Dergiler / Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2018 / Cilt: 24 - Sayı: 6

Laktasyon Döneminde Karbofurana Maruz Kalan Yavru Farelerde (Mus musculus) Beyin Hücreleri Ölümü

Brain Cells Death on Infant Mice (Mus musculus) Caused by Carbofuran Exposure During the Lactation Period

Sayfa
845–852
Yayın Tarihi
2022-10-18
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Özellikle kontrol ve tedaviye tabi tutulan yavruların MDA, ChE ve Purkinje hücrelerinin nekrozunda tutarlı değişiklikler bulunmuş, tedavi grupları arasında arasında ise herhangi bir değişiklik olmadığı tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:İnsektisit karbofurana maruz kalmanın farelerin beyinlerinde reaktif oksijen türleri (ROS) ürettiği bildirilmiştir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışma, anneleri karbofurana maruz bırakılan ve anne sütü emen farelerde malondialdehid (MDA), kolinesteraz (ChE), nekroz ve apoptozis düzeyleri incelenerek oluşan oksidatif hasar ile biyokimyasal ve histopatolojik değişiklikleri değerlendirmek amacıyla yapılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Özellikle kontrol ve tedaviye tabi tutulan yavruların MDA, ChE ve Purkinje hücrelerinin nekrozunda tutarlı değişiklikler bulunmuş, tedavi grupları arasında arasında ise herhangi bir değişiklik olmadığı tespit edilmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

İnsektisit karbofurana maruz kalmanın farelerin beyinlerinde reaktif oksijen türleri (ROS) ürettiği bildirilmiştir. Bu çalışma, anneleri karbofurana maruz bırakılan ve anne sütü emen farelerde malondialdehid (MDA), kolinesteraz (ChE), nekroz ve apoptozis düzeyleri incelenerek oluşan oksidatif hasar ile biyokimyasal ve histopatolojik değişiklikleri değerlendirmek amacıyla yapılmıştır. Fareler (n=27) karbofurana, oral yoldan, doğumdan sonraki 1. günden 4. güne kadar 0.0208 mg/kg ve 0.0417 mg/kg BW dozlarında maruz bırakıldı. Altı günlük yavruların beyin MDA ve ChE düzeyleri yanı sıra, Tunel testi ve hematoksilen-eozin (HE) boyaması kullanılarak nekrotik ve apoptotik Purkinje hücre sayısı incelendi. Annelerin karbofurana maruz kalması, MDA düzeylerinde artışa, Purkinje hücrelerinin nekrozuna ve ChE’de azalmaya neden oldu, ancak emen yavrularda belirgin bir apoptoz gözlenmedi. Özellikle kontrol ve tedaviye tabi tutulan yavruların MDA, ChE ve Purkinje hücrelerinin nekrozunda tutarlı değişiklikler bulunmuş, tedavi grupları arasında arasında ise herhangi bir değişiklik olmadığı tespit edilmiştir. Sonuç olarak, anne sütü yoluyla karbofuran zehirlenmesi, emen yavrularda oksidatif stres, biyokimyasal ve histopatolojik değişiklikler ile sonuçlanmıştır.

Abstract

An exposure to insecticide carbofuran has been reported able to generate a reactive oxygen species (ROS) in mice brains. This study wasundertaken to evaluate the oxidative damage, biochemical and histopathological alterations by respectively examining malondialdehyde(MDA), cholinesterase (ChE) levels, necrosis and apoptosis in the suckling mice whose mothers were exposed to the carbofuran. Thecarbofuran was exposed via an oral route at the doses of 0.0208 mg/kg and 0.0417 mg/kg BW from the first until the fourth postnatal dayafter the delivery (n=27). The six-day-old pups were examined for its brain’s MDA and ChE levels as well as the necrotic and apoptotic Purkinjecell were counted using the Tunel assay and hematoxylin-eosin (HE) staining. The mothers’ exposure to carbofuran caused an increase inMDA levels, necrosis of Purkinje cells and a decrease in ChE, but there was no significant apoptosis in lactating pups. Carbofuran alteredthe level of the marker parameters related to the MDA, ChE and necrosis of Purkinje cells. Consistent changes were found in MDA, ChE andnecrosis of Purkinje cells of the subjected pups, especially between the control and treatment groups, and there was no change betweentreatments. In conclusion, the transfer of carbofuran intoxication through the mother’s milk resulted in the oxidative stress, biochemical andhistopathological alterations in the suckling pups.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BAHOO, M. L. A., YUSTINASARI, L. R., WIDJIATI, W. (2022). Laktasyon Döneminde Karbofurana Maruz Kalan Yavru Farelerde (Mus musculus) Beyin Hücreleri Ölümü. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 24 - Sayı: 6, 845–852. https://ajindex.com/articles/569778

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (3)

  1. Yawno T, Castillo-Melendez M, Jenkin G, Wallace EM, Walker DW, Miller SL: Mechanisms of melatonin-induced protection in the brain of late gestation fetal sheep in response to hypoxia. Dev Neurosci, 34, 543- 551, 2012. DOI: 10.1159/000346323 Ikonomidou C, Kaindl AM: Neuronal death and oxidative stress in the developing brain. Antioxid Redox Signal, 14, 1535-1550, 2011. DOI: 10.1089/ars.2010.3581 Indraningsih: Pengaruh penggunaan insektisida karbamat terhadap kesehatan ternak dan produknya. Wartazoa, 18, 101-114, 2008.
  2. Yunus J, Sari DCR: Efek neuroprotektif vitamin D terhadap jumlah sel Purkinje cerebellum yang diinduksi etanol. Mutiara Medika, 12, 63-71, 2012. Martin LJ: Mitochondrial and cell death mechanisms in neurodegenerative diseases. Pharmaceuticals (Basel), 3, 839-915, 2010. DOI: 10.3390/ph3040839 Trump BF, Berezesky IK, Chang SH, Phelps PC: The pathways of cell death: Oncosis, apoptosis, and necrosis. Toxicol Pathol, 25, 82-88, 1997. DOI: 10.1177/019262339702500116 Milatovic D, Gupta RC, Dekundy A, Montine TJ, and Dettbarn WD: Carbofuran-induced oxidative stress in slow and fast skeletal muscles: Prevention by memantine and atropine. Toxicology, 208, 13-24. 2005. DOI: 10.1016/j.tox.2004.11.004 Keller JN, Mattson MP: Roles of lipid peroxidation in modulation of cellular signaling pathways, cell dysfunction, and death in the nervous system. Rev Neurosci, 9 (2): 105-116, 1998. DOI: 10.1515/ REVNEURO.1998.9.2.105 Resende RR, Adhikari A: Cholinergic receptor pathways involved in apoptosis, cell proliferation and neuronal differentiation. Cell Commun Signal, 7:20, 2009. DOI: 10.1186/1478-811X-7-20 Torrão AS, Britto LRG: Neurotransmitter regulation of neural development: Acetylcholine and nicotinic receptors. An Acad Bras Ciênc, 74, 453-461, 2002. DOI: 10.1590/S0001-37652002000300008 Launder JM, Schambra UB: Morphogenetic roles of acetylcholine. Environ Health Perspect, 107 (Suppl.-1): 65-69, 1999. DOI: 10.1289/ ehp.99107s165 Tang J, Carr RL, Chambers JE: Changes in rat brain cholinesterase activity and muscarinic receptor density during and after repeated oral exposure to chlorpyrifos in early postnatal development. Toxicol Sci, 51, 265-272, 1999. DOI: 10.1093/toxsci/51.2.265 Mehta A, Verma RS, Srivastava N: Chlorpyrifos-induced alterations in rat brain acetylcholinesterase, lipid peroxidation and ATPases. Indian J Biochem Biophys, 42 (1): 54-58. 2005.
  3. Yang ZP, Dettbarn WD: Diisopropylphosphorofluoridate-induced cholinergic hyperactivity and lipid peroxi