KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Dergisi / 2020 / Cilt: 31 - Sayı: 2

Demirin Vibrio vulnificus’un klinik ve çevresel suşların büyümesi ve hemolizin/sitolizin ekspresyonu üzerine etkisi

The effect of iron on the expression of hemolysin/cytolysin and growth of clinical and environmental strains of Vibrio vulnificus

Sedat ÇAM
Sayfa
121–126
Yayın Tarihi
2020-12-31
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Test edilen tüm suşlarda, 30 ve 50 uM ferrik klorür konsantrasyonları seviyesinde düşük konsantrasyonlara kıyasla anlamlı bir fark gözlenmiştir (p

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Yüksek demir seviyeleri, oldukça ölümcül olan insan patojeni Vibrio vulnificus’un büyümesi ve virülansı ile güçlü bir şekilde ilişkilidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışma, farklı demir konsantrasyonları altında (7, 10, 15, 30 ve 50 μM) dört klinik ve dört çevresel V. vulnificus suşlarının, büyüme oranlarını ve hemolizin/sitolizin kodlayan genin (vvhA) ekspresyon seviyelerini incelemiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Test edilen tüm suşlarda, 30 ve 50 uM ferrik klorür konsantrasyonları seviyesinde düşük konsantrasyonlara kıyasla anlamlı bir fark gözlenmiştir (p
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:büyüme · demir · patojen

Özet

Yüksek demir seviyeleri, oldukça ölümcül olan insan patojeni Vibrio vulnificus’un büyümesi ve virülansı ile güçlü bir şekilde ilişkilidir. Bu çalışma, farklı demir konsantrasyonları altında (7, 10, 15, 30 ve 50 μM) dört klinik ve dört çevresel V. vulnificus suşlarının, büyüme oranlarını ve hemolizin/sitolizin kodlayan genin (vvhA) ekspresyon seviyelerini incelemiştir. Ekspresyon seviyeleri 2-ΔΔCT yöntemine göre belirlenmiştir. Demir konsantrasyonu arttıkça vvhA transkripsiyon aşağı regülasyonu gözlenmiştir. Test edilen tüm suşlarda, 30 ve 50 uM ferrik klorür konsantrasyonları seviyesinde düşük konsantrasyonlara kıyasla anlamlı bir fark gözlenmiştir (p

Abstract

Elevated levels of iron are strongly correlated with the growth and virulence of highly lethal human-pathogen Vibrio vulnificus. The present study examined the expression level of hemolysin/cytolysin-encoding gene (vvhA) and the growth rate of four clinical and four environmental strains of V. vulnificus under different iron concentrations (7, 10, 15, 30, and 50 μM). The expression levels of vvhA were determined according to the 2-ΔΔCT method. vvhA transcription was down-regulated as iron concentration increased. A significant difference was observed at the level of 30 and 50 μM ferric chloride concentrations compared to the lower concentrations in all the strains tested (p

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÇAM, S. (2020). Demirin Vibrio vulnificus’un klinik ve çevresel suşların büyümesi ve hemolizin/sitolizin ekspresyonu üzerine etkisi. Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Dergisi, Cilt: 31 - Sayı: 2, 121–126. https://ajindex.com/articles/218136

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (16)

  1. Baker-Austin C, Oliver, JD. (2018) Vibrio vulnificus: New insights into a deadly opportunistic pathogen. Environ Microbiol. 20, 423-430
  2. Bisharat N, Cohen DI, Harding RM, Falush D, Crook DW, Peto T, Maiden MC. (2005). Hybrid Vibrio vulnificus. Emerg Infect Dis. 11, 30-35
  3. Campbell MS, Wright AC. (2003). Real-time PCR analysis of Vibrio vulnificus from oysters. Appl Environ Microbiol. 69, 7137-7144
  4. Cassat JE, Skaar EP. (2013). Iron in infection and immunity. Cell Host Microbe. 13, 509-519
  5. Çam S, Brinkmeyer R. (2019). Development of selective enrichment medium for clinical isolates of Vibrio vulnificus based upon virulence correlating genes. Harran Üniv Vet Fak Derg. 8, 173-179
  6. Çam S, Brinkmeyer R. (2020). The effects of temperature, ph, and iron on biofilm formation by clinical versus environmental strains of Vibrio vulnificus. Folia Microbiol. 65, 557-566
  7. Çam S, Brinkmeyer R, Schwarz JR. (2019). Quantitative PCR enumeration of vcgC and 16S rRNA type A and B genes as virulence indicators for environmental and clinical strains of Vibrio vulnificus in Galveston Bay oysters. Can J Microbiol. 65, 613-621
  8. Gray LD, Kreger AS. (1987). Mouse skin damage caused by cytolysin from Vibrio vulnificus and by V. Vulnificus infection. J Infect Dis. 155, 236-241
  9. Hor L, Chang Y, Chang C, Lei H, Ou JT. (2000). Mechanism of high susceptibility of iron-overloaded mouse to Vibrio vulnificus infection. Microbiol Immunol. 44, 871-878
  10. Horseman MA, Surani S. (2011). A comprehensive review of Vibrio vulnificus: An important cause of severe sepsis and skin and soft-tissue infection. Int J Infect Dis. 15, e157-e166
  11. Jeong HG, Satchell KJF. (2012). Additive function of Vibrio vulnificus martx(vv) and vvhA cytolysins promotes rapid growth and epithelial tissue necrosis during intestinal infection. PLoS pathog. 8, e1002581
  12. Jones MK, Oliver JD. (2009). Vibrio vulnificus: Disease and pathogenesis. Infect Immun. 77, 1723-1733
  13. Kawase T, Miyoshi S, Sultan Z, Shinoda S. (2004). Regulation system for protease production in Vibrio vulnificus. FEMS Microbiol Lett. 240, 55-59
  14. Kim CM, Chung YY, Shin SH. (2009). Iron differentially regulates gene expression and extracellular secretion of Vibrio vulnificus cytolysin-hemolysin. J Infect Dis. 200, 582-589
  15. Kim CM, Park RY, Choi MH, Sun HY, Shin SH. (2007). Ferrophilic characteristics of Vibrio vulnificus and potential usefulness of iron chelation therapy. J Infect Dis. 195, 90-98
  16. Kim SY,