Journals / Journal of Research in Veterinary Medicine / 2021 / Cilt: 40 - Sayı: 1

Effect of Freeze-Drying Extenders on Ram Sperm DNA Integrity

Pages
25–30
Publication Date
2021-08-19
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Aynı şekilde her iki boyama yöntemi karşılaştırıldığında, liyofilizasyon sonrası elde edilen DNA bütünlüğünün değerlendirilmesinde AO ve TUNEL sonuçlarının istatistiksel olarak farklı olmadığı belirlendi (P>0.05).

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:DNA hasarının belirlenebilmesi, sperma saklama yöntemlerinin geliştirilmesi açısından önemlidir.
📊
Key Findings & Data:Biz çalışmamızda farklı liyofilizasyon medyumları kullanılarak saklanan sperm hücrelerinin DNA bütünlüğünün değerlendirilmesinde akridin oranj (AO) ve therminal deoxynucleotidyl transferase-medited dUDP nick and labelling (TUNEL) florasan boyama yöntemlerini kullandık.
💡
Conclusion & Impact:Aynı şekilde her iki boyama yöntemi karşılaştırıldığında, liyofilizasyon sonrası elde edilen DNA bütünlüğünün değerlendirilmesinde AO ve TUNEL sonuçlarının istatistiksel olarak farklı olmadığı belirlendi (P>0.05).
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:koç sperması · liyofilizasyon · DNA bütünlüğü

Abstract

DNA hasarının belirlenebilmesi, sperma saklama yöntemlerinin geliştirilmesi açısından önemlidir. Biz çalışmamızda farklı liyofilizasyon medyumları kullanılarak saklanan sperm hücrelerinin DNA bütünlüğünün değerlendirilmesinde akridin oranj (AO) ve therminal deoxynucleotidyl transferase-medited dUDP nick and labelling (TUNEL) florasan boyama yöntemlerini kullandık. Koçlardan alınan sperma dört gruba bölündü ve her bir grup: I) %10 fötal buzağı serumu (FCS) içeren TCM 199 solüsyonu II) %10 FCS ve 0.2 mol/L trehaloz içeren TCM 199 solüsyonu III) 50 mmol/L NaCl ve EGTA [Ethylen glycol-bis (β-aminoethyl ether)-N, N, N, N,-tetraacetic acid] 10 mmol/L Tris solüsyonu ve IV) %20 yumurta sarısı ve %7 gliserol içeren Tris bazlı solüsyonlardan biri ile konsantrasyonu 10 x 106 spermatozoa/100 μL olacak şekilde sulandırıldı. Taze alınan spermada DNA fragmentasyon oranı AO ve TUNEL yöntemlerinde sırasıyla %2 ve %4 olarak tespit edildi (P>0.05). AO ve TUNEL yöntemiyle değerlendirilen liyofilizasyon sonrası DNA bütünlüğüne sahip spermatozoa oranlarının, sulandırıcı farklılığına göre etkilenmediği tespit edildi (P>0.05). Aynı şekilde her iki boyama yöntemi karşılaştırıldığında, liyofilizasyon sonrası elde edilen DNA bütünlüğünün değerlendirilmesinde AO ve TUNEL sonuçlarının istatistiksel olarak farklı olmadığı belirlendi (P>0.05).

🔖

Cite This Article

ÜSTÜNER, B., BİRLER, S., ZIK, B., ALÇAY, S., ÖZTÜRK, G. B., GULER, S., SAĞIRKAYA, H., NUR, Z., PABUCCUOĞLU, S. (2021). Effect of Freeze-Drying Extenders on Ram Sperm DNA Integrity. Journal of Research in Veterinary Medicine, Cilt: 40 - Sayı: 1, 25–30. https://ajindex.com/articles/778546

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (1)

  1. Referans1 Alcay S, Toker B, Ustuner B, Nur Z, Sagirkaya H, Soylu MK. Investigation of relationships between DNA integrity and fresh semen parameters in rams. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 20, (5): 793-798, 2014. Referans2 Bailey JL, Bilodeau JF, Cormier N. Semen cryopreservation in domestic animals: a damaging and capacitating phenomenon. J Androl, 21: 1–7, 2000. Referans3 Barroso G, Morshedi M, Oehninger S. Analysis of DNA fragmentation, plasma membrane translocation of phosphatidylserine and oxidative stress in human spermatozoa. Hum Reprod, 15 (6): 1338-1344, 2000. Referans4 Benchaib M, Braun V, Lornage J, Hadj S, Salle B, Lejeune H, Guerin JF. Sperm DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive technique. Hum Reprod, 18: 1023-1028, 2003. Referans5 Choi YH, Varner D, Love CC, Hartman DL, Hinrichs K. Production of live foals via intracytoplasmic injection of lyophilized sperm and sperm extract in the horse. Reproduction, 142 (4): 529-538, 2011. Referans6 Duran EH, Gurgan T, Gunalp S, Enginsu ME, Yarali H, Ayhan A. A logistic regression model including DNA status and morphology of spermatozoa for prediction of fertilization in vitro. Hum Reprod, 13: 1235-1239, 1998. Referans7 Erenpreiss J, Jepson K, Giwercman A, Tsarev I, Erenpreisa J, Spano M. Toluidine blue cytometry test for sperm DNA conformation: comparison with the flow cytometric sperm chromatin structure and TUNEL assays. Hum Reprod, 19 (10): 2277-2282, 2004. Referans8 Erenpreiss J, Spano M, Erenpreisa J, Bungum M, Giwercman A. Sperm chromatin structure and male fertility: biological and clinical aspects. Asian J Androl, 8: 11-29, 2006. Referans9 Evenson DP, Jost LK, Marshall D, Zinaman MJ, Clegg E, Purvis K, de Angelis P, Claussen OP. Utility of the sperm chromatin structure assay as a diagnostic and prognostic tool in the human fertility clinic. Hum Reprod, 14 (4): 1039-1049, 1999. Referans10 Garcia de Castro A, Lapinski J, Tunnacliffe A. Anhydrobiotic engineering. Nature Biotechnology, 18: 473, 2000. Referans11 Gil L, Olaciregui M, Luño V, Malo C, González N, Martínez F. Current status of freeze-drying technology to preserve domestic animals sperm. Reproduction in Domestic Animals, 49: 72–81, 2014. Referans12 Hara H, Tagiri M, Hwang IS, Takahashi, M, Hirabayasi M. Adverse effect of cake collapse on the functional integrity of freeze‐dried bull spermatozoa. Cryobiology, 68: 354– 360, 2014. Referaans13 Kaneko T, Whittingham DG, Yanagimachi R. Effect