Dergiler / Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2019 / Cilt: 66 - Sayı: 1

İn vitro üretilen koyun blastosistlerinin vitrifikasyonu üzerine, ekilibrasyon medyumu ve ko-kültürün etkileri

Effects of equilibration media and co-culture on vitrification of sheep blastocysts derived in vitro

Sayfa
83–87
Yayın Tarihi
2022-11-04
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu çalışmada, koyun embriyolarının vitrifikasyonunda; ilk ekilibrasyon medyumu olarak gliserol yerine etilen glikol kullanılmasının faydalı olduğu buna karşılık, koyun ovidukt epiteli hücreleri ile ko-kültürün etkili olmadığı saptandı.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:İki vitrifikasyon protokolünün, koyun ovidukt epitel hücreleriyle ko-kültürlü (CC) ve ko- kültürsüz (C) ortamda in vitro üretilmiş olan koyun blastosistlerinin yaşayabilirliği üzerindeki etkileri araştırıldı.
📊
Temel Bulgular & Veri:Oositler, TCM 199 medyumunda 24 saat süreyle olgunlaştırıldı, 20 saat fertilize edildi ve 9 gün süreyle sentetik ovidukt sıvısı (SOF) medyumunda kültüre edildi.
💡
Sonuç & Katkı:Bu çalışmada, koyun embriyolarının vitrifikasyonunda; ilk ekilibrasyon medyumu olarak gliserol yerine etilen glikol kullanılmasının faydalı olduğu buna karşılık, koyun ovidukt epiteli hücreleri ile ko-kültürün etkili olmadığı saptandı.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

İki vitrifikasyon protokolünün, koyun ovidukt epitel hücreleriyle ko-kültürlü (CC) ve ko- kültürsüz (C) ortamda in vitro üretilmiş olan koyun blastosistlerinin yaşayabilirliği üzerindeki etkileri araştırıldı. Oositler, TCM 199 medyumunda 24 saat süreyle olgunlaştırıldı, 20 saat fertilize edildi ve 9 gün süreyle sentetik ovidukt sıvısı (SOF) medyumunda kültüre edildi. Embriyolar ilk olarak, %20 etilen glikol (EG) veya % 10 gliserol (G) den oluşan iki farklı medyumda ekilibrasyona bırakıldılar. İkinci ekilibrasyon amacıyla % 20 etilen glikol + % 10 gliserol içinde ve 5 dakika süreyle tutuldular. Ardından, % 25 etilen glikol + % 25 gliserol’den oluşan vitrifikasyon solüsyonu içerisinde 30 saniye tutulan embriyolar, derhal sıvı azot içerisine batırılarak donduruldu. Çözdürme işleminin ardından embriyolar, 0.25 M sukroz içine 5 dakika bekletildi, Hepes tamponlu sentetik ovidukt sıvısı (HSOF) içinde yıkandı ve 24 saat süreyle SOF içerisinde in vitro kültüre bırakıldı. Yarıklanma oranları C grubunda %75.2, CC grubunda %74.2, blastosist oranları C'de %14.4, CC grubunda ise %17.1 oldu. Dondurulmuş-çözdürülmüş blastosistlerin in vitro kültüründen sonra canlılık oranları C-EG, CC-EG, C-G ve CC-G gruplarında sırasıyla; %62.1, %38.4, %30.2 ve %39.3 oldu. Bu çalışmada, koyun embriyolarının vitrifikasyonunda; ilk ekilibrasyon medyumu olarak gliserol yerine etilen glikol kullanılmasının faydalı olduğu buna karşılık, koyun ovidukt epiteli hücreleri ile ko-kültürün etkili olmadığı saptandı.

Abstract

The effects of two vitrification protocols on the survival of sheep blastocysts were examined in embryos produced in vitro with sheep oviduct epithelial cells co-culture (CC) or without co-culture (C). Oocytes collected from slaughtered ewes were matured for 24 h, fertilized with fresh ram semen for 20 h and cultured in SOF medium for up to 9 days in vitro. For vitrification, blastocyst stage embryos were assigned to two equilibration groups (20% ethylen glycol (EG) or 10% glycerol (G) for the first equilibration), and as the second equilibration they were kept in 20% ethylen glycol plus 10% glycerol for 5 minutes. After 30 sec in vitrification solution (25% ethylen glycol + 25% glycerol), they were immediately immersed into liquid nitrogen. After thawing procedure, embryos were transferred into 0.25 M sucrose for 5 min, washed in Hepes buffered synthetic oviduct fluid (HSOF) and cultured in SOF medium for 24 h. Cleavage rates were 75.2% in C and 74.2% in CC groups, and blastocyst rates were 14.4% in C and 17.1% in CC groups. After in vitro culture of vitrified-thawed blastocysts, survival rates were 62.1, 38.4, 30.2, and 39.3% in C-EG, CC-EG, C-G and CC-G groups, respectively. This study shows that vitrification of sheep embryos using ethylene glycol instead of glycerol as a first equilibration cryoprotectant could give reasonable survival rates and that co-culture of embryos with sheep oviduct epithelial cell has no beneficial effect on vitrification of embryos.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

EVECEN, M., BİRLER, S., PABUCCUOĞLU, S., ATALLA, H. (2022). İn vitro üretilen koyun blastosistlerinin vitrifikasyonu üzerine, ekilibrasyon medyumu ve ko-kültürün etkileri. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 66 - Sayı: 1, 83–87. https://ajindex.com/articles/648665

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (16)

  1. Alçay S, Üstüner B, Nur Z (2016): Effects of low molecular weight cryoprotectants on the post-thaw ram sperm quality and fertilizing ability. Small Ruminant Research, 136, 59-64
  2. Ali J, Shelton J (1993): Successful vitrification of day-6 sheep embryos. Journal of J Reprod Fert, 99, 65-70
  3. Bavister BD (1998): Role of oviductal secretions in embryonic growth in vivo and in vitro. Theriogenology, 29, 143-154
  4. Birler S, Pabuccuoğlu S, Alkan S, et al. (2001): Effects of different maturation and culture media on IVF of sheep oocytes. Pakistan Vet J, 100-6,102
  5. De Paz P, Sanchez A, Fernandez J, et al. (1994): Sheep embryo cryopreservation by vitrification and conventional freezing. Theriogenology, 42, 327-338
  6. Donnay I, Van Langendonckt A, Auquier P, et al. (1997): Effects of co-culture and embryo number on the in vitro development of bovine embryos. Theriogenology, 47, 1549-1561
  7. Gandolfi F, Moor R (1987): Stimulation of early embryonic development in the sheep by co-culture with oviduct epithelial cells. J Reprod Fert, 81,23-28
  8. Garcia-Garcia R, Gonzalez-Bulnes A, Dominguez V, et al. (2006): Survival of frozen-thawed sheep embryos cryopreserved at cleavage stages. Cryobiology, 52, 108-113
  9. Gupta MK, Lee HT (2010): Cryopreservation of oocytes and embryos by vitrification. Korean J Reprod Med, 37, 267-291
  10. Heidari B, Shirazi A, Naderi M, et al. (2013): Effect of various co-culture systems on embryo development in ovine. Czech J Anim Sci, 58, 443-452
  11. Jang H, Jung Y, Cheong H, et al. (2008): Effects of cell status of bovine oviduct epithelial cell (BOEC) on the development of bovine IVM/IVF embryos and gene expression in the BOEC used or not used for the embryo culture. Asian-Aust J Anim Sci, 21, 980-987
  12. Ledda S, Bogliolo L, Leoni G, et al. (1995): Two culture systems showing a biphasic effect on ovine embryo development from the 1-2 cell stage to hatched blastocysts. Reprod Nutr Dev, 35, 629-637
  13. Manokaran S, Veerapandian C, Balasubramanian S (2012): In vitro fertilization of sheep oocytes matured in two different media. Indian J Small Ruminants, 18, 44-46
  14. Martinez A, Matkovic M (1998): Cryopreservation of ovine embryos: slow freezing and vitrification. Theriogenology, 49, 1039-1049
  15. Martínez A, Valcárcel A, Furnus C, et al. (2006): Cryopreservation of in vitro-produced ovine embryos. Small Ruminant Research, 63, 288-296
  16. Nedambale T, Dinnyes A, Groen W, et al. (2004): Comparison on in vitro fertilized bov