Dergiler / Türk Biyokimya Dergisi / 2016 / Cilt: 41 - Sayı: 2

Mutation of AN39-1 for production and characterization of constitutive, thermostable and pH-resistant dextransucrase

Konstitutif, sıcaklığa ve pH'ya dayanıklı dekstransukrazların üretimi ve karakterizasyonu için AN39-1'in mutasyonu

Sayfa
79–86
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Ana soyun ve mutantının dekstransukrazı polietilen glikol (PEG) ile çöktürülerek saflaştırılıp karakterize edilmişlerdir.Bulgular: Mutasyon çalışmaları sonrasında, dekstransukrazı konstitütif ve yüksek miktarlarda üreten mutantlar (A26, A26-2, and A26-2/11) elde edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Leuconostoc mesenteroides AN39-1, Crataegus orientalis var.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu izolat sukrozdan dekstran sentezini gerçekleştirebilen ve indüklenebilen hücre dışı dekstransukraz (EC 2.4.1.5) üretmektedir.
💡
Sonuç & Katkı:Ana soyun ve mutantının dekstransukrazı polietilen glikol (PEG) ile çöktürülerek saflaştırılıp karakterize edilmişlerdir.Bulgular: Mutasyon çalışmaları sonrasında, dekstransukrazı konstitütif ve yüksek miktarlarda üreten mutantlar (A26, A26-2, and A26-2/11) elde edilmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Leuconostoc mesenteroides AN39-1, Crataegus orientalis var. Orientalis.'den izole edilmiştir. Bu izolat sukrozdan dekstran sentezini gerçekleştirebilen ve indüklenebilen hücre dışı dekstransukraz (EC 2.4.1.5) üretmektedir. Bu çalışmada, konstitütif üretilebilen ve sıcaklık ile pH'ya dirençli dekstransukraz sentezleyebilen mutantların elde edilmesi amaçlanmıştır.Metod: Ana soy UV, etil metan sulfonat ve Nmetil-N´-nitro-N-nitrozoguanidin ile mutasyona uğratılıp konstitütif dekstransukraz üretebilen mutantlar elde edilmeye çalışılmıştır. Ana soyun ve mutantının dekstransukrazı polietilen glikol (PEG) ile çöktürülerek saflaştırılıp karakterize edilmişlerdir.Bulgular: Mutasyon çalışmaları sonrasında, dekstransukrazı konstitütif ve yüksek miktarlarda üreten mutantlar (A26, A26-2, and A26-2/11) elde edilmiştir. Bu mutantlar (A26, A26-2, and A26-2/11) sukroz medyumda ana soya oranla sırasıyla 7.2, 8.1 ve 2.0 kat daha fazla dextransukraz aktivitesine sahiplertirler. Ayrıca, bu mutantlar glukoz medyumda, ana soyun sukroz medyumdaki aktivitesinden 3.0-5.8 kat daha fazla dekstransukraz aktivitesine sahiptirler. Mutant suşa ait enzimin ana soyun sentezlediği enzime oranla pH'ya ve ısıya daha dirençli olduğu belirlenmiştir. Mutant suşun sentezlediği enzim pH 7.5'de 35°C'ye kadar 3 saat stabildir.Sonuç: Ana soyun ve mutantının sentezlediği enzimlerin ürünü olan dekstranlar ticari boyutta üretilen B-512F dekstran ile benzer yapıdadır. Bu nedenlerle mutant suşa ait yeni üretilen dekstransukrazlar daha yüksek pH ve sıcaklıklarda daha fazla ürün elde edilmesi amacı ile endüstriyel uygulamalarda kullanılabilirler.

Abstract

Objective: Leuconostoc mesenteroides AN39-1 has recently been isolated from Crataegus orientalis var. Orientalis. It produces inducible extracellular dextransucrase (EC 2.4.1.5) forming dextran from sucrose. The aim of this study was (1) to obtain constitutive, pH-resistant and thermostable dextransucrase, (2) to characterization of these dextransucrase.Methods: Mutagenesis was carried out on the parent strain using UV, ethyl methane sulfonate, and N- methyl-N´-nitro-N-nitrosoguanidine. Dextransucrases from wild type and the mutant strain (A26-2/11) were purified by polyethylene glycol (PEG) precipitation and characterized.Results: Mutants (A26, A26-2, and A26-2/11) hyper producing and constitutive for dextransucrase were isolated. The mutants (A26, A26-2, A26-2/11) produced 7.2, 8.1, and 2.0 times more dextransucrase activity as compared to parent strain on sucrose medium, respectively. In addition, the mutants produced dextransucrase on glucose medium with higher activities (3.0-5.8 times) than what the parental strain produced on sucrose medium. The mutant enzyme (A26-2/11) was much more thermostable than the native enzyme and resistant to pH more than dextransucrase of AN39-1. The dextransucrase from mutant strain was stable up to 35°C and pH of 7.5 for 3 hr Conclusion: The structures of dextrans produced by wildtype and mutant enzymes were similar to commerciallyproduced B-512 F dextran. Thus, the newly dextransucrasesproduced by mutant strain could find industrialapplications at higher temperature and pH.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

AVCI, M. K., TANRISEVEN, A., SEZEN, İ. Y., YAMANER, Ç. (2022). Mutation of AN39-1 for production and characterization of constitutive, thermostable and pH-resistant dextransucrase. Türk Biyokimya Dergisi, Cilt: 41 - Sayı: 2, 79–86. https://ajindex.com/articles/621051

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (15)

  1. Kim D, Robyt JF. Production and selection of mutants of Leuconostoc mesenteroides constitutive for glucansucrases. Enzyme Microb Technol 1994; 16(8):659-64
  2. Kitaoka M, Robyt JF. Use of a microtiter plate screening method for obtaining Leuconostoc mesenteroides mutants constitutive for glucansucrase. Enzyme Microb Technol 1998; 22:527-31
  3. Iliev I, Vassileva T, Ignatova C, Ivanova I, Haertlé T, Monsan P, et al. Gluco-oligosaccharides synthesized by glucosyltransferases from constitutive mutants of Leuconostoc mesenteroides strain Lm 28. J Appl Microbiol 2008; 104(1):243-50
  4. Smith MR, Zahnley J, Goodman N. Glucosyltransferase Mutants of Leuconostoc mesenteroides NRRL B-1355. Appl Environ Microbiol 1994; 60(8):2723-31
  5. Robyt JF, Walseth TF. Production, purification, and properties of dextransucrase from Leuconostoc mesenteroides NRRL B-512F. Carbohydr Res 1979; 68(1):95-111
  6. Mbemba E, Chams V, Gluckman JC, Klatzmann D, Gattegno L. Molecular interaction between HIV-1 major envelope glycoprotein and dextran sulfate. Biochim Biophys Acta 1992; 1138(1):62-7
  7. Day DF, Kim DA. Novel process for the production of dextrans of selected molecular sizes. Ann NY Acad Sci 1992; 672:573-6
  8. Yamaner CI, Tanriseven A, Sezen IY. Selection of psychrotrophic Leuconostoc spp. from native fruits, and studies on their dextransucrases. Food Sci Biotechnol 2010; 19(1):175,84
  9. Purama RK, Goyal A. Identification, effective purification and functional characterization of dextransucrase from Leuconostoc mesenteroides NRRL B-640. Bioresour Technol 2008; 99(9):3635-42
  10. Mizutani N, Yamada M, Takayama K, Shoda M. Constitutive mutants for dextransucrase from Leuconostoc mesenteroides NRRL B- 512F. J Ferment Bioeng 1994; 77:248-51
  11. Miller GL. Use of dinitrosalicylic acid reagent of determination of reducing sugar. Anal Chem 1959; 3:426-8
  12. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem 1976; 72:248-54
  13. Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970; 227(5259):680-5
  14. Robyt JF, Rupendra M. Separation and quantitative determination of nanogram quantities of maltodextrins and isomaltodextrins by thin-layer chromatography. Carbohyd Res 1994; 251:187-202
  15. Kamal F, Samadi N, Assadi MM, Moazami N, Fazeli M. Mutagenesis of Leuconostoc mesenteroides and selection of dext