Dergiler / Turkish Journal of Medical Sciences / 2006 / Cilt: 36 - Sayı: 5

Carriage of mobilizable plasmid-mediated beta-Lactamase gene in ampicillin-resistant Escherichia coli strains with origin of normal fecal flora

Normal fekal flora kökenli ampisiline dirençli Escherichia coli suşlarında taşınabilir plazmit aracılı beta-laktamaz gen taşıyıcılığı

Sayfa
307–314
Yayın Tarihi
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: On suşun ikisinin PZR ile yalnızca TEM-tipi geni (blaTEM) taşıyıcısı olduğu bulundu ve ampisiline karşı dirençleri konjugatif olarak bir rekombinant E. coli K-12 suş C600'e aktarıldı.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bu çalışmanın amacı, insanın normal fekal florasından izole edilen ampisiline dirençli (Ampr) Escherichia coli izolatlarında β-laktamaz genlerinin taşıyıcılığının araştırılmasıydı.
📊
Temel Bulgular & Veri:Yöntemler: En az üç ay boyunca antibiyotik kullanmamış 21 sağlıklı kişinin dışkı örneklerinden izole edilen 10 Ampr E. coli suşu TEM-, SHV-, ve OXA-tipi β-laktamaz genleri açısından polimeraz zincir reaksiyonu (PZR) ile tarandı.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: On suşun ikisinin PZR ile yalnızca TEM-tipi geni (blaTEM) taşıyıcısı olduğu bulundu ve ampisiline karşı dirençleri konjugatif olarak bir rekombinant E. coli K-12 suş C600'e aktarıldı.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Bu çalışmanın amacı, insanın normal fekal florasından izole edilen ampisiline dirençli (Ampr) Escherichia coli izolatlarında β-laktamaz genlerinin taşıyıcılığının araştırılmasıydı. Yöntemler: En az üç ay boyunca antibiyotik kullanmamış 21 sağlıklı kişinin dışkı örneklerinden izole edilen 10 Ampr E. coli suşu TEM-, SHV-, ve OXA-tipi β-laktamaz genleri açısından polimeraz zincir reaksiyonu (PZR) ile tarandı. Suşların antibiyotiklere hassasiyetleri disk difüzyon metodu ile, ampisilinin suşlara karşı minimum inhibitör konsantrasyonu (MİK) agar sulandırım metodu ile belirlendi. Plazmit aktarma deneyleri sıvıda çiftleşme metodu ile yapıldı. Plazmit DNA'sı alkali lizis tekniği ile izole edildi. Hibridizasyon deneylerinde digoxygenin ile işaretli TEM-1 probu kullanıldı. Bulgular: On suşun ikisinin PZR ile yalnızca TEM-tipi geni (blaTEM) taşıyıcısı olduğu bulundu ve ampisiline karşı dirençleri konjugatif olarak bir rekombinant E. coli K-12 suş C600'e aktarıldı. Ampisilinin iki orijinal suşa ve transkonjugantlarına karşı MİK'leri >512 µg/mL olarak tespit edildi. Ayrıca, bu iki suş ve transkonjugantlarında β-laktamaz inhibitör direnci de gözlendi. Digoxygenin ile işaretli TEM-1 DNA probu TEM-geni taşıyan iki organizmadan izole edilmiş olan bazı non-konjugatif fakat taşınabilir plazmit DNA'larına hibridize oldu. Sonuç: Bu sonuçlar; barsak ortamında β-laktamaz geni taşıyan kommensal E. coli suşlarının direnç determinantlarını küçük direnç plazmitleri (R plazmit) üzerinde taşıyabildiğini ve yakın zamanda antibiyotik kullanılmasa dahi bunların toplumda direnç genlerinin potansiyel bir rezervuarı haline gelebileceğini göstermektedir.

Abstract

Aim: The aim of this study was to investigate the carriage of β-lactamase genes in ampicillin-resistant (Ampr) Escherichia coli (E. coli) isolates from human normal fecal flora. Methods: Ten Ampr E. coli strains isolated from the stool samples of 21 healthy persons with no antibiotic use during at least three months were screened for TEM-, SHV-, or OXA-type β-lactamase genes by polymerase chain reaction (PCR). The susceptibility of the strains to antibiotics was determined by disk diffusion method, and minimum inhibitory concentration (MIC) of ampicillin to the strains was determined by agar dilution method. Plasmid transfer assays were performed by broth mating technique. Plasmid DNA was isolated by alkaline lysis method. Digoxigenin-labeled TEM-1 probe was used in hybridization assays. Results: Two of 10 strains were found to be carrier for only TEM-type β-lactamase gene (blaTEM) by PCR, and their resistances to ampicillin were conjugatively transferred to a recombinant E. coli K-12 strain C600. MIC of ampicillin to two representative strains and their transconjugants was detected as >512 µg/ml. Moreover, β-lactamase inhibitor resistance was also observed in these two strains and their transconjugants. Digoxigenin-labeled TEM-1 DNA probe was hybridized to some non-conjugative but mobilizable plasmid DNAs purified from two of the TEM-gene-carrying organisms. Conclusions: These results indicate that commensal E. coli strains carrying β-lactamase gene in the bowel environment could retain resistance determinants on small-sized resistance plasmids (R plasmids) and become a potential reservoir for resistance genes in the community, even in the absence of recent antibiotic consumption.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÖZGÜMÜŞ, O. B., ERTÜRK, M., AYDIN, F., TOSUN, İ., KILIÇ, A. O. (2022). Carriage of mobilizable plasmid-mediated beta-Lactamase gene in ampicillin-resistant Escherichia coli strains with origin of normal fecal flora. Turkish Journal of Medical Sciences, Cilt: 36 - Sayı: 5, 307–314. https://ajindex.com/articles/611946

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (15)

  1. Calva JJ, Sifuentes-Osornio J, Ceron C. Antimicrobial resistance in fecal flora: longitudinal community-based surveillance of children from urban Mexico. Antimicrob Agents Chemother 1996; 40: 1699–1702
  2. Hart CA, Kariuki S. Antimicrobial resistance in developing countries. Br Med J 1998; 317: 647–650
  3. Komatsu M, Aihara M, Shimakawa K, Yamanaka T, Matsuo S. Detection of extended spectrum β-lactamases producing Enterobacteriaceae in feces. Kansenshogaku Zasshi 2000; 74: 250–258
  4. Shanahan PMA, Thomson CJ, Amyes SGB. β-lactam resistance in normal faecal flora from South Africa. Epidemiol Infect 1995; 115: 243–253
  5. Franiczek R, Sobieszczanska B, Grabowski M, Mowszet K, Pytrus T. Occurrence of extended-spectrum β-lactamases among Escherichia coli isolates from hospitalized and healthy children. Folia Microbiol 2003; 48: 243–247
  6. Infante B, Grape M, Larsson M, Kristiansson C, Pallecchi L, Rossolini GM et al. Acquired sulphonamide resistance genes in faecal Escherichia coli from healthy children in Bolivia and Peru. Int J Antimicrob Agents 2005; 25: 308–312
  7. Levin BR, Lipsitch M, Perrot V, Schrag S, Antia R, Simonsen L et al. The population genetics of antibiotic resistance. Clin Infect Dis 1997; 24: S9–16
  8. Levy S, Marshall B, Schleuderberg S, Rowe B, Davis J. High frequency of antibiotic resistance in human fecal flora. Antimicrob Agents Chemother 1988; 32: 1801–1806
  9. Österblad M, Hakanen A, Manninen R, Leistevuo T, Peltonen R, Meurman O et al. A between-species comparison of antimicrobial resistance in enterobacteria in fecal flora. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 1471–1484
  10. Komatsu M, Aihara M, Shimakawa K, Yamanaka T, Matsuo S. Detection of extended spectrum β-lactamases producing Enterobacteriaceae in feces. Kansenshogaku Zasshi 2000; 74: 250–258
  11. Baquero F, Negri MC, Morosini MI, Blazquez J. Antibioticselective environments. Clin Infect Dis 1998, 27(Suppl. 1): S5–11
  12. Livermore DM. β-lactamases in laboratory and clinical resistance. Clin Microbiol Rev 1995; 8: 557–584
  13. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests. M2-A6 Approval Standard. Wayne, Pa: NCCLS, 1997
  14. Holt JG, Krieg NR, Sneath PHA, Staley JT, Williams ST. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology. 9th ed. Baltimore: Williams and Wilkins, 1994
  15. Balows A, Hausler WJ, Herrmann KL, Isenberg HD, Shadomy HJ. Manual of clinical microbiology. 5th ed. Washington (DC): Americ