SavedAdd your journal

Journals / Ordu Üniversitesi Bilim ve Teknoloji Dergisi / 2020 / Cilt: 10 Sayı: 2

Çakıldak fındık çeşidinin ın vıtro sürgün ucu kültürü için yüzey sterilizasyon protokolünün oluşturulmasi

Ali İslam(ORDU ÜNİVERSİTESİ, ZİRAAT FAKÜLTESİ)0000-0002-2165-7111
Hatice Bilir Ekbiç(Ordu Üniversitesi)0000-0002-2758-6713
Pages
85–93
Publication Date
2020-12-31
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Eksplantların yüzey sterilizasyonu amacıyla ilk olarak % 70 etil alkolde 10 sn süre ile bekletme ve ardından % 5 dozundaki sodyum hipoklorid çözeltisinde 15 dakika bekletme uygulamaları tavsiye edilebilir.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Bu çalışma, 2019 yılında, Ordu Üniversitesi Ziraat Fakültesi Bahçe Bitkileri Bölümü Doku Kültürü laboratuvarında yürütülmüştür.
📊
Key Findings & Data:Eksplantların bir kısmı %70 etil alkolde 10 sn süre ile bekletilmiş, diğer yarısına ise etil alkol uygulanmamıştır.
💡
Conclusion & Impact:Eksplantların yüzey sterilizasyonu amacıyla ilk olarak % 70 etil alkolde 10 sn süre ile bekletme ve ardından % 5 dozundaki sodyum hipoklorid çözeltisinde 15 dakika bekletme uygulamaları tavsiye edilebilir.
🔬Design:Experimental Field Trial
📍Scope:2019 Verileri
⚙️Variables:Corylus avellana L. · in vitro · yüzey sterilizasyonu

Özet

Bu çalışma, 2019 yılında, Ordu Üniversitesi Ziraat Fakültesi Bahçe Bitkileri Bölümü Doku Kültürü laboratuvarında yürütülmüştür. Çalışmada eksplant olarak Çakıldak çeşidinin aktif büyüme dönemindeki sürgün uçları kullanılmıştır. Eksplantların bir kısmı %70 etil alkolde 10 sn süre ile bekletilmiş, diğer yarısına ise etil alkol uygulanmamıştır. Etil alkol uygulanmış ve uygulanmamış tüm eksplantlar, farklı dozlarda sodyum hipoklorid (% 0, % 5, % 10 ve % 15) çözeltilerinde farklı sürelerde (0, 10, 15 ve 20 dakika) bekletilerek yüzey sterilizasyonları yapılmıştır. Deneme kapsamında uygulamaların karşılaştırılması amacıyla kararma oranı (%), enfeksiyon oranı (%), sağlıklı gelişen eksplant oranı (%) özellikleri incelenmiştir. Eksplantların yüzey sterilizasyonu amacıyla ilk olarak % 70 etil alkolde 10 sn süre ile bekletme ve ardından % 5 dozundaki sodyum hipoklorid çözeltisinde 15 dakika bekletme uygulamaları tavsiye edilebilir.

🔖

Cite This Article

İslam, A., Ekbiç, H. B., *, H. B. E. (2020). Çakıldak fındık çeşidinin ın vıtro sürgün ucu kültürü için yüzey sterilizasyon protokolünün oluşturulmasi. Ordu Üniversitesi Bilim ve Teknoloji Dergisi, Cilt: 10 Sayı: 2, 85–93. https://ajindex.com/articles/1279404

References (20)

  1. Referans1 Anonim (2020). Türkiye İstatistik Kurumu. www.tuik.gov.tr (Erişim tarihi: 06.01.2020)
  2. Referans2 Babaoğlu M, Yorgancılar M, & Akbudak M A (2001). Doku kültürü: temel laboratuar teknikleri. (Editörler M. Babaoğlu, E. Gürel, S. Özcan), Bitki Biyoteknolojisi Cilt I Doku Kültürü ve Uygulamaları. S.Ü. Vakfı Yayınları, Konya
  3. Referans3 Bacchetta L, Aramini M, Bernardini C & Rugini E (2008). In vitro propagation of traditional Italian hazelnut cultivars as a tool for the valorization and conservation of local genetic resources. HortScience, 43(2): 562-566
  4. Referans4 Bassil N V, Rebhuhn B J, Mok D W & Mok M C (1990). Micropropagation of the hazelnut, Corylus avellana. HortScience, 25(9): 1100
  5. Referans5 Caboni E, Frattarell A, Meneghini M, Giorgioni M & Damiano C (2009). Micropropagation of hazelnut Italian cultivars. Italus Hortus, 16(2): 102-105
  6. Referans6 Diaz-Sala C, Rey M, & Rodríguez R (1990). In vitro establishment of a cycloclonal chain from nodal segments and apical buds of adult hazel (Corylus avellana L.). Plant Cell. Tissue and Organ Culture. 23(3): 151-157
  7. Referans7 Ellena M, Masia A, & Marino G (2014). Physiological and biochemical aspect associated with the rizogenetics of hazelnut (C. avellana L.). Acta Horticulturae, 1052: 157-165
  8. Referans8 Gao X H, Liu J N & Ling Q (2006). Tissue Culture and Rapid Propagation of Hybrid Hazelnut (Corylus heterophylla× C. avellana). In XXVII International Horticultural Congress-IHC2006: International Symposium on Seed Enhancement and Seedling Production, 13-19 August, Seoul, South Korea, pp. 207-211
  9. Referans9 Hand C R (2013). Improving initiation and mineral nutrition for hazelnut (Corylus avellana) micropropagation. Master Thesis, Oregon State University, USA
  10. Referans10 Hand C R, Wada N, Stockwell V & Reed B M (2016). Node position influences viability and contamination in hazelnut shoot explants. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. 52(6): 580-589
  11. Referans11 İslam A, Öger İ, Karagöl S & Turan A (2019). Farklı IBA uygulamalarının Corylus colurna L.’nın odun çelikleriyle köklenmesi üzerine etkisi. Akademik Ziraat Dergisi 8(Özel Sayı): 45-48. ISSN: 2147-6403 DOI: http://dx.doi.org/10.29278/azd.655495
  12. Referans12Köksal İ (2002). Türk Fındık Çeşitleri. Fındık Tanıtım Grubu Yayınları, Ankara Murashige T & Skoog F (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia plantarum 15(3): 473-497
  13. Referans13 Nas M N (2004). Inclusion of polyamines in the medium improves shoot elongation in hazelnut (Corylus avellana L.) micropropagation. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 28(3): 189-194
  14. Referans14 Özçağıran R, Ünal A, Özeker E & İsfendiyaroğlu M (2014). Ilıman İklim Meyve Türleri. Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi Yayınları:3, İzmir
  15. Referans15 Pérez C, Rodríguez R, & Tamés R S (1985). “In vitro” filbert (Corylus avellana L.) micropropagation from shoot and cotyledonary node segments. Plant cell reports, 4(3): 137-139
  16. Referans16 Perez C, Rodriguez A, Revilla A, Rodriguez R & Sanchez-Tames R (1987). Filbert plantlet formation through" in vitro" culture. Symposium on In vitro Problems Related to Mass Propagation of Horticultural Plants 212. Acta Horticulturae, 212: 505-510
  17. Referans17 Radojević L, Vujičić R & Nešković M (1975). Embryogenesis in tissue culture of Corylus avellana L. Zeitschrift für Pflanzenphysiologie, 77(1): 33-41
  18. Referans18 Thomson G E, & Deering T D (2011). Effect of cytokinin type and concentration on in vitro shoot proliferation of hazelnut (Corylus avellana L.). New Zealand journal of crop and horticultural science. 39(3): 209-213
  19. Referans19 Yu X & Reed B M (1993). Improved shoot multiplication of mature hazelnut (Corylus avellana L.) in vitro using glucose as a carbon source. Plant cell reports. 12(5): 256-259
  20. Referans20 Yu X & Reed B M (1995). A micropropagation system for hazelnuts (Corylus species). HortScience, 30(1): 120-123