Dergiler / Selcuk Dental Journal / 2026 / Volume: 7 Issue: 2

Farklı Pulpa Kaplama Materyallerinin Toplam Oksidan ve Antioksidan Kapasitelerinin İnsan Dental Pulpa Kök Hücreleri Üzerinde Değerlendirilmesi

Evaluation of Total Oxidant and Antioxidant Status of Various Pulp Capping Materials on Human Dental Pulp Stem Cells

Seçkin Aksu(Mersin Üniversitesi Diş Hekimliği Fakültesi Çocuk Diş Hekimliği Anabilim Dalı)0000-0002-5196-215X
Taşkın Gürbüz(İstanbul Medeniyet Üniversitesi Diş Hekimliği Fakültesi Çocuk Diş Hekimliği Anabilim Dalı)
Sayfa
—
Yayın Tarihi
2020-08-01
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: 24 saatlik değerlendirme sonucunda, sadece Mineral Trioksit Agregat, kontrol grubuna benzer antioksidatif koruma gösterirken (p> 0.05), diğer gruplar bu seviyenin altında kalmıştır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bu çalışmanın amacı, beş farklı pulpa kaplama materyalinin ( Mineral Trioksit Agregat , Biodentin, Pulpine Mineral, Endo Repair ve Çinko Oksit Öjenol ) toplam oksidan ve antioksidan seviyelerinin insan dental pulpa kök hücreleri üzerinde değerlendirilmesidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Filtre difüzyon testi, ISO standartlarına göre uygulanmıştır. 24. ve 72. saatlerin sonunda biyokimyasal analiz yapılmıştır(n = 3).
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: 24 saatlik değerlendirme sonucunda, sadece Mineral Trioksit Agregat, kontrol grubuna benzer antioksidatif koruma gösterirken (p> 0.05), diğer gruplar bu seviyenin altında kalmıştır.
🔬Tür:Research Article
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Dental pulp capping · calcium phosphate · free radicals

Özet

Amaç: Bu çalışmanın amacı, beş farklı pulpa kaplama materyalinin ( Mineral Trioksit Agregat , Biodentin, Pulpine Mineral, Endo Repair ve Çinko Oksit Öjenol ) toplam oksidan ve antioksidan seviyelerinin insan dental pulpa kök hücreleri üzerinde değerlendirilmesidir. Gereç ve Yöntemler: Çalışmamızda Amerikan Tipi Kültür Koleksiyonu insan dental pulpa kök hücreleri kullanılmıştır. Filtre difüzyon testi, ISO standartlarına göre uygulanmıştır. 24. ve 72. saatlerin sonunda biyokimyasal analiz yapılmıştır(n = 3). Ölçümler arasında bağımsız grup karşılaştırmaları için Kruskal Wallis Varyans Analizi ve Mann-Whitney U testi kullanılmıştır. Bulgular: 24 saatlik değerlendirme sonucunda, sadece Mineral Trioksit Agregat, kontrol grubuna benzer antioksidatif koruma gösterirken (p> 0.05), diğer gruplar bu seviyenin altında kalmıştır. Tüm grupların toplam antioksidan durumunun 24 ve 72 saat arasında arttığı belirlenmiştir (p <0.05). 72 saatin sonunda, en iyi koruma Biodentin ve Pulpine Mineral gruplarındai en zayıf koruma ise Çinko Oksit Eugenol grubunda bulunmuştur (p <0.05). Sonuçlar: Yapılan analize göre, tüm pulpa kaplama materyallerinin insan dental pulpa kök hücreleri üzerinde hem oksidatif etki hem de antioksidan savunma mekanizmasını uyarıcı etkiye sahip olduğu belirlenmiştir. İlk 24 saatte en yüksek korunma Mineral Trioxide Aggregate grubunda, 72 saatte ise; Biodentin ve propolis içeren Pulpine Mineral gruplarında bulunmuştur. ZnOEu grubunun antioksidatif etkisinin yetersiz olduğu tespit edilmiştir. Propolis içerikli pulpa kaplama materyalinin kök hücreler üzerindeki olumlu etkisi nedeniyle kalsiyum fosfat içerikli ürünlere iyi bir alternatif olabileceği ortaya konulmuştur. Anahtar Kelimeler: Diş pulpa kaplaması, kalsiyum fosfat, serbest radikaller, propolis.

Abstract

Background: The aim of this study was to evaluate the total oxidant and antioxidant status of five pulp capping materials (Mineral Trioxide Aggregate, Biodentine, Pulpine Mineral, Endo Repair and Zinc Oxide Eugenol) on human dental pulp stem cells. Methods: In our study, American Type Culture Collection human dental pulp stem cells were used. The filter diffusion test was applied according to ISO standards. At the end of 24 th and 72 nd hours, biochemical analysis was conducted (n=3). Kruskal Wallis Variance Analysis and Mann-Whitney U test were used for independent group comparisons between measurements. Results: As a result of 24 hours evaluation, only Mineral Trioxide Aggregate exhibits antioxidative protection similar to control group (p> 0.05), while other groups remain below this level. It was determined that the total antioxidant status of all groups was increased between 24 and 72 hours (p<0.05). At the end of 72nd hours, the best preservative groups were Biodentine and Pulpine Mineral, additionally the weakest protective group was Zinc Oxide Eugenol (p<0.05). Conclusions: According to the analysis, it was determined that all pulp capping materials have an oxidative effect on human dental pulp stem cells and also have an antioxidant defense mechanism. The highest protection in the acute exposure was found in the Mineral Trioxide Aggregate group and additionally, Biodentine and Pulpine Mineral (includig propolis) groups were found to be the most protective for a long time. The antioxidative effect of ZnOEu group was found to be insufficient. The propolis containing pulp capping material has been shown to be a good alternative to calcium phosphate products due to its positive effect on stem cells. Keywords: Dental pulp capping, calcium phosphate, free radicals, propolis.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Aksu, S., Gürbüz, T. (2020). Farklı Pulpa Kaplama Materyallerinin Toplam Oksidan ve Antioksidan Kapasitelerinin İnsan Dental Pulpa Kök Hücreleri Üzerinde Değerlendirilmesi. Selcuk Dental Journal, Volume: 7 Issue: 2. https://doi.org/10.15311/selcukdentj.498311

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (34)

  1. Schieber M, Chandel N. ROS function in redox signaling and oxidative stress. Curr Biol. 2014; 24.10:453-62. doi: 10.1016/j.cub.2014.03.034
  2. Noctor G, Mhamdi A, Foyer C. Oxidative stress and antioxidative systems: recipes for successful data collection and interpretation. Plant Cell Environ. 2016; 39.5: 1140-60. doi: 10.1111/pce.12726.
  3. Erel O. A novel automated direct measurement method for total antioxidant capacity using a new generation, more stable ABTS radical cation. Clin Biochem. 2004; 37.4: 277-85. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2003.11.015
  4. Taso E, Stefanovic V, Stevanovic I, Vojvodic D, Topic A, Petkovic-Curcin A, et al. Influence of Dental Restorations on Oxidative Stress in Gingival Crevicular Fluid. Oxid Med Cell Longev. 2018; Jul 24;2018:1823189. doi: 10.1155/2018/1823189
  5. Oktay E, Tort H, Yıldız O, Ulusoy K, Topcu F, Ozer C. Dental resin curing blue light induces vasoconstriction through release of hydrogen peroxide. J Photochem Photobiol B. 2018; 185:41-5. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2018.05.023
  6. Gomes-Cornélio A, Rodrigues E, Salles L, Mestieri L, Faria G, Guerreiro-Tanomaru J, et al. Bioactivity of MTA Plus, Biodentine and an experimental calcium silicate‐based cement on human osteoblast‐like cells. Int Endod J. 2017; 50(1):39-47. doi: 10.1111/iej.12589
  7. Bhat S, Hegde S, Adhikari F, Bhat V. Direct pulp capping in an immature incisor using a new bioactive material. Contemp Clin Dent. 2014; 5(3):393-6. doi: 10.4103/0976-237X.137967
  8. Ahangari Z, Naseri M, Vatandoost F. Propolis: Chemical Composition and Its Applications in Endodontics. Iran Endod J. 2018; 13(3):285-92 doi: 10.22037/iej.v13i3.20994.
  9. Regoli F, Winston G. Quantification of total oxidant scavenging capacity of antioxidants for peroxynitrite, peroxyl radicals, and hydroxyl radicals. Toxicol Appl Pharmacol. 1999; 156(2):96-105. doi: 10.1006/taap.1999.8637
  10. Wataha JC. Principles of biocompatibility for dental practitioners. J Prosthet Dent. 2001; 86(2):203-9. doi: 10.1067/mpr.2001.117056
  11. Hanks CT, Wataha JC, Sun Z. In vitro models of biocompatibility: a review. Dent Mater. 1996; 12(3):186-93. PMID: 9002862
  12. Tuncer S, Demirci M. Dental materyallerde biyouyumluluk değerlendirmeleri. Atatürk Üniv Diş Hek Fak Derg. 2011; 21: 141-9.
  13. Mestieri L, Gomes-Cornelio A, Rodrigues E, Salles LP, Bosso-Martelo R, Guerreiro-Tanomaru J, et. al. Biocompatibility and bioactivity of calcium silicate-based endodontic sealers in human dental pulp cells. J Appl Oral Sci. 2015; 23(5):467-71. doi: 10.1590/1678-775720150170
  14. Atalayın Ç, Ergücü Z, Tezel H. Diş hekimliğinde kök hücre ve dental pulpa kök hücreleri. Acta Odontologica Turcica. 2012; 29: 115-9.
  15. Gronthos S, Mankani M, Brahim J, Robey PG, Shi S. Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in vitro and in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000; 97(25):13625-30 doi: 10.1073/pnas.240309797
  16. Verma K, Bains R, Bains V, Rawtiya M, Loomba K, Srivastava S. Therapeutic potential of dental pulp stem cells in regenerative medicine: An overview. Dent Res J (Isfahan). 2014; 11(3):302-8. PMID: 25097638 PMCID: PMC4119361
  17. Graziano A, d'Aquino R, Laino G, Papaccio G. Dental pulp stem cells: a promising tool for bone regeneration. Stem Cell Rev. 2008; 4(1):21-6. doi: 10.1007/s12015-008-9013-5
  18. Tekeli S, Arısu Naghavi E, Gökçe B, Sır G, Yiğittürk G, Çavuşoğlu T, et al. Kök hücreler; mezenkimal kök hücreler ve güncel klinik uygulamaları. FNG & Bilim Tıp Transplantasyon Dergisi. 2016; 1(2):72-83.
  19. Murray P, Godoy C, Godoy F. How is the biocompatibilty of dental biomaterials evaluated? Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2007; 12(3):E258-66. PMID: 17468726Sjögren G, Sletten G, Dahl J. Cytotoxicity of dental alloys, metals, and ceramics assessed by millipore filter, agar overlay, and MTT tests. J Prosthet Dent. 2000; 84(2):229-36. doi: 10.1067/mpr.2000.107227
  20. Merdad K, Pascon A, Kulkarni G, Santerre P, Friedman S. Short-term cytotoxicity assessment of components of the epiphany resin-percha obturating system by indirect and direct contact millipore filter assays. J Endod. 2007; 33(1):24-7. doi: 10.1016/j.joen.2006.10.003
  21. Saw T, Cao T, Yap A, Lee N. Tooth slice organ culture and established cell line culture models for cytotoxicity assessment of dental materials. Toxicol In Vitro. 2005; 19(1):145-54. doi: 10.1016/j.tiv.2004.08.006
  22. Browne R, Tyas M. Biological testing of dental restorative materials in vitro--a review. J Oral Rehabil. 1979; 6(4):365-74. PMID: 291706
  23. Guven G, Cehreli Z, Ural A, Serdar M, Basak F. Effect of mineral trioxide aggregate cements on transforming growth factor β1 and bone morphogenetic protein production by human fibroblasts in vitro. J Endod. 2007; 33(4):447-50. doi: 10.1016/j.joen.2006.12.020
  24. Farhadmollashahi N, Ghotbi F, Karkeabadi H, Havaei R. Cytotoxic effects of mineral trioxide aggregate, calcium enrichedmixture cement, Biodentine and octacalcium pohosphate onhuman gingival fibroblasts. J Dent Res Dent Clin Dent Prospects. 2016; 10(2):75-80. doi: 10.15171/joddd.2016.012
  25. Saberi E, Karkehabadi H, Mollashahi N. Cytotoxicity of Various Endodontic Materials on Stem Cells of Human Apical Papilla. Iran Endod J. 2016; 11(1):17-22. doi: 10.7508/iej.2016.01.004
  26. Zanini M, Sautier J, Berdal A, Simon S. Biodentine induces immortalized murine pulp cell differentiation into odontoblast-like cells and stimulates biomineralization. J Endod. 2012; 38(9):1220-6. doi: 10.1016/j.joen.2012.04.018
  27. Koubi G, Colon P, Franquin J, Hartmann A, Richard G, Faure M, et al. Clinical evaluation of the performance and safety of a new dentine substitute, Biodentine, in the restoration of posterior teet--a prospective study. Clin Oral Investig. 2013 Jan;17(1):243-9. doi: 10.1007/s00784-012-0701-9
  28. Agrafioti A, Taraslia V, Chrepa V, Lymperi S, Panopoulos P, Anastasiadou E, et al. Interaction of dental pulp stem cells with Biodentine and MTA after exposure to different environments. J Appl Oral Sci. 2016; 24(5):481-486. doi: 10.1590/1678-775720160099
  29. E Peng W, Liu W, Zhai W, Jiang L, Li L, Chang J,et al. Effect of tricalcium silicate on the proliferation and odontogenic differentiation of human dental pulp cells. J Endod. 2011; 37(9):1240-6. doi: 10.1016/j.joen.2011.05.035
  30. Minamikawa H, Yamada M, Deyama Y, Suzuki K, Kaga M, Yawaka Y, et. al. Effect of N-acetylcysteine on rat dental pulp cells cultured on mineral trioxide aggregate. J Endod. 2011 May;37(5):637-41 doi: 10.1016/j.joen.2011.02.012
  31. Pascual C, Gonzalez R., Torricella R. Scavenging action of propolis extract against oxygen radicals. J Ethnopharmacol. 1994; 41(1-2):9-13. PMID: 8170165
  32. Mujica V, Orrego R, Pérez J, Romero P, Ovalle P, Zúñiga-Hernández J. The role of propolis in oxidative stress and lipid metabolism: a randomized controlled trial. E Evid Based Complement Alternat Med. 2017; 2017:4272940. DOI: 10.1155/2017/4272940
  33. Lee, Jung-Hwan, et al. Immunomodulatory/anti-inflammatory effect of ZOE-based dental materials. Dent Mater. 2017; 33(1):e1-e12. doi: 10.1016/j.dental.2016.09.012
  34. Malkoç M, Demİr N, Şengün A, Bozkurt Ş, Hakki S. Cytotoxicity of temporary cements on bovine dental pulp-derived cells (bDPCs) using realtime cell analysis. J Adv Prosthodont. 2015; 7(1):21-6. doi: 10.4047/jap.2015.7.1.21