KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Hacettepe Journal of Biology and Chemistry / 2018 / Cilt: 46 - Sayı: 2

Yeni İzole Ediilmiş Trichoderma Citrinoviride’den Lipaz Üretiminin Saptanması

Detection of Lipase Production from Newly Isolated Trichoderma Citrinoviride

Nilüfer CİHANGİR
Muhammed Hasan AKYIL
Sayfa
229–235
Yayın Tarihi
2022-10-17
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Alternative karbon kaynağı olarak melas ortamında üretilen Trichoderma citrinoviride’den lipaz verimi de tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada yeni izole edilmiş bir fungustan lipaz üretimi amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Fungus Kocaeli bölgesinden topraktan izole edilmiştir. 18S rRNA analizi sonucu Trichoderma citrinoviride olarak saptanmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Alternative karbon kaynağı olarak melas ortamında üretilen Trichoderma citrinoviride’den lipaz verimi de tespit edilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışmada yeni izole edilmiş bir fungustan lipaz üretimi amaçlanmıştır. Fungus Kocaeli bölgesinden topraktan izole edilmiştir. 18S rRNA analizi sonucu Trichoderma citrinoviride olarak saptanmıştır. Lipaz üretimi için çeşitli parametreler ve besiyeri bileşenleri araştırılmıştır. Sırasıyla, glikoz ve pepton en uygun karbon ve azot kaynağı olarak bulunmuştur. Karbon kaynağı olarak uygun yağı tespit edilmesi için, üretim ortamına çeşitli yağlar eklenmiştir. Zeytinyağının Trichoderma citrinoviride’den lipaz üretimi için en uygun yağ olduğu bulunmuştur. pH 5.5, sıcaklık 30°C ve 4 günlük inkübasyon süresi lipaz üretimi için en uygun inkübasyon koşulları olarak bulunmuştur. Alternative karbon kaynağı olarak melas ortamında üretilen Trichoderma citrinoviride’den lipaz verimi de tespit edilmiştir.

Abstract

The production of lipase is aimed from a new fungal source in this study. Fungus was isolated from soil locality Kocaeli. It was determined as Trichoderma citrinoviride by the analysis of 18S rRNA sequence. Various parameters and media components were investigated for production of lipase. Glucose and peptone were found to be most suitable carbon and nitrogen source, respectively. To determine the suitable oil as carbon source, various oils were added to the production medium. Olive oil was found to be the optimal oil for lipase production from Trichoderma citrinoviride. pH 5.5, temperature 30°C and incubation time for 4 days were found to be optimal incubation conditions for lipase production. We also determined lipase yield from Trichoderma citrinoviride which is produced in molasses medium as an alternative carbon source.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

CİHANGİR, N., AKYIL, M. H. (2022). Yeni İzole Ediilmiş Trichoderma Citrinoviride’den Lipaz Üretiminin Saptanması. Hacettepe Journal of Biology and Chemistry, Cilt: 46 - Sayı: 2, 229–235. https://ajindex.com/articles/529077

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (12)

  1. L. Toscano, G. Montero, L. Cervantes, M. Stoytcheva, V. Gochev, and M. Beltrán, Production and partial characterization of extracellular lipase from Trichoderma harzianum by solid-state fermentation, Biotechnol. Biotechnol. Equip., 27 (2013)3776–3781
  2. S. Kumar, K. Kikon, A. Upadhyay, S.S. Kanwar, R. Gupta, Production, purification, and characterization of lipase from thermophilic and alkaliphilic Bacillus coagulans BTS-3, Protein Expr. Purif., 41 (2005) 38– 44. U. Açıkel and M. Erşan, Acid phosphatase production by Rhizopus delemar: a role played in the Ni(II) bioaccumulation process, J. Hazardous Materials, 184 (2010) 1-3.
  3. A. Sugihara, T. Tani, Y. Tominaga, Purification and characterization of a novel thermostable lipase from Bacillus sp., J. Biochem., 109 (1991) 211–216.
  4. D.G. Hatzinikolaou, J.B. Macris, P. Christakopoulos, D. Kekos, F.N. Kolisis, G. Fountoukidis, Production and partial characterisation of extracellular lipase from Aspergillus niger, Biotechnol. Lett. 18 (1996) 547–552.
  5. E. Sirisha, N. Rajasekar, M.L. Narasu, Isolation and optimization of lipase producing bacteria from oil contaminated soils, Adv. sin Biol. Res., 4 (2010) 249– 252. M.Y. a. Samad, C.N. a. Razak, A.B. Salleh, W.M. Zin Wan Yunus, K. Ampon, and M. Basri, A plate assay for primary screening of lipase activity, J. Microbiol. Meth., 9 (1989) 51–56.
  6. D. Kumar, L. Kumar, S. Nagar, C. Raina, R. Parshad, V.K. Gupta, Screening, isolation and production of lipase/ esterase producing Bacillus sp. strain DVL2 and its potential evaluation in esterification and resolution reactions, Arch. Appl. Sci. Res., 4 (2012) 1763–1770.
  7. A.I. Krastanov, V.K. Gochev, T.D. Girova, Nutritive medium dependent biosynthesis of extracellular laccase from Trichoderma spp., Bulg. J. Agric. Sci., 13 (2007) 349–355.
  8. M.A. Kashmiri, A. Adnan, B. W. Butt, Production, purification and partial characterization of lipase from Trichoderma viride, African J. Biotechnol., 5 (2006) 878–882.
  9. M. Kahyao, Ğ. Lu, V. Konar, Şeker Fabrikası Atık Maddeleri Kullanılarak Pseudomonas aeruginosa’dan Ramnolipit Biyosürfektan Elde Edilmesi, 18 (2006) 493–498.
  10. G. J. Samuels, Trichoderma: a review of biology and systematics of the genus, Mycol. Res., 100 (1996) 923–935.
  11. K. Kuhls, E. Lieckfeldt, T. Borner, E. Gueho, Molecular reidentification of human pathogenic Trichoderma isolates as Trichoderma longibrachiatum and Trichoderma citrinoviride., Med. Mycol., 37 (1999) 25–33.
  12. T. Andrade Marques, C. Baldo, D. Borsato, J. Batista Buzato, M. Anto