KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Afyon Kocatepe Üniversitesi Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi / 2026 / Cilt: 25 Sayı: 2

Afyonkarahisar’da Doğal Olarak Yayılış Gösteren Bazı Alıç Taksonlarının Fitokimyasal Profillerinin Belirlenmesi

Determination of the Phytochemical Profiles of Some Hawthorn Taxa Naturally Distributed in Afyonkarahisar

Melek Korkut(AFYON KOCATEPE ÜNİVERSİTESİ)0000-0002-8105-3846
Ahmet Serteser(AFYON KOCATEPE ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-2792-7239
Mustafa Kargıoğlu(AFYON KOCATEPE ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-0386-9716
Saliha Aydın(AFYON KOCATEPE ÜNİVERSİTESİ, FEN-EDEBİYAT FAKÜLTESİ)0000-0002-7830-0535
Hakan Terzi(AFYON KOCATEPE ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-4817-1100
Mustafa Yıldız(AFYON KOCATEPE ÜNİVERSİTESİ)0000-0002-6819-9891
Sayfa
240–244
Yayın Tarihi
2025-04-11
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

C. monogyna’da ve C. microphylla taksonlarında esas bileşen (+)−kateşin olarak belirlenirken, C. orientalis subsp. szovitsii, C. tanacetifolia ve C. orientalis subsp. orientalis taksonlarında 1,2−dihidroksibenzenin esas fenolik bileşik olarak tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Rosaceae familyasının Crataegus L. cinsine ait türlerin farklı dokuları geleneksel ve modern tıpta çeşitli hastalıkları tedavi etmek amacıyla kullanılmaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Farklı Crataegus taksonlarının fenolik bileşik içerikleri hakkında yapılan çalışmalar bulunsa da bitkilerin doğal olarak yetiştikleri bölgelerde fitokimyasal bileşenleri ve miktarları değişmektedir.
💡
Sonuç & Katkı:C. monogyna’da ve C. microphylla taksonlarında esas bileşen (+)−kateşin olarak belirlenirken, C. orientalis subsp. szovitsii, C. tanacetifolia ve C. orientalis subsp. orientalis taksonlarında 1,2−dihidroksibenzenin esas fenolik bileşik olarak tespit edilmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Crataegus · Fenolik bileşik · HPLC

Özet

Rosaceae familyasının Crataegus L. cinsine ait türlerin farklı dokuları geleneksel ve modern tıpta çeşitli hastalıkları tedavi etmek amacıyla kullanılmaktadır. Farklı Crataegus taksonlarının fenolik bileşik içerikleri hakkında yapılan çalışmalar bulunsa da bitkilerin doğal olarak yetiştikleri bölgelerde fitokimyasal bileşenleri ve miktarları değişmektedir. Bu araştırmada, Afyonkarahisar ili Merkez ilçesinden toplanan beş farklı alıç taksonunda fenolik bileşik içeriği Yüksek Performanslı Sıvı Kromatografisi (HPLC) ile analiz edilmiştir. C. monogyna’da ve C. microphylla taksonlarında esas bileşen (+)−kateşin olarak belirlenirken, C. orientalis subsp. szovitsii, C. tanacetifolia ve C. orientalis subsp. orientalis taksonlarında 1,2−dihidroksibenzenin esas fenolik bileşik olarak tespit edilmiştir. Bununla birlikte, tüm taksonlarda naringenin en az miktarda tespit edilen fenolik bileşik olmuştur. Crataegus taksonlarında fenolik bileşik içeriği ve miktarlarında belirlenen farklılıklar bitki dokusu örneklerinin alındığı alanların ekolojik özelliklerinden kaynaklanmaktadır.

Abstract

Different tissues of species belonging to the Crataegus L. genus of the Rosaceae family, are used in traditional and modern medicine to treat various diseases. Although there are studies on the phenolic compound contents of different Crataegus taxa, their phytochemical components and amounts vary in the regions where they grow naturally. In this study, the phenolic compound contents of five different hawthorn taxa collected from the Central district of Afyonkarahisar province were analyzed by High Performance Liquid Chromatography (HPLC). While the main component in C. monogyna and C. microphylla taxa is (+)−catechin, 1,2−dihydroxybenzene was determined as the main phenolic compound in C. orientalis subsp. szovitsii, C. tanacetifolia and C. orientalis subsp. orientalis taxa. However, naringenin was the phenolic compound detected in the lowest amount in all taxa. The differences determined in the phenolic compound content and amounts in Crataegus taxa are due to the ecological characteristics of the areas where plant tissue samples were taken.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Korkut, M., Serteser, A., Kargıoğlu, M., Aydın, S., Terzi, H., Yıldız, M. (2025). Afyonkarahisar’da Doğal Olarak Yayılış Gösteren Bazı Alıç Taksonlarının Fitokimyasal Profillerinin Belirlenmesi. Afyon Kocatepe Üniversitesi Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi, Cilt: 25 Sayı: 2, 240–244. https://doi.org/10.35414/akufemubid.1497390

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (20)

  1. Adnan, A., 2011. Molecular cloning, expression, purification and characterization of the zebrafish catechol-O-methyltransferases. Theses and Dissertations, 503, 1-53.
  2. Antoci, V., Mantu, D., Cozma, D.G., Usru, C. and Mangalagiu, I.I., 2014. Hybrid anticancer 1,2-diazine derivatives with multiple mechanism of action. Medical Hypotheses, 82(1), 11-15. https://doi.org/10.1016/j.mehy.2013.10.024
  3. Attard, E. and Attard, H., 2019. Nonvitamin and Nonmineral Nutritional Supplements. Nabavi, S.M. and Silva, A.S., Academic Press, 289-293.
  4. Belkhir, M., Rebai, O., Dhaouadi, K., Congiu, F., Tuberoso, C.I.G., Amri, M. and Fattouch, S., 2013. Comparative analysis of Tunisian wild Crataegus azarolus (Yellow Azarole) and Crataegus monogyna (Red Azarole) leaf, fruit, and traditionally derived syrup: phenolic profiles and antioxidant and antimicrobial activities of the aqueous-acetone extracts. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 61, 9594-9601. https://doi.org/10.1021/jf402874z
  5. Bahorun, T., Aumjaud, E., Ramphul, H., Rycha, M., Luximon‐Ramma, A., Trotin, F. and Aruoma, O.I. 2003. Phenolic constituents and antioxidant capacities of Crataegus monogyna (Hawthorn) callus extracts. Food/Nahrung, 47, 191-198. https://doi.org/10.1002/food.200390045
  6. Beğen, H.A. and Eminağaoğlu, Ö., 2022. Türkiye Rosaceae familyasına yeni cinsler (Aria, Hedlundia, Torminalis) ile taksonomik katkılar. Turkish Journal of Biodiversity, 5, 36−49. https://doi.org/10.38059/biodiversity.1090331
  7. Cadena-Iñiguez, J., Santiago-Osorio, E., Sánchez-Flores, N., Salazar-Aguilar, S., Soto-Hernández, R.M., Riviello-Flores, M.d.l.L., Macías-Zaragoza, V.M. and Aguiñiga-Sánchez, I., 2024. The cancer-protective potential of protocatechuic acid: A narrative review. Molecules, 29(7), 1439. https://doi.org/10.3390/molecules29071439
  8. Cloud, A., Vilcins, D. and McEwen, B., 2019. The effect of hawthorn (Crataegus spp.) on blood pressure: a systematic review. Advances in Integrative Medicine, 7, 167–75. https://doi.org/10.1016/j.aimed.2019.09.002
  9. Doğan, A., Bulut, G., Senkardes, I. and Tuzlacı, E., 2016. An ethnopharmacological analysis of Rosaceae taxa in Turkey. In WEI International Academic Conference Proceedings. Boston, USA, 51. Hürkul, M.M. and Köroğlu, A., 2019. A ethnobotanical review: The subfamily amygdaloideae (Rosaceae). Fabad Journal of Pharmaceutical Sciences, 44, 35-46.
  10. Karar, M.G.E., Pletzer, D., Jaiswal, R., Weingart, H. and Kuhnert, N., 2014. Identification, characterization, isolation and activity against Escherichia coli of quince (Cydonia oblonga) fruit polyphenols. Food Research International, 65, 121-129. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2013.10.040
  11. Karar, M.G.E. and Kuhnert, N., 2015. UPLC-ESI-Q-TOF-MS/MS Characterization of phenolics from Crataegus monogyna and Crataegus laevigata (Hawthorn) leaves, fruits and their herbal derived drops (Crataegutt Tropfen). Journal of Chemical Biology and Therapeutics, 1, 102. https://doi.org/10.4172/2572-0406.1000102
  12. Lin, H.-H., Chen, J.-H., Huang, C.-C. and Wang, C.-J., 2007. Apoptotic Effect of 3,4-dihydroxybenzoic acid on human gastric carcinoma cells involving JNK/p38 MAPK signaling activation. International Journal of Cancer, 120, 2306–2316. https://doi.org/10.1002/ijc.22571
  13. Melikoğlu, G., Bitiş, L. and Meriçli, A.H., 2004. Flavonoids of Crataegus microphylla. Natural Product Research, 18, 211-213. https://doi.org/10.1080/14786410310001620673
  14. Musial, C., Kuban-Jankowska, A. and Gorska-Ponikowska, M., 2020. Beneficial properties of green tea catechins. International Journal of Molecular Sciences, 21(5), 1744. https://doi.org/10.3390/ijms21051744
  15. Nazhand, A., Lucarini, M., Durazzo, A., Zaccardelli, M., Cristarella, S., Souto, S.B. and Santini, A., 2020. Hawthorn (Crataegus spp.): An updated overview on its beneficial properties. Forests, 11, 564. https://doi.org/10.3390/f11050564
  16. Shi, G.F., An, L.J., Jiang, B., Guan, S. and Bao, Y.M., 2006. Alpinia protocatechuic acid protects against oxidative damage in vitro and reduces oxidative stress in vivo. Neuroscience Letters, 403, 206–210. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2006.02.057
  17. Singh, B.N., Shankar, S. and Srivastava, R.K., 2011. Green tea catechin, epigallocatechin-3-gallate (EGCg), mechanisms, perspectives and clinical applications. Biochemical Pharmacology, 82, 1807–1821. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2011.07.093
  18. Svedström, U., Vuorela, H., Kostiainen, R., Huovinen, K., Laakso, I. and Hiltunen, R., 2002. High-performance liquid chromatographic determination of oligomeric procyanidins from dimers up to the hexamer in hawthorn. Journal of Chromatography A, 968, 53–60. https://doi.org/10.1016/S0021-9673(02)01000-2
  19. Tajali, A.A. and Khazaeipool, M., 2012. Effects of height and organs on Flavonoits of Crataegus microphylla C. Koch in Iran. International Journal of Biosciences, 2, 54–58.
  20. Yang, B. and Liu, P., 2012. Composition and health effects of phenolic compounds in hawthorn (Crataegus spp.) of different origins. Journal of the Science of Food and Agriculture, 92, 1578–90. https://doi.org/10.1002/jsfa.5671