KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Trakya Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi / 2026 / Cilt: 12 Sayı: 2

SANGUISORBA MINOR’DA (ROSACEAE) BAZI ANTER YAPILARI

SOME ANTHER STRUCTURES IN SANGUISORBA MINOR SCOP. subsp. MURICATA (SPACH) BRIQ (ROSACEAE)

Mehmet Aybeke(Trakya University, Faculty of Science, Dept. of Biology, Section of Botany, Edirne)
Sayfa
77–83
Yayın Tarihi
2016-08-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuçda anterin kenar, konnektif doku gibi değişik kısımlarında nişasta ve protein granüllerinin biriktiği tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada Sanguisorba minor subsp. muricata’da bazı anter yapılarının incelenmesi amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu nedenle anterler, modifiye edilmiş gliserin-jelatin yöntemi ile ezilmiş ve ilave bazı histokimyasal boyama yöntemleri ile de test edilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuçda anterin kenar, konnektif doku gibi değişik kısımlarında nişasta ve protein granüllerinin biriktiği tespit edilmiştir.
🔬Tür:Makale
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Anter · histokimya · nişasta

Özet

Bu çalışmada Sanguisorba minor subsp. muricata’da bazı anter yapılarının incelenmesi amaçlanmıştır. Bu nedenle anterler, modifiye edilmiş gliserin-jelatin yöntemi ile ezilmiş ve ilave bazı histokimyasal boyama yöntemleri ile de test edilmiştir. Sonuçda anterin kenar, konnektif doku gibi değişik kısımlarında nişasta ve protein granüllerinin biriktiği tespit edilmiştir. Bundan başka ayrıca, olgunlaşma sürecinde bu maddelerin pollen tanelerinde de bulunduğu tespit edilmiştir. İlaveten anter boşluklarında içleri protein granüller ile dolu olan “balon” şeklinde ystlanmıştır. Bu bulgular ışığında, bu yapıların pollen gelişimi açısından önemleri tartışılmıştır.

Abstract

In this study, investigation of some anther structures in Sanguisorba minor Scop. subsp. muricata (Spach) Briq. was aimed. Anthers were squashed by modified glycerine-gelatine method, and additionally different histochemical stainings also were tested. The result showed that in different parts of anther, such as marginal, connection tissue, starch and protein granules accumulated. Furthermore, during maturation these deposits were detected in pollen grains also. In addition, a very interesting feature, balloon-like structures filled by proteins, were observed in anther cavity. In the light of these findings, theirs importance on pollen development was discussed.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Aybeke, M. (2016). SANGUISORBA MINOR’DA (ROSACEAE) BAZI ANTER YAPILARI. Trakya Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, Cilt: 12 Sayı: 2, 77–83. https://ajindex.com/articles/1328589

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (23)

  1. BHOJVANI SS and WY SOH. Current trends in the embryology of Angiosperms. Kluver Acad. Publishers, Dordrecht, Netherlands, 2001.
  2. CHUNG, KS, WJ ELISENS and JJ SKVARLA. Pollen morphology and its phylogenetic significance in tribe Sanguisorbeae (Rosaceae). Plant Systematics Evolut, 285(3-4): 139-148, 2010.
  3. DE HALAC NI and C HARTE. Genetics and development of morphological and physiological characters of male sterility in Oenothera. Protoplasma,187:1-4:22-30. 1995.
  4. DUARTE-SİLVA E, ALL VANZELA and JEA MARİATHE. Developmental and cytogenetic analyses of pollen sterility in Valeriana scandens L. Sex. Plant Reprod, 103(2): 105-113, 2010.
  5. EL-GHAZALY G, S HUYSMANS and E SMETS. Structure and Development-Pollen development of Rondeletia odorata (Rubiaceae). Am.J.Bot, 88(1): 14-30, 2001.
  6. GROLIG F and G WAGNER. Characterization of the isolated calcium bindings vesicles from the green alga Mougetia scalaris and their relevance to chloroplast movement. Planta, 177: 169-177, 1989.
  7. HANSSON T and G. EL-GHAZALY. Development and cytochemistry of Mitriostigma axillare (Rubiaceae). Grana, 39(2): 65-89. 2000.
  8. HEBDA RJ and CC CHINNAPPA. Studies on pollen morphology of Rosaceae in Canada. Review of Palaeobotany and Palynology, 64(1-4): 103-108, 1990.
  9. HESSE, HALBRITTER, ZETTER, WEBER, BUCHNER, FROSCH-RADIVO, ULRICH, Pollen terminology, An illustrated handbook. SpringerWien, New York. 2009.
  10. IZHAR S and R FRANKEL. Mechanism of male sterility in Petunia. The relationship between Ph, callose activity in the anthers and the breakdown of the microsporogenesis. Theor. Appl. Genet, 41: 104- 108. 1971.
  11. JENSEN WA. Botanical Hystochemistry, W. H. Freeman & Co., San Fransisco, CA USA. 1962
  12. JOHANSEN DA. Plant Embryology, Embryogeny of the Spermatophyta. Watham, MASS, Chronica Botanica Co., New York, pp: 268-270. 1950.
  13. JOHRI BM Embryology of Angiosperms. USA. 1984.
  14. LERSTEN NR. Flowering plant embryology, Blackvell Publishing, Iowa, USA, 2004
  15. LINDSTROM JT, C LEI, ML JONES and WR WOODSON. Developmental physiology, accumulation of 1-aminocycloppropane-1-carboxylic acid (ACC) in Petunia pollen is associated with expression of pollenspesific ACC synthase late in development. J. Am. Soc. Horticultural Sci, 124 (2): 145-151, 1999.
  16. LOUKIDES CA, AH BROADWATER and PA BEDINGER. 2 new male-sterile mutants of Zea mays (Poaceae) with abnormal tapetal cell morphology. Am. J. Bot, 82(8): 1017-1023, 1995.
  17. MASCARENHAS JP. Pollen tube growth and Ribonucleic acid synthesis by vegetative nuclei of Tradescantia. Am. J. Bot, 53(6): 563-569, 1966.
  18. PACINI EGG and M HESSE. Pollenkitt – its composition forms and functions. Flora, 200 (5-6): 399- 415. 2005.
  19. RIVERO-GUERRO, AO. Cytogenetics, geographical distribution, and pollen fertility of diploid and tetraploid cytotypes of Santolina pectinata Lag. (Asteraceae: Anthemideae). Bot. J of Linn. Soc. 156(4): 657-667, 2008.
  20. SANDERS PMB, Q ANHTLAV, K WETERINGS, KN MCINTIRE and Y HSU et al. Anther developmental defects in Arabidopsis thaliana, male-sterile mutants, Sexual Plant Reprod, 11 (6): 297- 322, 1998.
  21. TIAN HQ, AX KUANG, ME MUSGRAVE and SD RUSSEL. Calcium distribution in fertile and sterile anthers of a photoperiod sensitive genic male-sterile rice. Planta, 204(2): 183-192, 1998.
  22. YING-QIANG W, DIANG-XIANG Z and ZHONG-YI C. Pollen Histochemistry and Pollen: Ovule Ratios in Zingiberaceae. Ann Bot, 94 (4): 583-591, 2004.
  23. JENSEN WA. Botanical Hystochemistry, W. H. Freeman & Co., San Fransisco, CA USA. 1962