Journals / Ulusal Travma ve Acil Cerrahi Dergisi / 2020 / Cilt: 26 - Sayı: 4

Tavşan yara modelinde RT-PCR yöntemi ile seri olarak ölçülen plazma ve doku fibronektin EIIIB splice değerlerinin ölçümleri

Assessment of plasma and tissue fibronectin EIIIB splice variant expressions measured serially using RT-PCR in a wound model of rabbits

Pages
497–502
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Ayrıca, deneyde kullandığımız ölçme yöntemimiz olan RT-qPCR yöntemi, antikor bazlı yöntemlere kıyasla daha doğru ve kesin sonuçlar sağlayabilir.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:AMAÇ: Fibronektin (FN), hücre dışı matriksin vazgeçilmez bir parçasıdır.
📊
Key Findings & Data:BULGULAR: Doku FN ekspresyonu 3. günden başlayarak arttı, 6. ve 9. günlerde artmaya devam etti, azalmaya başlamadan önce 12. günde maksimum ekspresyona ulaştı.
💡
Conclusion & Impact:Ayrıca, deneyde kullandığımız ölçme yöntemimiz olan RT-qPCR yöntemi, antikor bazlı yöntemlere kıyasla daha doğru ve kesin sonuçlar sağlayabilir.
🔬Design:Modeling & Simulation
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

AMAÇ: Fibronektin (FN), hücre dışı matriksin vazgeçilmez bir parçasıdır. Rejenerasyon veya yara iyileşmesi sırasında FN’nin plazma formu, geçici bir fibrin-FN matrisi oluşturmak için fibrin pıhtılarına dahil olur ve ayrıca lokal olarak sentezlenen hücresel FN, yaralı dokuyu rejenere etmek için pıhtıya göç eder. Bu çalışmada tavşanlarda deneysel yara iyileşme modelinde yara dokusu EIIIB ve plazma EIIIB ekspresyon düzeylerini incelemeyi amaçladık. GEREÇ VE YÖNTEM: Plazma ve doku EIIIB ekspresyon düzeyleri, tavşanların kutanöz yara modelinde RT-qPCR ile seri olarak ölçüldü. BULGULAR: Doku FN ekspresyonu 3. günden başlayarak arttı, 6. ve 9. günlerde artmaya devam etti, azalmaya başlamadan önce 12. günde maksimum ekspresyona ulaştı. Doku seviyelerinin aksine, plazma FN seviyeleri ekspresyon başlangıç değerlerine döndüğünde 15. güne kadar kademeli olarak azaldı. TARTIŞMA: Sonuç olarak, mevcut çalışmanın bulguları, yara iyileşmesi sırasında doku EIIIB ekspresyon seviyesinin arttığını desteklemektedir; plazma EIIIB ekspresyon seviyesi minimum düzeyde azalır. Bu, plazma FN’nin geçici olarak ECM oluşumuna yardımcı olduğu raporların aksine değerlerdir. Bu nedenle verilerimiz, yara iyileşme sürecini hızlandırmada EIIIB’nin doku düzeyinde önemli bir rol oynadığını göstermektedir. Ayrıca, deneyde kullandığımız ölçme yöntemimiz olan RT-qPCR yöntemi, antikor bazlı yöntemlere kıyasla daha doğru ve kesin sonuçlar sağlayabilir.

Özet

BACKGROUND: Fibronectin (FN) is an indispensable part of the extracellular matrix. During regeneration or wound healing, the plasma form of FN is incorporated into the fibrin clots to form a temporary fibrin-FN matrix, and also locally synthesized cellular FN migrates to the clot to regenerate the injured tissue. We aimed to examine wound tissue FN EIIIB and plasma FN EIIIB expression levels in an experimental wound healing model in rabbits. METHODS: Plasma and tissue EIIIB splice variant expressions were measured serially with RT-qPCR in a cutaneous wound model of rabbits. RESULTS: Tissue FN expression increased as beginning on day 3 and continued to increase on days 6 and 9, reaching maximum expression at day 12 before starting to decrease. On the contrary to the tissue levels, plasma FN levels gradually decreased until day 15 when expression returned to the initial values. CONCLUSION: The findings of the current study support that tissue EIIIB expression level increases during wound healing; and plasma EIIIB expression level decreases minimal changed. This is in contrast to reports where plasma FN provisionally helps ECM formation. Therefore, our data show an essential role of EIIIB at the tissue level in accelerating the wound healing process. The RT-qPCR method in our experimental setup can provide more accurate and precise results compared to the antibody-based methods.

🔖

Cite This Article

ÖZKAYA, N. K., ZEREYAK, U., COŞKUN, K. A., TUTAR, Y., YILMAZ, S. (2020). Tavşan yara modelinde RT-PCR yöntemi ile seri olarak ölçülen plazma ve doku fibronektin EIIIB splice değerlerinin ölçümleri. Ulusal Travma ve Acil Cerrahi Dergisi, Cilt: 26 - Sayı: 4, 497–502. https://ajindex.com/articles/323477

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (18)

  1. Maxson S, Lopez EA, Yoo D, Danilkovitch-Miagkova A, Leroux MA. Concise review: role of mesenchymal stem cells in wound repair. Stem Cells Transl Med 2012;1:142−9
  2. Singer AJ, Clark RA. Cutaneous wound healing. N Engl J Med 1999;341:738−46
  3. Lenselink EA. Role of fibronectin in normal wound healing. Int Wound J 2015;12:313−6
  4. Pankov R, Yamada KM. Fibronectin at a glance. J Cell Sci 2002;115:3861−3
  5. To WS, Midwood KS. Plasma and cellular fibronectin: distinct and independent functions during tissue repair. Fibrogenesis Tissue Repair 2011;4:21
  6. Peters JH, Loredo GA, Chen G, Maunder R, Hahn TJ, Willits NH, et al. Plasma levels of fibronectin bearing the alternatively spliced EIIIB segment are increased after major trauma. J Lab Clin Med 2003;141:401−10
  7. Peters JH, Trevithick JE, Johnson P, Hynes RO. Expression of the alternatively spliced EIIIB segment of fibronectin. Cell Adhes Commun 1995;3:67−89
  8. Paul W, Sharma CP. Chitosan and alginate wound dressings: A short review. Trends Biomater Artificial Organs 2004;18:18−23
  9. Al-Rawaf HA, Gabr SA, Alghadir AH. Circulating Hypoxia Responsive microRNAs (HRMs) and Wound Healing Potentials of Green Tea in Diabetic and Nondiabetic Rat Models. Evid Based Complement Alternat Med 2019;2019:9019253
  10. Clark RA. Fibrin and wound healing. Ann N Y Acad Sci 2001;936:355−67
  11. Takeo M, Lee W, Ito M. Wound healing and skin regeneration. Cold Spring Harb Perspect Med 2015;5:a023267
  12. Kallis PJ, Friedman AJ. Collagen Powder in Wound Healing. J Drugs Dermatol 2018;17:403−8
  13. Woodley DT. Distinct Fibroblasts in the Papillary and Reticular Dermis: Implications for Wound Healing. Dermatol Clin 2017;35:95−100
  14. Kim H, Kong WH, Seong KY, Sung DK, Jeong H, Kim JK, et al. Hyaluronate-Epidermal Growth Factor Conjugate for Skin Wound Healing and Regeneration. Biomacromolecules 2016;17:3694−705
  15. Sahin Inan ZD, Unver Saraydin S. Investigation of the wound healing effects of chitosan on FGFR3 and VEGF immunlocalization in experimentally diabetic rats. Int J Bio Materials Res 2013;1:1−8
  16. Johnson MB, Pang B, Gardner DJ, Niknam-Benia S, Soundarajan V, Bramos A, et al. Topical Fibronectin Improves Wound Healing of Irradiated Skin. Sci Rep 2017;7:3876
  17. Whittam AJ, Maan ZN, Duscher D, Wong VW, Barrera JA, Januszyk M, et al. Challenges and Opportunities in Drug Delivery for Wound Healing. Adv Wound Care (New Rochelle) 2016;5:79−88
  18. Hamed S, Ullmann Y, Egozi D, Daod E, Hellou E, Ashkar M, et al. Fibr