Journals / Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2003 / Cilt: 50 - Sayı: 2

Quantitative comparison of various methods and solutions for detecting eggs of anoplocephala perfoliata in horse faeces

At dışkısında anoplocephala perfoliata yumurtalarının saptanmasında değişik yöntem ve solüsyonların kantitatif karşılaştırılması

Pages
119–122
Publication Date
2022-10-12
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Significant best rate of recovery was achieved using sucrose solution for sedimentation+centrifugation-flotation method and double sedimentation.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Sedimentation and sedimentation+centrifugation-flotation methods for recovery eggs of A.perfoliata from horse faeces were tested for efficiency and suitability for routine use.
📊
Key Findings & Data:The tests were done under standardised conditions on 10 g of horse faeces contaminated experimentally with 5, 10, 25, 5Q, 100 and 200 eggs of A. perfoliata.
💡
Conclusion & Impact:Significant best rate of recovery was achieved using sucrose solution for sedimentation+centrifugation-flotation method and double sedimentation.
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

Sedimentation and sedimentation+centrifugation-flotation methods for recovery eggs of A.perfoliata from horse faeces were tested for efficiency and suitability for routine use. Faecal samples were collected from necropsied horses without A. per-foliata infected. The tests were done under standardised conditions on 10 g of horse faeces contaminated experimentally with 5, 10, 25, 5Q, 100 and 200 eggs of A. perfoliata. The samples were examined using sedimentation and sedimentation+centrifugation-flotation methods to use three different flotation solutions (NaCl+$ZnCl_2$ d:1.3, $ZnSO_4$ d:1.3 and saturated sucrose solution d:1.3). Significant best rate of recovery was achieved using sucrose solution for sedimentation+centrifugation-flotation method and double sedimentation.

Özet

At dışkısında Anoplocephala perfoliata yumurtalarını saptamak amacıyla sedimentasyon ile sedimentasyon+santrifüj-flotasyon yöntemlerinin karşılaştırılması yapılmıştır. Nekropside A.perfoliata taşımadığı belirlenen atlara ait dışkının 10'ar gramına 5, 10, 25, 50, 100 ve 200 yumurta eklenmiştir. Dışkı örnekleri sedimentasyon ve üç farklı solüsyon (NaCl+$ZnCl_2$ d. 1 .3, $ZnSO_4$ d: 1.3 ve doymuş şekerli su d: 1.3) kullanılarak sedimentasyon+ santrifüj-flotasyon yöntemleriyle veya yöntem tekrarlanmaları ile incelenmiştir. En fazla yumurta, iki defa tekrarlanan sedimentasyon ile doymuş şekerli su solusyonuyla yapılan sedimentasyon+santrifüj-flotasyon yöntemlerinde bulunmuştur.

🔖

Cite This Article

ÖGE, S. (2022). Quantitative comparison of various methods and solutions for detecting eggs of anoplocephala perfoliata in horse faeces. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 50 - Sayı: 2, 119–122. https://ajindex.com/articles/445286

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (15)

  1. Alibaşoğlu A, Yalçıner Ş (1965): 1933-1961 yılları ara­sında Ankara ve yöresinde atlarda görülen hastalıklara toplu bir bakış. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 12, 98-111
  2. Arslan MÖ, Umur Ş (1998): Kars yöresinde at ve eşek­lerde bulunan helmint ve Eimeria (Protozoon) türleri. T Parazitol Derg, 22, 180-184
  3. Ayaz E (1998): At ve Eşeklerde Dictyocaulus arnfieldi (Cobbold, 1884)'in Yayılışı. Doktora Tezi. Ankara Üniv Vet Fak Sağ Bilim Enst. Ankara
  4. Boch J, Supperer R (1992): Veterinarmedizinische Parasitologie. 4.Auflage. Verlag Paul Parey, Berlin, 5. Burgu A, Doğanay A, Öge H, Öge S, Pişkin Ç (1999): Atlarda bulunan helmint türleri. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 42, 193-205
  5. Burgu A, Toparlak M (1985): Paramphistomum'larla doğal enfekte koyunlarda günün değişik saatlerinde dış­kıyla çıkarılan yumurtaların sayısındaki değişmeler ve dış­kıdaki yumurta miktarı ile rumendeki erişkin parazit sayısı arasındaki ilişki. Uludağ Üniv Vet Fak Derg, 4, 11-17
  6. Cawdery MJH, Ruane M (1971): Sedimentation method for the demonstration of the eggs of Fasciola hepatica in faeces. Lab Pract, 20, 935-939
  7. Demir S, Tmar R, Aydın L, Çırak VY, Ergül R (1995): Bursa yöresi tektırnaklılarında dışkı muayenesi ile sap­ tanan helmint türleri ve yayılışı. T Parazitol Derg, 19, 124- 131
  8. Dunn AM (1978): Veterinary Helminthology. 2nd ed. Wil­liam Heinemann Medical Books Ltd, London
  9. Dunn A, Keymer A (1986): Factors affecting the re­liability of the Me Master technique. J Helminthol, 60, 260-262. 11.Fogarty U, Del Piero F, Purnell RE, Mosurski KR (1994): Incidence of Anoplocephala perfoliata in horses examined at on Irish abattoir. Vet Rec, 14, 515-518
  10. French DD, Chapman MR, Klei TR (1994). Effects of treatment with ivermectin for five years on the prevalence of Anoplocephala perfoliata in three Louisiana pony herds. Vet Rec, 16, 63-65
  11. Happich FA, Boray JC (1969): Quantitative diagnosis of chronic fasciolosis
  12. Comparative studies on quantitative faecal examinations for chronic Fasciola hepatica infection in sheep. Aust Vet J, 45, 326-328
  13. Höglund J, Ljungström BL, Nilsson U, Uggla A (1995): Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the de­tection of antibodies to Anoplocephala perfoliata in horse sera. Vet Rec, 59, 97-106
  14. Imrie H, Jacobs DE (1987): Prevalence of horse ta­peworm in north London and Hertfordshire. Vet Rec, 120,304
  15. Lyons ET, Drudge JH, Tolliver SC, Swerczek TW, Crowe MW (1984): Prevalence of Anoplocephala per­foliata and lesions