmada Candidatus Phytoplasma asteris tarafından etkilenen marul bitkisinin yapraklarındaki total protein ve klorofil içeriği, prolin, malondialdehid (MDA) birikimi, peroksidaz (POD) ve katalaz (CAT) enzimlerindeki değişimler incelenmiştir. Fitoplazma ile infekteli bitkilerde gözlenen simptomlar sararma, küçük yaprak, bodurlaşma ve genel olarak bitkinin ölümü biçiminde olmuştur. PCR-RFLP çalışmalarıyla tüm infekteli marul bitkilerinde fitoplazmanın varlığı doğrulanmıştır. Fitoplazma ile infekteli bitkilerde toplam protein ve klorofil içeriği sağlıklı kontrol bitkilerine kıyasla azalmıştır. Prolin, MDA birikimi, POX ve CAT enzim aktivitesi infekteli bitkilerde artış gösterirken; sağlıklı kontrol bitkilerinde önemli düzeyde azalmıştır. Sonuçlar, fitoplazma infeksiyonunun konukçu fizyolojisini modifiye edebileceğini göstermiştir. Sonuç olarak bu çalışma, Ca. P. asteris’in marulu infekteleyen DNA dizisi değişmeyen bir patojen olduğu, etmenin marul bitkisinde kalite parametrelerini düşürdüğü ve marul yetiştirilen alanlarda potansiyel tehlike olabileceğini ortaya koymuştur.

Abstract

Phytoplasma infections are able to limit the lettuce growth around the world. The alterations of biochemical contents in the host physiology following phytoplasma infection in lettuce remain to be elucidated. In this study, changes in total protein and chlorophyll content, proline, malondialdehyde (MDA) accumulation, peroxidase (POD) and catalase (CAT) enzyme levels were investigated in leaves of lettuce plant after Candidatus Phytoplasma asteris infection. Symptoms observed in plants infected with phytoplasma were yellowing, little leaf, stunting, and a general decline. Phytoplasma agent detected in all infected lettuce by PCR-RFLP studies. Total protein and chlorophyll contents of phytoplasma-infected plants were lower than those of healthy control. Proline, MDA accumulation, POX and CAT enzyme activities were increased in infected plants as compared to those of control. The results show that phytoplasma infection can modify the host physiology of lettuce. In conclusion, this study indicated that the previously identified Ca. P. asteris was still pathogen with no changes in its DNA sequence and it was able to reduce the quality parameters of the lettuce plant and possess potential danger to the lettuce growing areas.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

AKKURAK, H., GÜLDÜR, M., DİKİLİTAŞ, M. (2022). ‘Candidatus Phytoplasma asteris’ (16SrI-B alt grup) ile infekteli marul (Lactuca sativa L.)’da biyokimyasal değişimler. Harran Tarım ve Gıda Bilimleri Dergisi, Cilt: 26 - Sayı: 1, 15–24. https://ajindex.com/articles/423214

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (12)

  1. Abdollahi, F., Niknam, V., Ghanati, F., Masroor, F., & Noorbakhsh SN. (2012). Biological effects of weak electromagnetic field on healthy and infected lime (Citrus aurantifolia) trees with phytoplasma. The scientific World Journal, vol.2012, Article ID 716929, 6 pages. Ahmad, S.J.N., Naila, F., & Ahmad, J.N. (2019). Metabolic and physiological changes induced in Sesamum indicum infected by phytoplasmas. Phytopathogenic Mollicutes Vol. 9:1, 137-138.
  2. Ahrens, U., & Seemuller, E. (1992). Detection of DNA of plant pathogenic mycoplasmalike organisms by a polymerase chain reaction that amplifies a sequence of the 16S rRNA gene. Phytopathology, 82: 828-832.
  3. Akinci, S., Akinci, İ.E, Karatas, A., & Abak, K. (2003). Requirements of the Temperature Sum of Head and Cos Lettuce (Lactuca Sativa L.), Grown at Diffferent Periods in Open Field and Tunnels, and Relations with Yield. KSU J. Science and Engineering, 6:(1), 97-105.
  4. Akkurak, H., Guldur, M.E., Simsek, E., & Dikilitas, M. (2021) First report of lettuce yellowing disease caused by a ‘Candidatus Phytoplasma asteris’-related strain in Lactuca sativa in Turkey. New Disease Reports, 44, e12033.
  5. Alam, M.M., Nahar, K., Hasanuzzaman, M., & Fujita, M. (2014). Exogenous jasmonic acid modulates the physiology, antioxidant defense and glyoxalase systems in imparting drought stress tolerance in different Brassica species. Plant Biotechnol Rep 8:279–293.
  6. Arnon, D.I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant physiology, 24(1), 1–15.
  7. Aybak, H.Ç. (2002). Salata/Marul Yetiştiriciliği. Hasad Yayıncılılık, İstanbul.
  8. Bates, L.S., Waldren, R.P. & Ve Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil, 39(1): 205–207.
  9. Bertaccini, A., Duduk, B., Paltrinieri, S., & Contaldo, N. (2014). Phytoplasmas and phytoplasma diseases: a severe threat to agriculture. Am. J. Plant Sci. 5, 1763–1788.
  10. Bradford, M.M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1–2): 248–254.
  11. Cağlar, B. K., Elbeaino, T., Kusek, M., Pehlivan, D., Fidan, H., & Portakaldali, M. (2010). Stolbur phytoplasma infections in potato and tomato plants from different locations in Turkey. Journal of Turkish Phytopathology, 39(1–3): 1–8.
  12. Christgen, S.L., & Becker, D.F. (2019). Role of Proline in Pathogen and Host Interactions. Antioxidants & Redox SignalingVol. 30, No.