Dergiler / Mediterranean Agricultural Sciences / 2019 / Cilt: 32 - Sayı: 2

Herbisit dayanıklılığını anlamak: Domates ve patatesteki AHAS (asetohidroksiasit sentetaz) genlerinin biyoinformatik analizleri

Insights into herbicide resistance: Bioinformatics analyses of AHAS (acetohydroxyacid synthase) genes in tomato and potato

Sayfa
201–210
Yayın Tarihi
2019-08-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

AHAS proteinleri evrimsel olarak yüksek oranda korunmasına rağmen bu proteinlerin uzunlukları farklılık göstermektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Enzimlerin mutasyon bölgelerinin belirlenmesi herbisitlere dayanıklı bitkilerin yetiştirilmesi ve yabancı ot kontrol uygulamalarının başarısı için önemlidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışma domates (SlAHAS) ve patatesteki (StAHAS) asetohidroksiasit sentetaz (AHAS, EC 2.2.1.6) enzimlerine herbisit dayanıklılığını sağlayacak mutasyon bölgelerinin biyoinformatik yöntemlerle belirlenmesi amacıyla yapılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:AHAS proteinleri evrimsel olarak yüksek oranda korunmasına rağmen bu proteinlerin uzunlukları farklılık göstermektedir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Asetohidroksiasit sentetaz · Asetolaktat sentetaz · Herbisit dayanıklılığı

Özet

Enzimlerin mutasyon bölgelerinin belirlenmesi herbisitlere dayanıklı bitkilerin yetiştirilmesi ve yabancı ot kontrol uygulamalarının başarısı için önemlidir. Bu çalışma domates (SlAHAS) ve patatesteki (StAHAS) asetohidroksiasit sentetaz (AHAS, EC 2.2.1.6) enzimlerine herbisit dayanıklılığını sağlayacak mutasyon bölgelerinin biyoinformatik yöntemlerle belirlenmesi amacıyla yapılmıştır. AHAS proteinleri evrimsel olarak yüksek oranda korunmasına rağmen bu proteinlerin uzunlukları farklılık göstermektedir. SlAHAS’ta Lys541 ve Val542 amino asitleri (aa) enzim aktivitesi için önem taşımaktadır ve Lys541 Ala, Phe, Arg, ve Val aa ile yer değiştirebilirken; Ile sadece Val542 ile yer değiştirebilir aa olarak bulunmuştur. Benzer şekilde StAHAS’ta Ile124, Met266 ve Leu272 stabilizasyonu sağlayacı aa olarak bulunmuştur. Lys ve Arg, Ile124 ile değişebilir aa olarak saptanırken; Leu, Met266 ile ve Ala, Pro ve Ser ise Leu272 ile enzim stabilizayonunu sağlayıcı yer değiştirebilir aa olarak bulunmuştur. SlAHAS’taki kenetlenme analizlerine göre klorosülfüron (CS) için Ser387, Arg235 ve His341; imazakin (IQ) içinse Phe11, Ala40 ve His341 en yüksek bağlanma sonuçlarını vermiştir. StAHAS’ta ise Lys232, Asn123 ve Arg53’ün CS ile bağlandığı; Lys405, Lys489 ve Arg268 ise IQ ile bağlanabilecek aa’ler olduğu tespit edilmiştir. His341 ve Gln478’in CS ve IQ ile SlAHAS’ta; Val61 ve Arg366’nın ise StAHAS’ta sırasıyla her iki ligand ile bağ yapabildiği görülmüştür. Bunun yanısıra Arg366 SlAHAS’ta IQ ligantının bağlanabileceği aa olarak bulunmuştur.

Abstract

The identification of enzymes’ mutable sites is important to the development of herbicide resistant crops and for weed control practices. The objective of this study was to provide insights into mutable residues causing resistance to the acetohydroxyacid synthase enzyme (AHAS, EC 2.2.1.6) inhibitor herbicides in the tomato (SlAHAS) and potato (StAHAS) through bioinformatics approaches. The results showed AHAS proteins investigated in this study were highly conserved but differed in length. Mutation analyses showed that Lys541 and Val542 in SlAHAS were mutable sites for preservation of the enzyme activity. While Ala, Phe, Arg, and Val residues were found to be substitutable with Lys541, Ile was exchangeable for Val542. Similarly, Ile124, Met266, and Leu272 in StAHAS were identified as protein stabilizing residues. In this respect, Lys and Arg were substitutable residues for Ile124, whereas Leu was for Met266 and Ala, Pro and Ser were suitable residues for Leu272 regarding enzyme stabilization. The docking analyses displayed that the best binding affinities were obtained for Ser387, Arg235, and His341 for chlorosulfuron (CS) and Phe11, Ala40, and His341 have the highest binding score for imazaquin (IQ) in SlAHAS. As for StAHAS, Lys232, Asn123, and Arg53 residues were found to bind with CS whereas Lys405, Lys489, and Arg268 amino acids were identified as sites where IQ bound. His341 and Gln478 were binding residues for both CS and IQ in SlAHAS whereas both ligands were found to bind with Val61 and Arg366 in StAHAS. Arg366 was identified as a binding site in SlAHAS for IQ as well.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KURT, F. (2019). Herbisit dayanıklılığını anlamak: Domates ve patatesteki AHAS (asetohidroksiasit sentetaz) genlerinin biyoinformatik analizleri. Mediterranean Agricultural Sciences, Cilt: 32 - Sayı: 2, 201–210. https://ajindex.com/articles/123026

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Adamczewski K, Maysiak K (2012) The mechanism of resistance to ALS-inhibiting herbicides in biotypes of wind bent grass (Apera spica-venti L.) with cross and multiple resistance. Polish Journal of Agronomy 10: 3–8.
  2. Bailey TL, Mikael Bode´n B, Buske FA, Frith M, Grant CE, Clementi L, Ren J, Li WW, Noble WS (2009) MEME SUITE: tools for motif discovery and searching. Nucleic Acids Research 37: 202–208.
  3. Bendl J, Stourac J, Sebestova E, Vavra O, Musil M, Brezovsky J, Damborsky J (2016) HotSpot Wizard 2.0: automated design of site-specific mutations and smart libraries in protein engineering. Nucleic Acids Research 44(W1): W479-W487. Bernasconi P, Woodworth AR, Rosen BA, Subramanian MV, Siehl DL (1995) A naturally occurring point mutation confers broad range tolerance to herbicides that target acetolactate synthase. The Journal of Biological Chemistry 270(29): 17381-17385.
  4. Brosnan JT, Vargas JJ, Breeden GK, Grier L, Aponte RA, Tresch S, Laforest M (2016) A new amino acid substitution (Ala-205-Phe) in acetolactate synthase (ALS) confers broad spectrum resistance to ALS-inhibiting herbicides. Planta 243: 149–159.
  5. Busi R, Vila-Ajub MM, Beckie HJ, Gaines TA, Goggin DE, Kaundun SS, Lacoste M, Neve P, Nissen SJ, Norsworthy JK, Renton M, Shaner DL, Tranel PJ, Wright T, Yu Q, Powles SB (2013) Herbicide-resistant weeds: from research and knowledge to future needs. Evolutionary Applications 6(8): 1218–1221.
  6. Duggleby RG, Pang SS (2000) Acetohydroxyacid synthase. Journal of Biochemistry and Molecular Biology 33(1): 1–36.
  7. Duggleby RG, McCourt JA, Guddat LW (2008) Structure and mechanism of inhibition of plant acetohydroxyacid synthase. Plant Physiology and Biochemistry 46: 309-24.
  8. Finn RD, Coggill P, Eberhardt RY, Eddy SR, Mistry J, Mitchell AL, Potter SC, Punta M, Qureshi M, Sangrador-Vegas A, Salazar GA, Tate J, Bateman A (2016) The Pfam protein families database: towards a more sustainable future. Nucleic Acids Research. Database Issue 44: D279-D285. Gasteiger E, Hoogland C, Gattiker A, Duvaud S, Wilkins MR, Appel, RD, Bairoch A (2005) Protein identification and analysis tools on the ExPASy server. In: Walker JM (ed) The Proteomics Protocols Handbook, Louisville: Humana, pp. 571–607.
  9. Goodstein DM, Shu S, Howson R, Neupane R, Hayes RD, Fazo J, Rokhsar DS (2012) Phytozome: a comparative platform for green plant genomics. Nucleic Acids Research 40: 1178–1186.
  10. Hall TA (1999) BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/N