Dergiler / Su Ürünleri Dergisi / 2003 / Cilt: 20 - Sayı: 1

Tubifex tubifex Müller,1774 (Annelidae)'in besin kompozisyonu

Nutritional composition of tubifex tubifex Müller,1774 (Annelidae)

Sayfa
103–110
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Total karotenoyit miktan ise 15.02±0.80 mg/kg olarak belirlenmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Tubifeks (Tubifex tubifex Müler, 1774, Annelidae)'in besin kompozisyonu araştırılmıştır. % olarak ham protein 11.0210.58, lipit 2.14±0.06, kül 1.83±0.16 ve kuru madde 18.78±0.83 olarak saptanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Toplam yağ asidi miktarı 7.28 mg/100mg kuru ağırlık olup bunun %18'ini $omega$ -3 (C18:3n3 ve C20:5n3) ve %22'sini $omega$ -6 (C18:2n6c ve C20:4n6) serisi yağ asitleri oluşturmaktadır.
💡
Sonuç & Katkı:Total karotenoyit miktan ise 15.02±0.80 mg/kg olarak belirlenmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:karşılaştırmalar · besin değeri · yem bileşimi tablosu

Özet

Tubifeks (Tubifex tubifex Müler, 1774, Annelidae)'in besin kompozisyonu araştırılmıştır. % olarak ham protein 11.0210.58, lipit 2.14±0.06, kül 1.83±0.16 ve kuru madde 18.78±0.83 olarak saptanmıştır. Toplam yağ asidi miktarı 7.28 mg/100mg kuru ağırlık olup bunun %18'ini $omega$ -3 (C18:3n3 ve C20:5n3) ve %22'sini $omega$ -6 (C18:2n6c ve C20:4n6) serisi yağ asitleri oluşturmaktadır. C22:6n3 (DHA)'e ise rastlanmamıştır. Esansiyel amino asitlerinden en fazla bulunanı (amino asit g/100 g protein) lizin (6.54±0.12) ve lösin (6.52±0.13) olup bunu sırasıyla arjinin (5.39±0.04), valin (4.92±0.09), treonin (4.81±0.09), fenilalanin (4.36±0.09), isolösin (4.31±0.08), tiyrosin (2.74±0.07), histidin (2.67+0.03) ve metionin (1.82±0.04) izlemiştir. Total karotenoyit miktan ise 15.02±0.80 mg/kg olarak belirlenmiştir.

Abstract

Nutritional compositon of Tubifex tubifex Müler, 1774 (Annelidae) was investigated. Percentage crude protein, lipid, ash and moisture content of T. tubifex were 11.02+0.58, 2.14+0.06,1.83+0.16 and 18.78+0.83 recpectively. Total fatty acid content was 7.28 mg/100 mg dry weight and $omega$ -3 (Cl 8:3n3 and C20:5n3) and $omega$ -6 (Cl 8:2n6c and C20:4n6) fatty acids composed 18%, 22% of the total, respectively. C22:6n3 (DHA) were not present in the sample. The most abundant amino acids (amino acid g/100 g protein) were lysine (6.54±0.12), leucine (6.52±0.13) fallowed by arganine (5.39±0.04), valine (4.92±0.09), treonine (4.81±0.09), phenylalanine (4.36±0.09), isoleucine (4.31±0.08), tyrosine (2.74±0.07), histidine (2.67+0.03) and methionine (1.82±0.04). Total carotenoid level was measured as 15.02±0.80 mg/kg.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

YANAR, M., YANAR, Y., GENÇ, M. A. (2003). Tubifex tubifex Müller,1774 (Annelidae)'in besin kompozisyonu. Su Ürünleri Dergisi, Cilt: 20 - Sayı: 1, 103–110. https://ajindex.com/articles/311831

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Ahamed, M.T. and Mollan, M.F.A., 1992. The Effect of Various Levels of Wheat Brain and Mustard Oil Cake in the Culture Media on Tubiflcid Production, Aquaculture, 107: 107-113. Anonymous 1979, Anon:Iupac Standarts, Methods for Analysis of Oils, Fats and Derivatives. 6 th. Ed. Paquot, C, Pergaman Press, p. 59-66
  2. Arunachalam, S. and Reddy, S.R., 1981. Interaction of Feeding Rates on Growth, Food Conversion and Body Composition of the Freshwater Catfish Mystus vittatus (Bloch). Hydrobiologia, 78:25-32.
  3. Aston., R.J. and Milner, A.G.P., 1981. Conditions Required for the Culture of Branchiura sowerbyi (Oligochaeta: Tubificidae) in Activated Sludge. Aquaculture, 26(1-2): 155-160.
  4. Aston, R, J., Sadler, K. and Milner, A.G.P., 1982. The Effects of Temperature on The Culture of Branchiura Sowerbyi (Oligochaeta, Tubificidae) on Activated Sludge, Aquaculture, 29: 137-145.
  5. Aston, R.J., 1984. The Culture of Branchiura sowerbyi (Tubificidae, Oligochaeta) Using Cellulose Substrate. Aquaculture, 40: 89-94.
  6. Bligh, E.G. and Dyer, W.J., 1959. A Rapid Method of Total Lipid Ekstraction and Purification, Can.J. Biochem. Phyiol. 37: 911-917.
  7. Brinkhurst, R.O., 1971. Guide for the Identification of British Aquatic Oligechaeta. Freshwater Biological Association Scientific Publication No:22 Toronto, p.55 Bouguenec,V. and Giani N., 1989. Biological Studies upon Enchytraeus variatus Bouguenec,V and Giani, N 1987 in Breeding Cultures. Hydrobiologia, 180: 151-165.
  8. Bouguenec, V., 1992. Oligochaetes (Tubificidae and Enchytraeidae) as Food in Fish Rearing: A Review and Preliminary Tests. Aquaculture, 102: 201-217.
  9. Caric, M., J., Sanko, N. and Skaramuca, B., 1993. Dietary Effects of Different Feeds on the Biochemical Composition of the Rotifer (Brachionus plicatilis Müller). Aquaculture, 110: 141-150.
  10. Christiansen, J. S and Wallace, J.C., 1988. Deposition of Cantaxanthin and Muscle Lipit on Two Size groups of Charr, Salvenilus alpinus (L.). Aquaculture, 69: 69-78.
  11. Choubert, G. and Storebakken, T., 1989. Dose Response to Astaxanthin and Cantaxanthin Pigmentation of Rainbow trout Fed Verious Dietary Carotenoid Concentration. Aquaculture, 81: 69-77.
  12. Foss, P., Storebakken, T., Schiedt, K., Liaen, ^J.S., Austreng, E., and Streiff, K., 1984. Carotenoids in Diets for Salmonids.I Pigmentation of Rainbow Trout with the Individual Optical Isomers of Astaxanthin in Comparation with Canthaxanthin. Aquaculture, 41: 213-226.
  13. Greco, F.M., Fitzpatrick, M.P., Graffam,W.S., Dierenfeld, E.S. and Thoney, D.A.