KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Biyolojik Çeşitlilik ve Koruma / 2020 / Cilt: 13 Sayı: 1

Helichrysum armenium DC. subsp. araxinum (Kirp.) Takht. taksonunun bazı biyokimyasal içeriklerinin belirlenmesi

Muammer BAHŞİ
Mustafa EMRE
İrfan EMRE
Murat KURŞAT
Ökkeş YILMAZ
Sayfa
96–101
Yayın Tarihi
2020-04-15
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Stigmasterol ve β-sitosterol, sırasıyla 79,4 ± 1,17 ve 29,2 ± 0,87 olarak tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmanın amacı, Helichrysum armenium subsp. araxinum özütlerinin yağ asidi bileşimi, yağda çözünen vitaminleri, fenolik bileşikleri, radikal temizleme faaliyetleri, antioksidan aktivitesi ve metal şelatlama kapasitesini belirlemektir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Araştırmada palmitik asidin (C16:0) birincil yağ asidi olduğu ve (58,99±1,21%) yağda çözünen vitamin içerilerinin en düşük seviyede olduğunu belirlenmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Stigmasterol ve β-sitosterol, sırasıyla 79,4 ± 1,17 ve 29,2 ± 0,87 olarak tespit edilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:yağ asitleri · Helichrysum armenium subsp. araxinum · yağda çözünen vitaminler

Özet

Bu çalışmanın amacı, Helichrysum armenium subsp. araxinum özütlerinin yağ asidi bileşimi, yağda çözünen vitaminleri, fenolik bileşikleri, radikal temizleme faaliyetleri, antioksidan aktivitesi ve metal şelatlama kapasitesini belirlemektir. Araştırmada palmitik asidin (C16:0) birincil yağ asidi olduğu ve (58,99±1,21%) yağda çözünen vitamin içerilerinin en düşük seviyede olduğunu belirlenmiştir. Stigmasterol ve β-sitosterol, sırasıyla 79,4 ± 1,17 ve 29,2 ± 0,87 olarak tespit edilmiştir. Ayrıca mevcut çalışma, Helichrysum armenium subsp. araxinum’un en yüksek naringin içeriğine (1156,8 ± 3,57 µg / g) sahip olduğunu ayrıca yüksek miktarda vanilik asit (213,2 ± 2,32 µg / g), kafeik asit (151,6 ± 1,27 µg / g) ve ferulik asit (117,94 ± 1,26 µg / g) içeriğine sahip olduğunu göstermiştir. Öte yandan, Helichrysum armenium subsp. araxinum, en yüksek DPPH (10 µl hariç), ABTS radikal temizleme aktivitesi ve 100 µl’de metal şelatlama kapasitesine sahiptir.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BAHŞİ, M., EMRE, M., EMRE, İ., KURŞAT, M., YILMAZ, Ö. (2020). Helichrysum armenium DC. subsp. araxinum (Kirp.) Takht. taksonunun bazı biyokimyasal içeriklerinin belirlenmesi. Biyolojik Çeşitlilik ve Koruma, Cilt: 13 Sayı: 1, 96–101. https://ajindex.com/articles/903051

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (14)

  1. Perrini, R., Morone-Fortunato, I., Lorusso, E. & Avato, P. (2009). Glands, essential oils and in vitro establishment of Helichrysum italicum (Roth) G. Don ssp. microphyllum (Willd.) Nyman. Ind. Crops Prod. 29, 395–403
  2. Baytop, T. (1997). Türkçe Bitki Adları Sözlüğü, Türk Dil Kurumu Yayınları, Ankara
  3. Yapar, Y. & Behçet, L. (2018). The flora of Hiro Plateau (Adaklı-Bingöl/ Turkey) and its surroundings. Biological Diversity and Conservation 11(3), 126-140
  4. Baykal, H., Atamov, V. & Yüksek, T. (2018). Flora of Tunca Valley Natural Park and environs (Ardeşen-Rize/Turkey). Biological Diversity and Conservation, 11(2), 9-24
  5. Yüce Babacan, E., Vitek, E. & Çakılcıoğlu, U. (2017). Contributions to the Flora of Tunceli (Turkey). International Journal of Nature and Life Sciences, 1(2), 39-66
  6. Keser, A.M. & Özgökçe, F. (2019). The Flora of Karz (Garez) Mountain (Tatvan, Bitlis/ Turkey). Biological Diversity and Conservation, 12(2), 78-91
  7. Davis, P.H. (1985). Flora of Turkey and the East Aegean Islands. Vol. 1-9. Edinburgh: Edinburgh University
  8. Aiyegoro, O. & Okoh, A.I. (2010). Preliminary phytochemical screening and In vitro antioxidant activities of the aqueous extract of Helychrysum longifolium DC. BMC Complementary and Alternative Medicine,21
  9. Maksimovic, S., Tadic, V., Skala, D. & Zizovic, I. (2017). Separation of phytochemicals from Helichrysum italicum: An analysis of different isolation techniques and biological activity of prepared extracts. Phytochemistry, 138, 9-28
  10. Aslan, M., Orhan, D.D., Orhan, N., Sezik, E. & Yesilada, E., (2007). A study of antidiabetic and antioxidant effects of Helichrysum graveolens capitulums in streptozotocininduced diabetic rats. J. Med. Food 10, 396–400
  11. Suzgec-Selcuk, S. & Birteksoz, A.S. (2011). Flavonoids of Helichrysum chasmolycicum and its antioxidant and antimicrobial activities. South African Journal of Botany 77, 170–174
  12. Valero, M.S. & Lope, V. (2017). Everlasting flower (Helichrysum stoechas Moench) as a potential source of bioactive molecules with antiproliferative, antioxidant, antidiabetic and neuroprotective properties. Industirla Crops &Products, 108, 295-302
  13. Gouveia, S.C. & Castilho, P.C. (2010). Characterization of phenolic compounds in Helichrysum melaleucum by high-performance liquid chromatography with on-line ultraviolet and mass spectrometry detection. Rapid Commun. Mass Spectrom.; 24: 1851–1868
  14. Albayrak, S., Aksoy, A., Sagdic, O. & Hamzaoglu, E. (2010). Compos