Dergiler / Türkiye Parazitoloji Dergisi / 2018 / Cilt: 42 - Sayı: 4

Farklı Sıvı Besiyerlerinde Trypanosoma cruzi’nin Üreme Yoğunluklarının Karşılaştırılması ve Kriyoprezervasyonu

Comparison of Reproduction Densities in Different Liquid Media of Trypanosoma cruzi and Cryopreservation

Sayfa
249–253
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

T. cruzi suşunun kriyoprezervasyonu da yapılarak altı ay sonra canlılık durumu test edildi.Bulgular: T. cruzi epimastigotlarının NB ve BHİB besiyerlerinde üremediği tespit edildi.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bu çalışmada Trypanosoma cruzi (T. cruzi) suşunun gerek kültürde canlılık süresi gerekse üreme hızı bakımından en iyi sıvı besiyeri ortamını tespitetmek ve çalışılan suşun kriyoprezervasyonunu sağlamak amaçlanmıştır.Yöntemler: T. cruzi suşu ticari olarak satın alınan RPMI 1640, Medium 199 (M199), Schneider’s İnsect Medium (SİM), Nutrient Broth (NB), Brain Heartİnfusion Broth (BHİB) olmak üzere beş faklı sıvı kültür ortamında üreme yoğunlukları bakımından değerlendirildi.
📊
Temel Bulgular & Veri:Parazit kültürleri gün aşırı olarak 24gün boyunca takip edildi.
💡
Sonuç & Katkı:T. cruzi suşunun kriyoprezervasyonu da yapılarak altı ay sonra canlılık durumu test edildi.Bulgular: T. cruzi epimastigotlarının NB ve BHİB besiyerlerinde üremediği tespit edildi.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Bu çalışmada Trypanosoma cruzi (T. cruzi) suşunun gerek kültürde canlılık süresi gerekse üreme hızı bakımından en iyi sıvı besiyeri ortamını tespitetmek ve çalışılan suşun kriyoprezervasyonunu sağlamak amaçlanmıştır.Yöntemler: T. cruzi suşu ticari olarak satın alınan RPMI 1640, Medium 199 (M199), Schneider’s İnsect Medium (SİM), Nutrient Broth (NB), Brain Heartİnfusion Broth (BHİB) olmak üzere beş faklı sıvı kültür ortamında üreme yoğunlukları bakımından değerlendirildi. Parazit kültürleri gün aşırı olarak 24gün boyunca takip edildi. T. cruzi suşunun kriyoprezervasyonu da yapılarak altı ay sonra canlılık durumu test edildi.Bulgular: T. cruzi epimastigotlarının NB ve BHİB besiyerlerinde üremediği tespit edildi. İlk 10 günlük veriler incelendiğinde RPMI 1640, M199, SİMbesiyerlerinde üreme potansiyeli açısından önemli bir fark gözlenmedi. RPMI 1640 besiyeri 12 ile 24’üncü günler arasında en iyi üremenin görüldüğübesiyeri oldu. Parazitin 18’inci gün itibariyle form değiştirerek amastigot forma dönüştüğü, 24’üncü günde amastigot yoğunluğunun en üstseviyeye ulaşarak üremenin durduğu tespit edildi. T. cruzi suşunun kriyoprezervasyonu sonucunda altı ay sonra T. cruzi suşunun canlılığını koruduğutespit edildi.Sonuç: T. cruzi suşunun epimastigot formu ile planlanan araştırmalarda öncelikle RPMI 1640 besiyerinin daha sonra M199 ve SİM besiyerlerinin tercihedilmesinin uygun olacağı kanısına varılmıştır. Epimastigot formu ile yapılacak çalışmalar için çalışma planının 18. güne kadar, amastigot formu ile yapılacakçalışmalarda ise planlamanın 18. günden sonra yapılmasının uygun olacağı düşünülmüştür. Ayrıca T. cruzi suşunun epimastigot formunun %15DMSO yoğunluğunda sıvı azot tankında kriyoprezervasyon yapılarak uzun süre saklanabileceği kanısına varılmıştır.

Abstract

Objective: This study aims to determine the optimum liquid medium for the reproduction of Trypanosoma cruzi strains and provide cryopreservation. Methods: The reproduction density of T. cruzi strain was evaluated in the following five different commercial liquid culture media: RPMI 1640, Medium 199 (M199), Schneider’s İnsect Medium (SİM), Nutrient Broth (NB), Brain Heart İnfusion Broth (BHİB). Cultures were monitored on every other day for a period of 24 days. Cryopreservation of T. cruzi was also performed and viability was tested after six months. Results: Epimastigotes of T. cruzi were not found to be produced in NB and BHIB media. Significant difference was not observed among the reproduction potential of RPMI-1640, M199, and SIM after evaluating the data for the first 10 days. Between days 12 and 24, RPMI-1640 was found to be the best reproduction medium. From the 18th day onwards, parasites transformed amastigotes. On the 24th day, the highest level of amastigote amount was observed, and reproduction was determined to have stopped. As a result of cryopreservation, it was determined that the survival of T.cruzi continued after six months.. Conclusion: Thus, the selection of RPMI-1640 medium, followed by M199 and SIM media would be appropriate when studying T. cruzi epimastigotes. Studies using epimastigotes should be planned for up to 18 days and for those using amastigotes, it would be appropriate to plan the studies after the 18th day. Moreover, T. cruzi can be cryopreserved with 15% DMSO and stored for a long time in liquid nitrogen.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÖZPINAR, N., KAYA, T., YILDIRIM, A., ÖZBİLGİN, A., ÇAVUŞ, İ. (2022). Farklı Sıvı Besiyerlerinde Trypanosoma cruzi’nin Üreme Yoğunluklarının Karşılaştırılması ve Kriyoprezervasyonu. Türkiye Parazitoloji Dergisi, Cilt: 42 - Sayı: 4, 249–253. https://ajindex.com/articles/630061

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (5)

  1. WHO. Chagas Disease (American Trypanosomiasis): World Health Organization; 2017. Available from: http://www.who.int/mediacentre/ factsheets/fs340/en/
  2. Dario MA, Rodrigues MS, Barros JH, Xavier SC, D’Andrea PS, Roque AL, et al. Ecological scenario and Trypanosoma cruzi DTU characterization of a fatal acute Chagas disease case transmitted orally (Espírito Santo state, Brazil). Parasit Vectors 2016; 9: 477. [CrossRef] 3. Töz SÖ, Ertabaklar H, Özbel Y. Özcel’in tıbbi parazit hastalıkları, Trypanosomiosis. Özcel MA, Özbel Y, Ak M, editörler: Meta Basım, İzmir: Türkiye Parazitoloji Derneği; 2007. 4. de Noya BA, Gonzalez ON, Robertson LJ. Trypanosoma cruzi as a foodborne pathogen: Springer, Cham; 2015. ISBN: 978-3-319- 23409-0. [CrossRef] 5. Kumar R, Singh J, Singh R, Kumar S, Yadav S. Comparative efficacy of different in vitro cultivation media for Trypanosoma evansi isolated from different mammalian hosts inhabiting different geographical areas of India. J Parasit Dis 2015; 39: 174-8. [CrossRef] 6. Dias JCP. Chagas Disease (American Trypanosomiasis). Arthropod Borne Diseases: Springer; 2017. p. 245-75
  3. Gomes YM. PCR and sero-diagnosis of chronic chagas’ disease biotechnological advances. Appl Biochem Biotechnol 1997; 66: 107- 19. [CrossRef] 8. Rassi A, Rezende J, Luquetti A, Rassi Jr A. Clinical phases and forms of Chagas disease. American trypanosomiasis (Chagas disease) One hundred years of research 1st edition Burlington (MA): Elsevier Inc. 2010: 709-41
  4. CDC. Parasites - American Trypanosomiasis (also known as Chagas Disease): Centers For Disease Control and Prevention; 2017. Available from: https://www.cdc.gov/parasites/chagas/diagnosis. html
  5. Chiari E, Dias JCP, Lana M, Chiari CA. Hemocultures for the parasitological diagnosis of human chronic Chagas’ disease. Rev Soc Bras Med Trop 1989; 22: 19-23. [CrossRef] 11. Minter-Goedbloed E, Minter DM, Marshall TF. Quantitative comparison between xenodiagnosis and haemoculture in the detection of Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi in experimental and natural chronic infections. Trans R Soc Trop Med Hyg 1978; 72: 217-25. [CrossRef] 12. De Paula Lima CV, Batista M, Kugeratski FG, Vincent IM, Soares MJ, Probst CM, et al. LM14 defined medium enables continuous growth of Trypanosoma cruzi. BMC Microbiol 2014; 14: 238. [CrossRef] 13. Lemos M, Souza C, da Costa SG, Souto-Padrón T, D’agosto M. Isolation and in vitro culture of trypanosomes from Leptodactylus ocellatus from the Atlantic forest in a new exper