Dergiler / Türk Biyokimya Dergisi / 2019 / Cilt: 44 - Sayı: 6

Çocuk idrarındaki glikozaminoglikan ayrımı için moleküler olarak basılmış Akrilamid-Akrilamido Fenilboronik asit kopolimer mikroboncuklar geliştirilmesi

Development of molecularly imprinted AcrylamideAcrylamido phenylboronic acid copolymer microbeads for selective glycosaminoglycan separation in children urine

Sayfa
738–744
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Bu GAG seçici polimerler, çelik (4.6 × 1.6 mm) kolonlara basınçlı akışla dolduruldu, daha sonra baskılı GAG’lar çıkarıldı ve her bir miligram polimerin bağlanma kapasitesini hesaplamak için analiz edildi.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bu çalışmada idrarda glikozaminoglikan (Dermatan Sülfat; DS ve Kondroitin Sülfat; CS) ayrılması için sıvı kromatografi kolonları içinde moleküler olarak basılmış kopolimerler sentezlenmiştir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bulgular: Bu GAG seçici polimerler, çelik (4.6 × 1.6 mm) kolonlara basınçlı akışla dolduruldu, daha sonra baskılı GAG’lar çıkarıldı ve her bir miligram polimerin bağlanma kapasitesini hesaplamak için analiz edildi.
💡
Sonuç & Katkı:Matriks etkisi, minimum düzeyde görülmüştür.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Bu çalışmada idrarda glikozaminoglikan (Dermatan Sülfat; DS ve Kondroitin Sülfat; CS) ayrılması için sıvı kromatografi kolonları içinde moleküler olarak basılmış kopolimerler sentezlenmiştir. Gereç ve yöntem: Monomer olarak akrilamid ve akrilamido fenilboronik asit kullanıldı, negatif yüklü grupları çekmek için monomer olarak akrilamid ve şeker gruplarının çekimini güçlendirmek için şeker ve boronik asit kalıntıları arasında diol bağları oluşturmak için kullanılan akrilamido fenilboronik asit (AAPBA) kısımları kullanıldı. Bu monomerler, basınçlı kromatografik sistemler için daha dayanıklı olan muntazam küreler oluşturmak için çökeltme polimerizasyonu kullanılarak sentezlenmiştir. Trimetilolpropan trimetakrilat ve AIBN sırasıyla çapraz bağlayıcı ve starter olarak kullanıldı. Bulgular: Bu GAG seçici polimerler, çelik (4.6 × 1.6 mm) kolonlara basınçlı akışla dolduruldu, daha sonra baskılı GAG’lar çıkarıldı ve her bir miligram polimerin bağlanma kapasitesini hesaplamak için analiz edildi. GAG seçici sütunlarının kalibrasyon eğrileri 62.5 ng/mL ila 1000 ng/ mL’den az% 5 katsayılı varyasyon ve daha düşük matriks etkisinden elde edildi. Sonuç: Baskılı kolonlarımız, farklı GAG’ları idrardan seçici ve hassas bir şekilde ayırdı. Matriks etkisi, minimum düzeyde görülmüştür.

Abstract

Background: In this study, we synthesized molecularly imprinted copolymers for liquid chromatography columns as a separator for glycosaminoglycan (dermatan sulfate; DS and chondroitin sulfate; CS) in urine. Materials and methods: Acrylamide and acrylamido phenylboronic acid were used as monomers, acrylamide was used for as base monomer to attract negatively charged groups and acrylamido phenylboronic acid (AAPBA) residues used to form diol bonds between sugar and boronic acid residues to strengthen the attraction. These monomers were synthesized by using precipitation polymerization to form uniform spheres, which are more durable for the pressurized chromatographic systems. Trimethylolpropane trimethacrylate and AIBN were used as crosslinker and starter, respectively. Results: These GAG selective polymers were filled by pressurized flow into the steel (4.6 mm × 1.6 mm) columns, then imprinted GAGs were extracted and analyzed to calculate binding capacity of each milligram polymer. Calibration curves of the GAG selective columns were obtained 62.5–1000 ng/mL less than 5% coefficient variation, and lower matrix effect. Conclusion: Our imprinted columns separated different GAGs from urine specifically and sensitively. Matrix effect was at an ignorable level thus the challenging use.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

OKUTUCU, B., UYGUN, Z. O., HACİKARA, Ş., SAĞLAM, F. (2022). Çocuk idrarındaki glikozaminoglikan ayrımı için moleküler olarak basılmış Akrilamid-Akrilamido Fenilboronik asit kopolimer mikroboncuklar geliştirilmesi. Türk Biyokimya Dergisi, Cilt: 44 - Sayı: 6, 738–744. https://ajindex.com/articles/620841

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (14)

  1. Höök M, Kjellén L, Johansson S. Cell-surface glycosaminoglycans. Annu Rev Biochem 1984;53:847–69
  2. Iozzo RV, Schaefer L. Proteoglycan form and function: a comprehensive nomenclature of proteoglycans. Matrix Biol 2015;42:11–55
  3. Hitchcock AM, Yates KE, Shortkroff S, Costello CE, Zaia J. Optimized extraction of glycosaminoglycans from normal and osteoarthritic cartilage for glycomics profiling. Glycobiology 2007;17:25–35
  4. Savolainen H. Isolation and separation of proteoglycans. J Chromatogr B Biomed Sci Appl 1999;722:255–62
  5. Fuller M, Meikle PJ, Hopwood JJ. Glycosaminoglycan degradation fragments in mucopolysaccharidosis I. Glycobiology 2004;14:443–50
  6. Byers S, Rozaklis T, Brumfield LK, Ranieri E, Hopwood JJ. Glycosaminoglycan accumulation and excretion in the mucopolysaccharidoses: characterization and basis of a diagnostic test for MPS. Mol Genet Metab 1998;65:282–90
  7. Genovese F, Manresa AA, Leeming DJ, Karsdal MA, Boor P. The extracellular matrix in the kidney: a source of novel non-invasive biomarkers of kidney fibrosis? Fibrogenesis Tissue Repair 2014;7:4
  8. Afratis N, Gialeli C, Nikitovic D, Tsegenidis T, Karousou E, Theocharis AD, et al. Glycosaminoglycans: key players in cancer cell biology and treatment. FEBS J 2012;279:1177–97
  9. Kittlick PD. Inflammation, glycolytic metabolism, and glycosaminoglycans. Exp Pathol 1986;30:1–19
  10. Page C, Rose M, Yacoub M, Pigott R. Antigenic heterogeneity of vascular endothelium. Am J Pathol 1992;141:673–83. 11. van Tiel J, Siebelt M, Reijman M, Bos PK, Waarsing JH, Zuurmond A-M, et al. Quantitative in vivo CT arthrography of the human osteoarthritic knee to estimate cartilage sulphated glycosaminoglycan content: correlation with ex-vivo reference standards. Osteoarthritis Cartilage 2016;24:1012–20
  11. Wang JY, Roehrl MH. Glycosaminoglycans are a potential cause of rheumatoid arthritis. Proc Natl Acad Sci USA 2002;99: 14362–7
  12. Millington D, Zhang H, Young S, Orchard P, Tolar J, Auray-Blais C. Analysis of glycosaminoglycans in cerebrospinal fluid using tandem mass spectrometry: potential for therapeutic monitoring of patients with mucopolysaccharidoses. Mol Genet Metab 2011;102:S29–30
  13. Yang B, Chang Y, Weyers AM, Sterner E, Linhardt RJ. Disaccharide analysis of glycosaminoglycan mixtures by ultra-highperformance liquid chromatography-mass spectrometry. J Chromatogr A 2012;1225:91–8
  14. Whitley CB, Ridnour MD, Draper KA, Dutton CM, Neglia JP. Diagnostic test for mucopolysaccharidosis.