KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Hitit Medical Journal / 2026 / Cilt: 7 Sayı: 2

CD34+ Hematopoietik Kök Hücrelerin Cryofit® DMSO Kullanılarak Kriyoprezervasyonu ve Sonuçları

Cryopreservation of CD34+ Hematopoietic Stem Cells Using Cryofit® DMSO and Its Outcomes

Semih Başcı(DOKUZ EYLUL UNIVERSITY, SCHOOL OF MEDICINE)0000-0003-4304-9245
Hikmettullah Batgi(DOKUZ EYLUL UNIVERSITY, SCHOOL OF MEDICINE)0000-0002-5993-1403
Sinem Namdaroğlu(DOKUZ EYLUL UNIVERSITY, SCHOOL OF MEDICINE)0000-0002-8074-7301
Sayfa
273–279
Yayın Tarihi
2025-06-23
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Hastaların medyan yaşı 58.5 (aralık: 19-75), ve kohortun %53,8’i kadındı.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Otolog hematopoetik kök hücre nakli (OKHN), hematolojik maligniteler ve immün bozukluklar için önemli bir tedavi yöntemidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:CD34+ hematopoetik kök hücrelerin (HKH) kriyoprezervasyonu, nakil başarısını sağlamak için kritik bir adımdır.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Hastaların medyan yaşı 58.5 (aralık: 19-75), ve kohortun %53,8’i kadındı.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:80 hasta
⚙️Değişkenler:Dimetil sülfoksit · hematopoetik kök hücre transplantasyonu · kriyoprezervasyon

Özet

Amaç: Otolog hematopoetik kök hücre nakli (OKHN), hematolojik maligniteler ve immün bozukluklar için önemli bir tedavi yöntemidir. CD34+ hematopoetik kök hücrelerin (HKH) kriyoprezervasyonu, nakil başarısını sağlamak için kritik bir adımdır. Dimetil sülfoksit (DMSO), yaygın olarak kullanılan bir kriyoprotektandır ancak infüzyona bağlı toksisiteler oluşturabilir. CryoFit® DMSO, hücre canlılığını artırmayı ve olumsuz etkileri azaltmayı amaçlamaktadır. Bu çalışma, DMSO ile kriyoprezervasyonun OKHN’de etkinliğini ve güvenliğini değerlendirmektedir. Gereç ve Yöntem: Bu çalışma, tek merkezli retrospektif bir analiz olup daha önceden CryoFit® DMSO ile kriyoprezervasyon yapılmış kök hücrelerden OKHN olan 80 hasta dahil edildi. Kök hücre mobilizasyonu, granülosit koloni stimüle edici faktör (G-CSF) ± kemoterapi ve gerekli durumlarda plerixafor kullanılarak gerçekleştirilmiştir. CD34+ hücreleri kriyoprezervasyondan önce akış sitometrisi ile sayıldı. Nakil sonrası kök hücre yamanması (engraftment), transfüzyon ihtiyacı ve infüzyona bağlı yan etkiler değerlendirildi. Veri analizi SPSS 26.0 yazılımı ile yapıldı. Bulgular: Hastaların medyan yaşı 58.5 (aralık: 19-75), ve kohortun %53,8’i kadındı. En yaygın tanı multipl miyelomdu (%57,5). Toplanan CD34+ hücrelerin medyan miktarı 5.8 x 106/kg (aralık: 3.2-14) idi. Çözündürme sonrası hücre canlılığı %98 (aralık: %90-99.5) olarak bulundu. Nötrofil ve trombosit engraftmanı sırasıyla medyan 13 ve 17 gün olarak izlendi. Medyan hastanede kalış süresi 24 gün (aralık: 15-60) idi. Hastaların %26,3’ünde infüzyona bağlı yan etkiler gözlendi, en yaygın olanı bulantı/kusmaydı (%15) ve tüm yan etkiler yönetilebilir düzeydeydi. Sonuç: CryoFit® DMSO, CD34+ HKH’ların çözündürme sonrası yüksek canlılık oranları ile etkin bir şekilde korunmasını sağlamıştır. Hafif infüzyona bağlı toksisiteler gözlemlenmiş ancak geçici olmuştur. Bu sonuçlar, CryoFit® DMSO’nun OKHN’de kullanımını desteklemektedir. Kriyoprezervasyon protokollerini optimize etmek için çok merkezli ileri çalışmalar gereklidir.

Abstract

Objective: Autologous hematopoietic stem cell transplantation (auto-SCT) is a key treatment for hematological malignancies and immune disorders. Cryopreservation of CD34+ hematopoietic stem cells (HSCs) ensures transplant success. Dimethyl sulfoxide (DMSO) is a widely used cryoprotectant but can cause infusion-related toxicities. CryoFit® DMSO aims to enhance cell viability while reducing adverse effects. This study evaluates its efficacy and safety in auto-SCT. Material and Method: A single-center, retrospective study was conducted on 80 patients who underwent auto- SCT with CD34+ HSCs cryopreserved using CryoFit® DMSO. Mobilization was performed using granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) ± chemotherapy and plerixafor when required. CD34+ cells were quantified via flow cytometry before cryopreservation. Post-transplant engraftment, transfusion needs, and infusion-related side effects were assessed. Data analysis was conducted using SPSS 26.0. Results: The median patient age was 58.5 years (range: 19-75) and 53.8% (n=43) of the cohort sample was female. Multiple myeloma was the most common diagnosis (57.5%). The median collected CD34+ cell count was 5.8 x 106/ kg (range: 3.2-14). Post-thaw viability was 98% (range: 90-99.5%). Neutrophil and platelet engraftment occurred at medians of 13 and 17 days, respectively. The median hospitalization duration was 24 days (range: 15-60). Infusion-related adverse effects occurred in 26.3% of patients, primarily nausea/vomiting (15%), all manageable. Conclusion: CryoFit® DMSO effectively preserves CD34+ HSCs with high post-thaw viability and favorable engraftment. Mild infusion-related toxicities were observed but were transient. The results support its continued use in auto-SCT. Further multicenter studies are required to optimize cryopreservation protocols.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Başcı, S., Batgi, H., Namdaroğlu, S. (2025). CD34+ Hematopoietik Kök Hücrelerin Cryofit® DMSO Kullanılarak Kriyoprezervasyonu ve Sonuçları. Hitit Medical Journal, Cilt: 7 Sayı: 2, 273–279. https://doi.org/10.52827/hititmedj.1637294

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (29)

  1. Copelan EA. Hematopoietic stem-cell transplantation. N Engl J Med 2006;354:1813-1826.
  2. Logue M, Savani BN. Understanding basic steps to hematopoietic stem cell transplantation evaluation. Am J Blood Res 2013;3:102-106.
  3. Berebichez-Fridman R, Montero-Olvera PR. Sources and clinical applications of mesenchymal stem cells: state-of-the-art review. Sultan Qaboos Univ Med J 2018;18(3):e264-e277.
  4. Cottler-Fox MH, Lapidot T, Petit I et al. Stem cell mobilization. Hematology Am Soc Hematol Educ Program 2003:419-437.
  5. Mitrus I, Smagur A, Giebel S et al. A faster reconstitution of hematopoiesis after autologous transplantation of hematopoietic cells cryopreserved in 7.5% dimethyl sulfoxide if compared to 10% dimethyl sulfoxide containing medium. Cryobiology 2013;67:327-331.
  6. Allan DS, Keeney M, Popma J et al. Peripheral blood stem cells: number of viable CD34+ cells reinfused predicts engraftment in autologous hematopoietic stem cell transplantation summary. Bone Marrow Transplant 2002;29:967-972.
  7. World Health Organization. Guidance on Regulations for the Transport of Infectious Substances 2013-2014. World Health Organization 2013:6-7.
  8. Jansen J, Nolan PL, Reeves MI et al. Transportation of peripheral blood progenitor cell products: effects of time, temperature and cell concentration. Cytotherapy 2009;11:79-85.
  9. Kao GS, Kim HT, Daley H, et al. Validation of short-term handling and storage conditions for marrow and peripheral blood stem cell products. Transfusion 2011;51:137-145.
  10. Kardduss-Urueta A, Gale RP, Gutierrez-Aguirre CH et al. Freezing the graft is not necessary for autotransplants for plasma cell myeloma and lymphomas. Bone Marrow Transplant 2018;53:457-460.
  11. Moreb J, Byrne M, Salmasinia D, et al. Tandem autologous stem cell transplantation for multiple myeloma patients based on response to their first transplant-a prospective phase II study. Clin Med Insights Oncol 2014;8:101-105.
  12. Vrhovac R, Perić Z, Jurenec S et al. Post-thaw viability of cryopreserved hematopoietic progenitor cell grafts: does it matter? Coll Antropol 2010;34(1):163-169.
  13. Felix OMWO, Tunes G, Ginani VC, et al. The influence of cell concentration at cryopreservation on neutrophil engraftment after autologous peripheral blood stem cell transplantation. Hematol Transfus Cell Ther 2018;40:233-239.
  14. Gonçalves TL, Benvegnú DM, Bonfanti G. Specific factors influence the success of autologous and allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Oxid Med Cell Longev 2009;2:82-87.
  15. Guttridge M, Soh T, Belfield H, Sidders C, Watt S. Storage time affects umbilical cord blood viability. Transfusion 2014;54:1278-1285.
  16. Donmez A, Yilmaz F, Soyer N, Cagirgan S, Arik B, Tombuloglu M. The loss of CD34+ cells in peripheral hematopoietic stem cell products cryopreserved by noncontrolled rate freezing and stored at -80°C after overnight storage. Transfus Apher Sci 2014;51:188-192.
  17. Watz E, Remberger M, Ringden O et al. Quality of the hematopoietic stem cell graft affects the clinical outcome of allogeneic stem cell transplantation. Transfusion 2015;55:2339-2350.
  18. Morgenstern DA, Ahsan G, Brocklesby M et al. Post-thaw viability of cryopreserved peripheral blood stem cells (PBSC) does not guarantee functional activity: important implications for quality assurance of stem cell transplant programs. Br J Haematol 2016;174:942-951.
  19. Bittencourt MCB, Mariano L, Moreira F, Schmidt-Filho J, Mendrone-Jr A, Rocha V. Cryopreserved versus non-cryopreserved peripheral blood stem cells for autologous transplantation after high-dose melphalan in multiple myeloma: comparative analysis. Bone Marrow Transplant 2019;54:138-141.
  20. Donmez A, Tombuloglu M, Gungor A, Soyer N, Saydam G, Cagirgan S. Clinical side effects during peripheral blood progenitor cell infusion. Transfus Apher Sci 2007;36:95-101.
  21. Shu Z, Heimfeld S, Gao D. Hematopoietic SCT with cryopreserved grafts: adverse reactions after transplantation and cryoprotectant removal before infusion. Bone Marrow Transplant 2014;49:469-476.
  22. Santos NCF-CJ. Multidisciplinary utilization of dimethyl sulfoxide: pharmacological, cellular and molecular aspects. Biochem Pharmacol 2003;65:1035-1041.
  23. Hoyt R, Szer J, Grigg A. Neurological events associated with the infusion of cryopreserved bone marrow and/or peripheral blood progenitor cells. Bone Marrow Transplant 2000;25:1285-1287.
  24. Alessandrino EP, Bernasconi P, Caldera D et al. Adverse events occurring during bone marrow or peripheral blood progenitor cell infusion: analysis of 126 cases. Bone Marrow Transplant 1999;23:533-537.
  25. Sutherland DR, Anderson L, Keeney M, Nayar R, Chin-Yee I. The ISHAGE guidelines for CD34+ cell determination by flow cytometry. International Society of Hematotherapy and Graft Engineering. J Hematother 1996;5(3):213-226.
  26. Awan M, Buriak I, Fleck R et al. Dimethyl sulfoxide: a central player since the dawn of cryobiology, is efficacy balanced by toxicity? Regen Med 2020;15(3):1463-1491.
  27. Giralt S, Costa L, Schriber J et al. Optimizing autologous stem cell mobilization strategies to improve patient outcomes: consensus guidelines and recommendations. Biol Blood Marrow Transplant 2014;20(3):295-308.
  28. Otrock ZK, Sempek DS, Carey S, Grossman BJ. Adverse events of cryopreserved hematopoietic stem cell infusions in adults: a single-center observational study. Transfusion 2017;57(6):1522-1526.
  29. Mitrus I, Smagur A, Fidyk W et al. Reduction of DMSO concentration in cryopreservation mixture from 10% to 7.5% and 5% has no impact on engraftment after autologous peripheral blood stem cell transplantation: results of a prospective, randomized study. Bone Marrow Transplant 2018;53(3):274-280.