Dergiler / Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2019 / Cilt: 25 - Sayı: 2

Fenolik Ekstrakt ve Dirençli Nişastanın Escherichia coli, Streptococcus spp., Bifidobacterium ve Lactobacillus spp. Üzerine İn-vitro Antimikrobiyal Etkisi

In Vitro Antimicrobial Effect of Phenolic Extracts and Resistant Starch on Escherichia coli, Streptococcus spp., Bifidobacterium and Lactobacillus spp.

Sayfa
137–146
Yayın Tarihi
2022-10-17
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Üzüm posası ekstraktının 800, 1600 ve 3200 ppm dozları Lactobacillus spp. üremesini önlerken Bifidobacterium spp. üremesi 3200 ppm fıstık kabuğu ekstraktı ile 50 ve 100 ppm fıstık kabuğu ekstraktı ile birlikte dirençli nişasta uygulamaları haricinde tüm uygulamalarda arttı.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışma Üzüm Posası Ekstraktının, Fıstık Kabuğu Ekstraktının ve Nar Posası Ekstraktının Dirençli Nişasta ile birlikte veya ayrı olarak in vitro şartlarda mide mikroflorası bileşenlerine bir prebiyotik olarak antimikrobiyal etkilerini araştırmak amacıyla yapılmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu amaçla, dirençli nişasta (Fibersol 2), üzüm posası, fıstık kabuğu ve nar posası elde edilerek ekstraktları hazırlandı.
💡
Sonuç & Katkı:Üzüm posası ekstraktının 800, 1600 ve 3200 ppm dozları Lactobacillus spp. üremesini önlerken Bifidobacterium spp. üremesi 3200 ppm fıstık kabuğu ekstraktı ile 50 ve 100 ppm fıstık kabuğu ekstraktı ile birlikte dirençli nişasta uygulamaları haricinde tüm uygulamalarda arttı.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışma Üzüm Posası Ekstraktının, Fıstık Kabuğu Ekstraktının ve Nar Posası Ekstraktının Dirençli Nişasta ile birlikte veya ayrı olarak in vitro şartlarda mide mikroflorası bileşenlerine bir prebiyotik olarak antimikrobiyal etkilerini araştırmak amacıyla yapılmıştır. Bu amaçla, dirençli nişasta (Fibersol 2), üzüm posası, fıstık kabuğu ve nar posası elde edilerek ekstraktları hazırlandı. Ekstraktlardaki fenolik miktarını belirlemek amacıyla Folin-Ciocalteu metodu kullanıldı. Minimum inhibe edici konsantrasyon metodu kullanılarak Escherichia coli, Streptococcus spp., Lactobacillus spp. ve Bifidobacterium spp. etkenlerine karşı ekstraktlar ± dirençli nişastanın antimikrobiyal etkisi araştırıldı. Nar posasının toplam tanin ve fenolik bileşikleri diğerlerinden daha fazlaydı. Minimum inhibe edici konsantrasyon sonuçları, 1600 ve 3200 ppm düzeyindeki fıstık kabuğu ekstraktının E. coli üremesini inhibe ettiğini gösterdi. Dirençli nişastayla birlikte Streptococcus’u büyüme inhibisyonu 400 ppm dilusyonda gerçekleşti. Streptococcus dirençli nişastayla birlikte 50, 100 ve 200 ppm fıstık kabuğu ekstraktı uygulamasında üremedi. Üzüm posası ekstraktının 800, 1600 ve 3200 ppm dozları Lactobacillus spp. üremesini önlerken Bifidobacterium spp. üremesi 3200 ppm fıstık kabuğu ekstraktı ile 50 ve 100 ppm fıstık kabuğu ekstraktı ile birlikte dirençli nişasta uygulamaları haricinde tüm uygulamalarda arttı.

Abstract

The present study aimed to evaluate the antimicrobial activity of Grape Pomace Extract (GPE), Pistachio Peel Extract (PsPE), andPomegranate Pomace Extract (PPE) with or without Resistant Starch (RS) as a prebiotic on gut microflora representative’s in vitroconditions. For this purpose, the Resistant Starch (Fibersol2), grape pomace, pistachio peel, and pomegranate pomace were providedand the extracts of by-products were prepared. Folin-Ciocalteu method was used to determine the total phenolic content of extracts.The antimicrobial activity of extracts ± Resistant Starch against Escherichia coli, Streptococcus spp., Lactobacillus spp. and Bifidobacteriumspp. were evaluated using Minimum Inhibitory Concentration (MIC) method. The total tannin and phenolic compounds of pomegranatepomace were more than the others. The results of MIC showed that 1600 and 3200 ppm of pistachio peel extract inhibited the E. coligrowth. The growth inhibition of Streptococcus spp. by Resistant Starch was equal to 400 ppm dilution. Streptococcus did not grow in50, 100, and 200 ppm of pistachio peel extract + Resistant Starch treatment. The dilution of 800, 1600, and 3200 ppm of grape pomaceextract could prevent the growth of Lactobacillus spp., while Bifidobacterium increased in all treatments dilution except in 3200 ppmpistachio peel extract and 50 and 100 ppm pistachio peel extract + resistant starch.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

MAHDAVI, A., JABEHDAR, S. K., STAJI, H., AGHJEHGHESHLAGH, F. M., NAVIDSHAD, B. (2022). Fenolik Ekstrakt ve Dirençli Nişastanın Escherichia coli, Streptococcus spp., Bifidobacterium ve Lactobacillus spp. Üzerine İn-vitro Antimikrobiyal Etkisi. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 25 - Sayı: 2, 137–146. https://ajindex.com/articles/569891

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (3)

  1. Puupponen-Pimia R, Aura AM, Oksman-Caldentey KM, Myllarinen P, Saarela M, Mattila-Sandholm T, Poutanen K: Development of functional ingredients for gut health. Trends Food Sci Technol, 13, 3-11, 2002. DOI: 10.1016/S0924-2244(02)00020-1
  2. Nitiema LW, Savadogo A, Simpore J, Dianou D, Traore AS: In vitro antimicrobial activity of some phenolic compounds (Coumarin and Quercetin) against gastroenteritis bacterial strains. Int J Microbiol Res, 3 (3): 183-187, 2012. DOI: 10.5829/idosi.ijmr.2012.3.3.6414 Abah SE, Abah G: Antimicrobial and antioxidant potentials of Agaricus bisporus. Adv Biol Res, 4 (5): 277-282, 2010.
  3. Silvan JM, Mingo E, Hidalgo M, de Pascual-Teresa S, Carrascosa AV, Martinez-Rodriguez AJ: Antibacterial activity of a grape seed extract and its fractions against Campylobacter spp. Food Control, 29, 25-31, 2013. DOI: 10.1016/j.foodcont.2012.05.063 Turnbaugh PJ, Ley RE, Mahowald MA, Magrini V, Mardis ER, Gordon JI: An obesity-associated gut microbiome with increased capacity for energy harvest. Nature, 444 (7122): 1027-1031, 2006. DOI: 10.1038/ nature05414 Gengaihi SE, Ella FMA, Emad MH, Shalaby E, Doha H: Antioxidant activity of phenolic compounds from different grape wastes. J Food Process Technol, 5:296, 2014. DOI: 10.4172/2157-7110.1000296 Scalbert A, Williamson G: Dietary intake and bioavailability of polyphenols. J Nutr, 130, 2073S-2085S, 2000. DOI: 10.1093/jn/130.8.2073S Kutschera M, Engst W, Blaut M, Braune A: Isolation of catechinconverting human intestinal bacteria. J Appl Microbiol, 111, 165-175, 2011. DOI: 10.1111/j.1365-2672.2011.05025.x Sagdic O, Ozturk I, Kisi O: Modeling antimicrobial effect of different grape pomace and extracts on S. aureus and E. coli in vegetable soup using artificial neural network and fuzzy logic system. Expert Syst Appl, 39, 6792-6798, 2012. DOI: 10.1016/j.eswa.2011.12.047 Tomaino A, Martorana M, Arcoraci T, Monteleone D, Giovinazzo C, Saija A: Antioxidant activity and phenolic profile of pistachio (Pistacia vera L., variety Bronte) seeds and skins. Biochimie, 92, 1115-1122, 2010. DOI: 10.1016/j.biochi.2010.03.027 Li Y, Guo C, Yang J, Wei J, Xu J, Cheng S: Evaluation of antioxidant properties of pomegranate peel extract in comparison with pomegranate pulp extract. Food Chem, 96, 254-260, 2006. DOI: 10.1016/j.foodchem. 2005.02.033 Fuentes-Zaragoza E, Riquelme-Navarrete MJ, Sanchez-Zapata E, Perez-Alvarez JA: Resistant starch as functional ingredient: A review. Food Res Int, 43, 931-942. 2010. DOI: 10.1016/j.foodre