KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi / 2021 / Cilt: 11 Sayı: 2

Yapay Besin Ortamında Yetiştirilen Model Böcek Galleria mellonella’nın Farklı Yaşam Evrelerindeki Mikrobiyal Floranın Belirlenmesi

Determination of Microbial Flora of Model Insect Galleria mellonella in Different Life Forms Reared on Artificial Diet

Serkan Sugeçti(ZONGULDAK BÜLENT ECEVİT ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-3412-2367
Sayfa
132–137
Yayın Tarihi
2021-12-15
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu çalışma yapay besin ortamında mikrofloranın tanımlanması ve laboratuvar koşullarında böcek üretim alanlarının standardize edilmesi açısından oldukça önemlidir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Model böcekler düşük üretim maliyeti, etik sorunlar ve laboratuvar koşullarında kolay kültüre alınabilmesi nedeniyle tıp, eczacılık ve veterinerlik gibi birçok alanda omurgalı deney hayvanlarına alternatif deneysel model olarak kullanılmaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmada model böcek Galleria mellonella’nın farklı yaşam evrelerinde dört gram negatif ve üç gram pozitif olmak üzere yedi farklı bakteri türü in vitro olarak tanımlandı.
💡
Sonuç & Katkı:Bu çalışma yapay besin ortamında mikrofloranın tanımlanması ve laboratuvar koşullarında böcek üretim alanlarının standardize edilmesi açısından oldukça önemlidir.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Model böcek · mikrofungus · yapay besin

Özet

Model böcekler düşük üretim maliyeti, etik sorunlar ve laboratuvar koşullarında kolay kültüre alınabilmesi nedeniyle tıp, eczacılık ve veterinerlik gibi birçok alanda omurgalı deney hayvanlarına alternatif deneysel model olarak kullanılmaktadır. Model böceklerin laboratuvar koşullarında yapay besin ortamında üretilmesi sırasında en çok karşılaşılan sorun bakteri, maya ve küf kontaminasyonudur. Bu çalışmada model böcek Galleria mellonella’nın farklı yaşam evrelerinde dört gram negatif ve üç gram pozitif olmak üzere yedi farklı bakteri türü in vitro olarak tanımlandı. Mikrofungus cinsleri; Alternaria spp., Aspergillus spp., Beauveria sp., Penicillium spp. ve Verticillium sp. olarak belirlendi. Yaşam evrelerinde en fazla koloni sayısı Aspergillus ve Penicillium cinsine ait türlerde tanımlanırken, en az koloni sayısının ise Verticillium cinsine ait olduğu belirlendi. Bu çalışma yapay besin ortamında mikrofloranın tanımlanması ve laboratuvar koşullarında böcek üretim alanlarının standardize edilmesi açısından oldukça önemlidir.

Abstract

Model insects are used as an alternative experimental model to vertebrate experimental animals in many fields such as medicine, pharmacy and veterinary medicine due to their low production cost, ethical problems and easy culture in laboratory conditions. The most common problem encountered during the production of model insects in artificial diet under laboratory conditions is bacteria, yeast and mold contamination. In this study, seven different bacterial species, four gram negative and three gram positive, were identified in vitro in different life stages of the model insect Galleria mellonella. As microfungus genera Alternaria spp., Aspergillus spp., Beauveria sp., Penicillium spp. and Verticillium sp. The highest number of colonies in their life stages is defined as the species belonging to the genus Aspergillus and Penicillium, while the least belong to the genus Verticillium determined. This study is very important in terms of defining microflora in artificial diet and standardizing production areas of insects under laboratory conditions

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Sugeçti, S. (2021). Yapay Besin Ortamında Yetiştirilen Model Böcek Galleria mellonella’nın Farklı Yaşam Evrelerindeki Mikrobiyal Floranın Belirlenmesi. Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi, Cilt: 11 Sayı: 2, 132–137. https://doi.org/10.7212/karaelmasfen.830759

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (31)

  1. Asan, A., Ilhan, S., Sen, B., Erkara, I.P., Filik, C., Cabuk, A., Demirel, R., Ture, M., Okten, S.S., Tokur, S. 2004. Airborne Fungi and Actinomycetes Concentrations in the Air of Eskisehir City (Turkey), Indoor. Built. Environ., 13 (1): 63-74. https://doi.org/10.1177/1420326X04033843.
  2. Aslan, N., Büyükgüzel, E., Büyükgüzel, K. 2019. Oxidative effects of gemifloxacin on some biological traits of Drosophila melanogaster (Diptera: Drosophilidae). Environ. Entomol., 48(3): 667-673. https://doi.org/10.1093/ee/nvz039.
  3. Bronskill JF. 1961. A Cage to Simplify the Rearing of the Greater Wax Moth, Galleria mellonella (Pyralidae). Journal of the Lepidopterists’ Society, 15 (2): 102-104.
  4. Büyükgüzel, E., Büyükgüzel, K. 2016. Effect of Acyclovir on the Microbial Contamination in the Artifical and Natural Diets for Rearing of Galleria mellonella L. larvae. Karaelmas Fen ve Müh. Derg., 6 (1): 105-110. http://dx.doi.org/10.7212%2Fzkufbd.v6i1.272.
  5. Büyükgüzel, E., Hyršl, P., Büyükgüzel, K. 2010. Eicosanoids Mediate Hemolymph Oxidative and Antioxidative Response in Larvae of Galleria mellonella L. Comp. Biochem. Physiol. A Mol. Integr. Physiol., 156 (2): 176-183. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2010.01.020.
  6. Büyükgüzel, E., Kalender, Y. 2009. Exposure to Streptomycin Alters Oxidative and Antioxidative Response in Larval Midgut Tissues of Galleria mellonella. Pestic. Biochem. Physiol., 94 (2-3): 112-118. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2009.04.008.
  7. Djainal, WAS., Shahin, K., Metselaar, M., Adams, A., Desbois, AP. 2020. Larva of Greater Wax Moth Galleria mellonella is a suitable Alternative Host for the Fish Pathogen Francisella noatunensis subsp. orientalis. BMC Microbiol., 20 (1): 1-14. https://doi.org/10.1186/s12866-020-1695-0.
  8. Domsch, K.H., Gams, W., Anderson, T.H. 1980. Compendium of soil fungi, London, Academic press, Volume 1, 860 s.
  9. Ellis, D., Davis, S., Alexiou, H., Handke, R., Bartley, R. 2007. Descriptions of medical fungi. Nexus Print Solutions, Adelaide, South Australia, 264 s.
  10. Gegner, J., Baudach, A., Mukherjee, K., Halitschke, R., Vogel, H., Vilcinskas, A. 2019. Epigenetic Mechanisms are Involved in Sex-Specific Trans-Generational Immune Priming in The Lepidopteran Model Host Manduca sexta. Front. Physiol., 10: 1-13. https://doi.org/10.3389/fphys.2019.00137.
  11. Gifawesen, C., Funke, BR., Proshold, FI. 1975. Control of antifungal-resistant strain of Aspergillus niger mold contaminants in insect rearing media. J. Econ. Entomol., 68: 441-444. https://doi.org/10.1093/jee/68.4.441.
  12. Hasenekoğlu, İ. 1991. Toprak Mikrofungusları, Cilt:1-7, Atatürk Üniversitesi Yayınları, No: 689, Erzurum.
  13. Kastamonuluoğlu, S., Büyükgüzel, K., Büyükgüzel, E. 2020. The Use of Dietary Antifungal Agent Terbinafine in Artificial Diet and Its Effects on Some Biological and Biochemical Parameters of the Model Organism Galleria mellonella (Lepidoptera: Pyralidae). J. Econ. Entomol., 113(3): 1110-1117. https://doi.org/10.1093/jee/toaa039.
  14. Kılıç, A., Büyükgüzel, K., Büyükgüzel, E. 2015. Antihelmintik Triklabendazolun Yapay Besin ile Beslenen Galleria mellonella (Lepidoptera: Pyralidae) Larvalarının Yaşama ve Gelişimine Etkisi. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg., 21 (6): 841-847. https://doi.org/10.9775/kvfd.2016.15393.
  15. Lapointe, JF., McCarthy, CD., Dunphy, GB., Mandato, CA. 2020. Physiological Evidence of Integrin‐Antibody Reactive Proteins Influencing the Innate Cellular Immune Responses of Larval Galleria mellonella Hemocytes. Insect Sci., 27 (2): 239-255. https://doi.org/10.1111/1744-7917.12646.
  16. Larone Davise, H. 1993. Medically Important Fungi A Guide To Identification. Chief Microbiologist, Department of Pathology Lenox Hill Hospital, New York: 230 s.
  17. Noor-ul-Ane, M., Kim, DS., Zalucki, MP. 2018. Fecundity and Egg Laying in Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae): Model Development and Field Validation. J. Econ. Entomol., 111 (5): 2208-2216. https://doi.org/10.1093/jee/toy183.
  18. Pitt, J.I. 2000. A laboratory guide to common Penicillium species. Food Science Australia a Joint Venture of CSIRO and AFISC, Australia, North Ryde,. 197s.
  19. Pitt, J.I., Hocking, A.D. 2009. Fungi and food spoilage. Third edition. Springer 519 s.
  20. Rossoni, RD., de Camargo Ribeiro, F., Dos Santos, HFS., Dos Santos, JD., de Sousa Oliveira, N., dos Santos Dutra, MT., de Lapena, SAB., Junqueira, JC. 2019. Galleria mellonella as an Experimental Model to Study Human Oral Pathogens. Arch. Oral. Biol., 101: 13-22. https://doi.org/10.1016/j.archoralbio.2019.03.002
  21. Samson, RA., Pitt, JI. 2000. Integration of Modern Taxonomic Methods for Penicillium and Aspergillus Classification, (4rd ed.) Singapore: Harwood Academic Publisers, 510 s.
  22. Santorum, M., Brancalhão, RMC., Guimarães, ATB., Padovani, CR., Tettamanti, G., Dos Santos, DC. 2019. Negative Impact of Novaluron on The Nontarget Insect Bombyx mori (Lepidoptera: Bombycidae). Environ. Pollut., 249: 82-90. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2019.02.095.
  23. Sertçelik, M., Sugeçti, S., Büyükgüzel, E., Necefoğlu, H., Büyükgüzel, K. 2018. Diaquabis (N, N-dietilnikotinamid-N1) bis (4-formilbenzoato-O) kobalt (II) Kompleksinin Model Organizma Galleria mellonella L. (Lepidoptera: Pyralidae) Üzerindeki Toksikolojik ve Fizyolojik Etkileri. Karaelmas Fen ve Müh. Derg., 8 (1): 359-364. http://dx.doi.org/10.7212%2Fzkufbd.v8i1.1207.
  24. Shaik, HA., Mishra, A., Sehadová, H., Kodrík, D. 2020. Responses of Sericotropin to Toxic and Pathogenic Challenges: Possible Role in Defense of The Wax Moth Galleria mellonella. Comp. Biochem. Physiol. C Toxicol. Pharmacol., 227: 108633. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2019.108633.
  25. Singh, P., Bucher, GE. 1971. Efficacy of “safe” levels of antimicrobial food additives to control microbial contaminants in a synthetic diet for Agria affinis larvae. Entomol. Exp. Appl., 14: 297-309. https://doi.org/10.1111/j.1570-7458.1971.tb00167.x.
  26. Su, J., Wang, YC., Zhang, SK., Ren, XB. 2014. Antifungal Agents Against Aspergillus niger for Rearing Rice Leaffolder Larvae (Lepidoptera: Pyralidae) on Artificial Diet. J. Econ. Entomol., 107: 1092-1100. https://doi.org/10.1603/ec13296.
  27. Sugeçti, S., Büyükgüzel, K. 2018. Effects of Oxfendazole on Metabolic Enzymes in Hemolymph of Galleria mellonella L. (Lepidoptera: Pyralidae) Larvae Reared on Artificial Diet. Karaelmas Fen ve Müh. Derg., 8 (2): 590-594. http://dx.doi.org/10.7212%2Fzkufbd.v8i2.1380.
  28. Sugeçti, S., Büyükgüzel, K., Büyükgüzel, E. 2016. Laboratory Assays of the Effects of Oxfendazole on Biological Parameters of Galleria mellonella (Lepidoptera: Pyralidae). J. Entomol. Sci., 51 (2): 129-137. https://doi.org/10.18474/JES15-36.1.
  29. Vertyporokh, L., Wojda, I. 2020. Immune Response of Galleria mellonella After Injection with Non-Lethal and Lethal dosages of Candida albicans. J. Invertebr. Pathol., 170: 107327. https://doi.org/10.1016/j.jip.2020.107327.
  30. Watanabe, T. 2010. Pictorial atlas of soil and seed fungi: Morphologies of cultured fungi and key to Species. Boca Raton: Crc Press/Taylor & Francis. 404 s.
  31. Zou, YX., Hu, TG., Shi, Y., Liu, J., Mu, LX., Xiao, Y., Liao, ST. 2017. Establishment of A Model to Evaluate The Nutritional Quality of Bombyx mori Linnaeus (Lepidoptera, Bombycidae) Pupae Lipid Based on Principal Components. Journal of Asia-Pacific Entomology, 20 (4): 1364-1371. https://doi.org/10.1016/j.aspen.2017.05.012.