Journals / Atatürk Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi / 2013 / Cilt: 44 - Sayı: 1

-

Türkiye’de Yetiştirilen Bazi Kişlik Buğday Çeştilerinin Olgunlaşmamiş Embriyo Kültürüne Verdiklerin Cevaplarin Belirlenmesi

Pages
21–25
Publication Date
2014-05-27
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Response of fourteen cultivars of winter wheat (Triticum aestivum L.) to immature embryo culture, callusproduction and plant regeneration was evaluated.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Selecting the explant genotypes is crucial step in in-vitro culture and Agrobacterium-mediated transformationsystem due to its host range specificity.
📊
Key Findings & Data:Poor tissue culture performance is restricting the number of wheat genotypes that can bestably transformed.
💡
Conclusion & Impact:Response of fourteen cultivars of winter wheat (Triticum aestivum L.) to immature embryo culture, callusproduction and plant regeneration was evaluated.
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Winter wheat · callus formation · plant regeneration

Abstract

Selecting the explant genotypes is crucial step in in-vitro culture and Agrobacterium-mediated transformationsystem due to its host range specificity. Poor tissue culture performance is restricting the number of wheat genotypes that can bestably transformed. Response of fourteen cultivars of winter wheat (Triticum aestivum L.) to immature embryo culture, callusproduction and plant regeneration was evaluated. A significant (p

Özet

Agrobacterium kaynaklı gen aktarımı ve in vitro kültür çalışmaları için kullanılacak eksplant genotipin seçimi önemli bir adımdır. Düşük doku kültürü performansı, stabil gen aktarılabilecek buğday genotiplerin sayısını sınırlamaktadır. 14 kışlık buğday çeşitinin olgunlaşmamış embriyo kültürü, kalus üretimi ve bitki rejenerasyonuna tepkisi değerlendirilmiştir. Kültüre alınaneksplantların kallus oluşum frekansı %45 (cv. Sürak) ve % 99.54 (cv. Bobwhite) arasındaki oranlarda gözlenmiş ve genotipik farklılık önemli olmuştur. Somatik embriyogenesis aracılığıyla bitki rejnerasyonu 4 haftalık kallus oluşum periyodundan sonra tüm çeşitlerin kalluslarında görülmüştür. Kültüre alınan embriyo başına en yüksek bitkicik sayısı Sivas-111/33 (8.66), Kıraç-66 (7.36), Haymana 79 (6.77) and Conkesme 79 (6.56) çeşitlerinde meydana gelmiştir. Dört kışlık buğday genotipi (Sivas-111/33, Kirac-66, Haymana 79, and Conkesme) yüksek rejenerasyon potansiyeline sahip olmaları nedeniyle Agrobacterium aracılığıyla gen aktarım çalışmalarında kullanmak için seçilmiştir.

🔖

Cite This Article

HALILOGLU, K., HALİLOĞLU, K., BEZİRGANOĞLU, İ., BEZIRGANOĞLU, İ., AYDIN, M., TOSUN, M., ŞAHİN, E. (2014). -. Atatürk Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, Cilt: 44 - Sayı: 1, 21–25. https://ajindex.com/articles/36997

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (14)

  1. Aydin, M., M. Tosun, K. Haliloglu, 2011. Plant regeneration in wheat mature embryo culture. African Journal of Biotechnology. 10(70): 15749-15755.
  2. Ahloowalia, B.S., 1982. Plat regeneration from callus culture in wheat. Crop Sci. 22: 405-410
  3. Barro, F., A. Martin, P.A. Lazzeri, P. Barceló, 1999. Medium optimization for efficient somatic embryogenesis and plant regeneration from immature inflorescences and immature scutella of elite cultivars of wheat, barley and tritordeum. Euphytica 108:: 161–167.
  4. Boulton, M.I., H. Steinkellner, J. Donson, P.G. Markham, D.I. King, K.W. Davis, 1989.: Mutational analysis of the virionsense genes of maize streak virus. J. Gen. Virol.: 70: 23092323. Carman, J.G., N.E. Jefferson, W.F. Campbell, 1988. Induction of Embryogenic Triticum aestivem L. calli. I. Quantification of genotype and culture medium effects, Plant Cell Tiss. Organ Cult. 10: 101-107.
  5. Cheng, M., E. Joyce, S. Pang, H. Zhou, C.M. Hironaka, D.R. Duncan, T.W. Conner, Y. Wan, 1997. Genetic Transformation of Wheat Mediated by Agrobacterium tumefacience. Plant Physiol. 115: 971-980.
  6. Deambrogio, E., P.J. Dale, 1980. Effect of 2,4-D on the frequency of regenerated plants in barley and on genetic variability between them. Cereal Res. Commmun. 8: 417–423.
  7. Fennell, S., N. Bohorova, M. Ginkel, J. Crossa, D. Hoisington, 1996. Plant regeneration from immature embryos of 48 elite CIMMYT bread wheats, Theor. Appl. Genet. 92: 163–169.
  8. Galiba, G., G. Kovacs, J. Sutka, 1986. Substitution analysis of plant regeneration from callus culture in wheat. Plant Breed. 97: 261-263.
  9. Haliloglu, K., P.S. Baenziger, 2003. Agrobacterium tumefaciens mediated wheat transformation. Cereal Research Communications 31: 9-16.
  10. Haliloglu, K., A. Ozturk, M. Tosun, and S. Bulut, 2005. Relationship between tissue culture and agronomic traits of winter wheat. Cereal Res. Commun. 33,469-476.
  11. He, D.G., T.M. Yang, J. Bertram, K.J. Scott, 1990. The histological development of the regenerative tissue derived from cultured immature embryos of wheat. Plant Sci. 68: 103-107.
  12. Kaleikau, E.K., R.G. Sears, B.S. Gill, 1989. Control of tissue culture response in wheat (Triticum aestivum L.) Theor. Appl. Genet. 78: 783-787.
  13. Machii, H., H. Mizuno, T. Hirabayashi, H. Li, T. Hagio, 1998. Screening wheat genotypes for high callus induction and regeneration capability from anther and immature embryo cultures. Plant Cell Tissue Organ Cult. 53: 67–74.
  14. Maddock, S.E., V.A. Lancaster, R. Risiott, J. Franklin, 1987. Plant regeneration