Dergiler / Türk Biyokimya Dergisi / 2007 / Cilt: 32 - Sayı: 1

Prolidazın mutlak aktivitesini değerlendirmede fotometrik enzim aktivitesi ölçüm metodunun optimizasyonu

Optimization of the photometric enzyme activity assay for evaluating real activity of prolidase

Sayfa
12–16
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak prolinin inhibisyonundan en az etkilenecek hale getirilen modifiye (optimize) prolidaz ölçüm metodunun mutlak aktiviteyi daha iyi yansıtabilecek bir yöntem olabileceği düşünülmektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Prolidaz, prolin içeren dipeptidlerin (X-Pro) peptid bağını koparan ve kollajen metabolizmasında yer alan önemli bir enzimdir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Analiz içi ve analizler arası % varyasyon katsayısı % 10’un üzerinde olan yöntem ile bir test için 6-8 saat zaman harcanmaktadır.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak prolinin inhibisyonundan en az etkilenecek hale getirilen modifiye (optimize) prolidaz ölçüm metodunun mutlak aktiviteyi daha iyi yansıtabilecek bir yöntem olabileceği düşünülmektedir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Prolidaz, prolin içeren dipeptidlerin (X-Pro) peptid bağını koparan ve kollajen metabolizmasında yer alan önemli bir enzimdir. Prolidaz aktivitesi genellikle prolidaz tarafından açığa çıkarılan prolinin miktarının fotometrik olarak ölçüldüğü yöntemlerle belirlenir. Çalışmada amacımız, bu prolidaz aktivitesi ölçüm yönteminin mutlak aktiviteyi yansıtıp yansıtmadığını araştırmaktır. Yöntemdeki mangan iyonlarıyla yapılan aktivasyon işlemi, proteinlerin çöktürülmesi ve okuma basamakları incelenmiştir. Analiz içi ve analizler arası % varyasyon katsayısı % 10’un üzerinde olan yöntem ile bir test için 6-8 saat zaman harcanmaktadır. Mangan içeren aktive edici reaktif inkübasyon süresince stabil kalmamaktadır ve derişimi enzim aktivasyonu için uygun değildir. Bu nedenlerle, fotometrik yöntemin, mangan derişimleri, ön inkübasyon solüsyonunun pH’sı değiştirilmiş, proteinlerin çöktürüldüğü basamak kaldırılmış ve substratla inkübasyon süresi kısaltılıp ninhidrin tepkimesi pH’sı en uygun hale getirilmiştir. Ortamda var olan ve prolidaz enzimi ile serbestleştirilen prolinin prolidaz enzimini inhibe edebileceği ve yöntemin analitik performansının etkilenebileceği gösterilmiştir. Sonuç olarak prolinin inhibisyonundan en az etkilenecek hale getirilen modifiye (optimize) prolidaz ölçüm metodunun mutlak aktiviteyi daha iyi yansıtabilecek bir yöntem olabileceği düşünülmektedir.

Abstract

Prolidase cleaves the bonds of dipeptides containing proline (X-Pro) and an important enzyme in collagen metabolism. Prolidase activity is generally determined by photometric methods based on the measurement of proline levels produced by prolidase. We aimed to investigate the measured prolidase activity is suitable for the assessment of its physiological activity. Effects of manganese on the enzyme activation, protein precipitation and reading steps of the photometric method, and inhibitory effect of proline on the enzyme were analyzed. The intra- and inter-assay CVs % were higher than 10 % for photometric method and turnaround time was 6-8 hours/test. The activation reagent containing manganese was not stable and its concentration was not optimal for enzyme activation. Thus we modified the photometric method by changing manganese concentrations and pH of activating solution, eliminating protein-precipitating step, arranging the pH of color reagent to the pH optimum for ninhidrin reaction and shortened incubation time with substrate. The inhibitory effect of proline on the prolidase activity even in the physiological and produced proline concentrations during enzymatic analysis may limit the analytical performance of prolidase assays. In conclusion, the modified photometric method presented in this study seems to be more reliable than the classical photometric method and measured prolidase activity may not reflect the true physiological activity of enzyme due to proline inhibition.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KAYADİBİ, H., İPÇİOĞLU, O. M., GÜLTEPE, M., ÖZCAN, Ö., BOLAT, B. (2022). Prolidazın mutlak aktivitesini değerlendirmede fotometrik enzim aktivitesi ölçüm metodunun optimizasyonu. Türk Biyokimya Dergisi, Cilt: 32 - Sayı: 1, 12–16. https://ajindex.com/articles/621384

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (17)

  1. Endo FA, Matsuda I. (1991) Molecular basis of prolidase (peptidase D) deficiency. Mol Biol and Med. 8: 117–127
  2. Myara I, Cosson C, Moatti N, Lemonnier A. (1994) Human kidney prolidase-purification, preincubation properties and immunological reactivity. Int J Biochem. 26: 207–214
  3. Whang SH, Zhi QW, Sun MJ. (2006) Dual activities of human prolidase. Toxicol In Vitro. 20: 71-77
  4. Kurien BT, Patel NC, Porter AC, D’Souza A, Miller D, Matsumoto H, Wang H, Scofield RH. (2005) Prolidase deficiency and the biochemical assays used in its diagnosis. Anal Biochem. 349 (2): 165-75
  5. Rubino A, Pierro M, La Torretta G, Vetrella M, Di Martino D and Auricchio S. (1969) Studies on intestinal hydrolysis of peptides: II. Dipeptidase activity toward l-glutaminyl-l proline and glycyl-l-proline in the small intestine of the human fetus. Pediatr Res. 3: 313–319
  6. Davis NC. and Smith EL. (1957) Purification and some properties of prolidase of swine kidney. J Biol Chem. 224: 261–275
  7. Noren O, Dabelsteen E, Sjostrom H and Josefsson L. (1977) Histological localization of two dipeptidases in the pig small intestine and liver, using immunofluorescence. Gastroenterology. 72: 87–92
  8. Kurien BT, Porter AC, Patel NC, Kurono S, Matsumoto H and Scofield RH. (2004) Mechanized syringe homogenization of human and animal tissues. Assay Drug Dev Technol. 2: 308–312
  9. Hui KS and Lajtha A. (1978) Prolidase activity in brain: Comparison with other organs. J Neurochem. 30: 321–327
  10. Hui KS, Weiss B, Hui M, Lajtha A. (1977) Covalent coupling of calf brain prolidase. J Neurosci Res. 3: 231–239
  11. Hui KS, Lajtha A. (1978) Prolidase activity in rat brain: Developmental, regional, and subcellular distribution. Brain Res. 153: 79–85
  12. Smith EL. (1948) The peptidases of skeletal, heart, and uterine muscle. J Biol Chem. 173: 553–569
  13. Fruten JS, Smith VA, Driscoll PE. (1948) J Biol Chem. 173: 457– 469
  14. Adams E, Davis NC, Smith EL. (1954) Specificity of prolidase: Effect of alterations in the pyrrolidine ring of glycyl-l-proline. J Biol Chem. 208: 573–578
  15. Powell GF, Rasco MA, Maniscalco RM. (1974) A prolidase deficiency in man with iminopeptiduria. Metabolism. 23: 505–513
  16. Powell GF, Kurosky A, Maniscalco RM. (1977) Prolidase deficiency: Report of a second case with quantitation of the excessively excreted amino acids. J Pediatr. 91: 242–246
  17. Sheffield LJ, Schlesinger P, Faull K, Halpern BJ, Schier GM, Cotton RG, Hammond J, Danks DM. (1977) Im