Journals / Turkish Journal of Pharmaceutical Sciences / 2020 / Cilt: 17 - Sayı: 5

AR42J Pankreas Hücre Hattında Asetamiprid ile İndüklenen Sito- ve Genotoksisite

Acetamiprid-induced Cyto- and Genotoxicity in the AR42J Pancreatic Cell Line

Pages
474–479
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Asetamipridin toksik etkisinin detaylandırılması için daha geniş çaplı mekanizma temelli çalışmalara ihtiyaç bulunmaktadır

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Amaç: Neonikotinoid insektisidler dünya piyasasındaki insektisidlerin %30’luk kısmını oluşturur ve etkilerini seçici olarak böceklerdeki α4p2 nikotinik asid reseptörünü inhibe ederek gösterirler.
📊
Key Findings & Data:Asetamipridin çeşitli organ ve sistemler üzerine toksik etkileri biliniyor olmasına karşın, pankreas üzerindeki etkisi ve etki mekanizması bilinmemektedir.
💡
Conclusion & Impact:Asetamipridin toksik etkisinin detaylandırılması için daha geniş çaplı mekanizma temelli çalışmalara ihtiyaç bulunmaktadır
🔬Design:Experimental Field Trial
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

Amaç: Neonikotinoid insektisidler dünya piyasasındaki insektisidlerin %30’luk kısmını oluşturur ve etkilerini seçici olarak böceklerdeki α4p2 nikotinik asid reseptörünü inhibe ederek gösterirler. Asetamipridin çeşitli organ ve sistemler üzerine toksik etkileri biliniyor olmasına karşın, pankreas üzerindeki etkisi ve etki mekanizması bilinmemektedir. Bu çalışmada, asetamipridin AR42J pankreas hücre hattı üzerinde sitotoksik ve genotoksik etkileri araştırıldı. Gereç ve Yöntemler: Sitotoksisite ve genotoksisite değerlendirmesi için (3-[4,5-dimetiltiyazol-2-il]-2,5 difenil tetrazolyum bromür) (MTT) ve comet analizi gerçekleştirildi. Reaktif oksijen türlerinin (ROS) oluşumu akış sitometresi ile, glutatyon (GSH) düzeyi ise ELISA yöntemi ile belirlenmiştir.Bulgular: MTT sitotoksisite analizine gore, hücre canlılığının doza bağımlı olarak azaldığı gözlendi ve inhibitör konsantrasyon 50 değeri 12,61 mM olarak tespit edildi. Analizlerde doz yanıt ilişkisini gösterebilmek için 1-6 mM doz aralığı seçildi. Asetamiprid DNA hasarını doza bağımlı olarak artırdı ve ortalama kuyruk yoğunluğu değerleri kontrol ve çalışma grupları için sırasıyla 3,84 ve ≤32,96 olarak belirlendi. ROS üretimi açısından gruplar arasında anlamlı bir fark gözlenmemiş, GSH değerinin en yüksek doz grubunda anlamlı olarak çok düştüğü tespit edilmiştir. Sonuç: Bu çalışma literatürde asetamipridin pankreas üzerine olası toksik etkisine yönelik eksik olan verilere katkı sağlamaktadır. Asetamipridin toksik etkisinin detaylandırılması için daha geniş çaplı mekanizma temelli çalışmalara ihtiyaç bulunmaktadır

Özet

Objectives: Neonicotinoid insecticides, 30% of insecticides marketed worldwide, have selective toxicity on insects through α4p2 nicotinic acetylcholine receptors. Although it is known that acetamiprid exerts toxicity on several organ systems, its toxic effects on the pancreas and its mechanism of action have not been clarified yet. Therefore, in the present study, the cytotoxic and genotoxic potentials of acetamiprid on the AR42J pancreatic cell line were evaluated.Materials and Methods: The (3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2,5 diphenyl tetrazolium bromide) (MTT) assay and comet assay were conducted for the cyto- and genotoxicity evaluations, respectively. Reactive oxygen species (ROS) production was assessed by flow cytometry and glutathione (GSH) levels were determined by ELISA for oxidative damage potential, which is thought to be an underlying mechanism of cyto-/genotoxic effects.Results: To reveal the dose-response relationship the concentration range of 1-6 mM was selected for the assays. Cell viability decreased in a dose-dependent manner and the inhibitory concentration 50 value was calculated as 12.61 mM by the MTT assay. Acetamiprid induced DNA damage in all concentrations tested in a dose-depending manner. The mean tail intensity values were 3.84 and ≤32.96 for the control and exposure groups, respectively. There was no significant difference for ROS production; however, the GSH level was reduced at the highest concentration. Conclusion: It is thought that the present study will contribute to the literature due to the lack of data on the potential toxic effects of acetamiprid on the pancreas. To better understand acetamiprid toxicity, further studies including a wide range of mechanistic parameters are needed.

🔖

Cite This Article

KARA, M., ÖZTAŞ, E., ÖZHAN, G. (2020). AR42J Pankreas Hücre Hattında Asetamiprid ile İndüklenen Sito- ve Genotoksisite. Turkish Journal of Pharmaceutical Sciences, Cilt: 17 - Sayı: 5, 474–479. https://ajindex.com/articles/404154

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (8)

  1. Hamadache M, Benkortbi O, Hanini S, Amrane A, Khaouane L, SI Moussa C. A quantitative structure activity relationship for acute oral toxicity of pesticides on rats: validation, domain of applicationandprediction. J Hazard Mater. 2016;303:28-40.
  2. Speck-Planche A, Kleandrova VV, Luan F, Cordeiro MND. Predicting multiple ecotoxicological profiles in agrochemical fungicides: a multi-species chemo informatic approach. Ecotoxicol Environ Saf. 2012;80:308-313.
  3. Chakroun S, Ezzi L, Grissa I, Kerkeni E, Neffati F, Bhouri R, Sallem A, Najjar MF, Hassine M, Mehdi M, Haouas Z, Cheikh HB. Hematological, biochemical, and toxicopathic effects of subchronic acetamiprid toxicity in Wistar rats Environ Sci Pollut Res Int 2016;23:25191-25199.
  4. Çavaş T, Çinkılıç N, Vatan Ö, Yılmaz D. Effects of fullerenol nanoparticles on acetamiprid induced cytoxicity and genotoxicity in cultured human lung fibroblasts. Pestic Biochem Physiol. 2014;114:1-7.
  5. Cimino AM, Boyles AL, Thayer KA, Perry MJ. Effects of neonicotinoid pesticide exposure on human health: a systematic review. Environ Health Perspect. 2017;125:155-162. Mikolić A, Karačonji IB. Imidacloprid as reproductive toxicant and endocrine disruptor: investigations in laboratory animals. Arh Hig Rada Toksikol. 2018;69:103-108.
  6. Al-Sarar AS, Abobakr Y, Bayoumi AE, Hussein HI. Cytotoxic and genotoxic effects of abamectin, chlorfenapyr, and imidacloprid on CHOK1 cells. Environ Sci Pollut Res. 2015;22:17041-17052.
  7. Çavaş T, Çinkılıç N, Vatan Ö, Yılmaz D, Coşkun M. In vitro genotoxicity evaluation of acetamiprid in CaCo-2 cell susing the micronucleus, cometand γH2AX fociassays. Pestic Biochem Physiol 2012;104:212-217. Caldero ́n-Segura ME, Go ́mez-Arroyo S, Villalobos-Pietrini R, Martínez-Valenzuela C, Carbajal-López Y, del Carmen Calderón-Ezquerro M, Cortés-Eslava J, García-Martínez R, Flores-Ramírez D, Rodríguez-Romero MI, Méndez-Pérez P, Bañuelos-Ruíz E. Evaluation of genotoxic and cytotoxic effects in human peripheral blood lymphocytes exposed in vitro to neonicotinoid ınsecticides news. J Toxicol. 2012:612647. Demsia G, Vlastos D, Goumenou M, Matthopoulos DP. Assessment of the genotoxicity of imidacloprid and metalaxyl in cultured human lymphocytesandrat bone-marrow. Mutat Res Genet Toxicol Environ. 2007;634:32-39.
  8. Feng S, Kong Z, Wang X, Peng P, Zeng EY. Assessing the genotoxicity of imidacloprid and RH-5849 in human peripheral blood lymphocytes in vitro with comet assay and cytogenetic tests. Ecotoxicol Environ Saf. 2005;61:239-246. Koc