Dergiler / Hacettepe Journal of Biology and Chemistry / 2020 / Cilt: 48 - Sayı: 4

Yaprak ya da Gövde DNA’sı: Dianthus L. DNA Barkod Analizi için Dört Ticari Ekstraksiyon Kitinin Karşılaştırması

DNA from Leaf or Stem: A Comparative Work on Dianthus L. for DNA Barcoding Analysis with Four Commercial Extraction Kits

Sayfa
333–339
Yayın Tarihi
2022-10-17
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Tüm ekstraksiyon kitleri PCR amplifikasyonu bakımından başarılı olmasına rağmen en yüksek verim GeneMATRIX kiti kullanılarak elde edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:GeneAll GenExTM Plant kiti, GeneMATRIX Plant & Fungi DNA Purification kiti, DNeasy Plant kiti ve E.Z.N.A.
📊
Temel Bulgular & Veri:Sonuçlar, DNA barkodlama çalışmalarında kullanılabilecek PCR başarısı bakımından değerlendirilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Tüm ekstraksiyon kitleri PCR amplifikasyonu bakımından başarılı olmasına rağmen en yüksek verim GeneMATRIX kiti kullanılarak elde edilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

GeneAll GenExTM Plant kiti, GeneMATRIX Plant & Fungi DNA Purification kiti, DNeasy Plant kiti ve E.Z.N.A. Plant DNA kiti yaprak ve gövde dokusu DNA barkodlama çalışmaları için kaliteli ve yüksek genomik DNA elde etmek amacıyla test edilmiştir. Geleneksel olarak yaprak dokusu genomik DNA kaynağı olarak kullanılmaktadır fakat Dianthus taksonları yaprak sklerankima dokusu nedeniyle bu bakımdan sorunludur. Genomik DNA, üretici firmaların sağladığı protokole göre elde edilmiştir ve yedi barkod bölgesi PCR yöntemiyle çoğaltılmıştır. İzole edilen DNA konsantrasyonu florometrik yöntemle ölçülmüş, PCR ürünleri agaroz jelde görüntülenmiştir. Sonuçlar, DNA barkodlama çalışmalarında kullanılabilecek PCR başarısı bakımından değerlendirilmiştir. Ayrıca, kullanılan ekstraksiyon kitleri iş gücü, fiyat ve zaman bakımından değerlendirilmiştir. Sonuçlarımıza göre, yaprak ve gövde dokusundan genomik DNA ekstraksiyonu başarıyla gerçekleştirilmiştir. Tüm ekstraksiyon kitleri PCR amplifikasyonu bakımından başarılı olmasına rağmen en yüksek verim GeneMATRIX kiti kullanılarak elde edilmiştir.

Abstract

Four widely used DNA extraction kits, GeneAll GenExTM Plant kit, GeneMATRIX Plant & Fungi DNA Purification kit, DNeasyPlant kit and E.Z.N.A. Plant DNA kit, were compared using leaf and stem tissues of Dianthus specimens to isolate highyield and quality genomic DNA for DNA barcoding. Traditionally, leaves are used as a main source of genomic DNA but extractingDNA from Dianthus leaves might be more difficult because of sclerenchymatic tissues. Genomic DNA was extractedbased on manufacturers’ protocols and amplified for seven barcode regions by PCR. DNA concentrations were measuredusing fluorometer and the quality of DNA and PCR products were showed on agarose gel. Amplification results were evaluatedin terms of Polymerase Chain Reaction (PCR) success for DNA barcoding research. Additionally, comparisons betweenthe efficiency of commercial kits were discussed in terms of cost, labor and time-consuming. Results presented here, DNAextraction carried out from both stem and leaves of Dianthus specimens successfully. Although, all kits performed well forPCR amplification, GeneMATRIX was found the best efficient kit for isolating high quality DNA of Dianthus specimens usedin the study for leaf and stem tissues.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

AYDIN, Z. U., ŞENOVA, M. K., DÖNMEZ, A. A., KOCH, M. A. (2022). Yaprak ya da Gövde DNA’sı: Dianthus L. DNA Barkod Analizi için Dört Ticari Ekstraksiyon Kitinin Karşılaştırması. Hacettepe Journal of Biology and Chemistry, Cilt: 48 - Sayı: 4, 333–339. https://ajindex.com/articles/528976

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (17)

  1. Z. Xin, J. Chen, A high throughput DNA extraction method with high yield and quality, Plant Methods, 8 (2012) 26
  2. M.P. Griffith, M. Porter, Back to the basics: A simple method of DNA extraction for mucilaginous cacti, Bradleya, 21 (2003) 26-28
  3. J.F. Manen, O. Sinitsyna, L. Aeschbach, A.V. Marlov, A fully automatable enzymatic method for DNA extraction from plant tissues, BMC Plant Biol. Rep., 5 (2005) 23
  4. S. Bashalkhanov, O.P. Rajora, Protocol: A high-throughput DNA extraction system suitable for conifers, Plant Methods, 4 (2008) 20
  5. J. Steenkamp, I. Wild, A. Lourens, P. Van Helden, Improved method for DNA extraction from Vitis vinifera, Am. J. Enol. Vit., 45 (1994) 102-106
  6. S.M. Aljanabi, I. Martinez, Universal and rapid salt-extraction of high quality genomic DNA for PCR based techniques, Nucleic Acids Res., 25 (1997) 4692-4693
  7. X. Xu, S. Kawasaki, T. Fujimura, C. Wang, A protocol for high throughput extraction of DNA from rice leaves, Plant Mol. Biol. Rep., 23 (2005) 291-295
  8. E. Sözen, I. Poyraz, Rapid and high quality DNA isolation from Origanum onites for RAPD and ISSR analysis, Z Naturforsch C, 63c (2008) 595-598
  9. D. Yin, H. Liu, X. Zhang, D. Cui, A protocol for extraction of high-quality RNA and DNA from peanut plant tissues, Mol. Biotechnol., 49 (2011) 187-191
  10. S.D. Fehlberg, J.M. Allen, K. Church, A novel method of genomic DNA extraction for Cactaceae, Appl. Plant Sci., 1 (2013)
  11. Ç. Karaaslan, H. Akel, S. Ünlü, I. Perçin, Comparison of six commercial DNA extraction kits for DNA extraction from wheat, Hacettepe J. Biol. Chem., 42 (2014) 395-400
  12. İ. Poyraz, An efficient DNA isolation method from Nigella sativa L. (Ranunculaceae) seeds for RAPD and ISSR analysis, Bilecik Şeyh Edebali Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, 1 (2014) 2148-2330
  13. V.A. Scobeyeva, D.O. Omelchenko, L.M. Dyakov, A.S. Konovalov, A.S. Speranskaya, A.A. Krinitsina, Comparison of some plant DNA extraction methods, Russ. J. Genet., 5 (2018) 54
  14. J.J. Doyle, J.L. Doyle, A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue, Phytochemical Bulletin, 19 (1987) 11-15
  15. D.E. Pearse, K.A. Crandall, F.S.T. Beyond, Analysis of population genetic data for conservation, Conserv. Genet., 5 (2004) 585-602
  16. J. Anerao, V. Jha, N. Desai, Optimization of DNA Extraction Methods from Garcinia species for ISSR-PCR, RAPD-PCR and DNA Barcoding, Asian J. Biotechnol., 9 (2017) 35-42
  17. M. Akkurt, Comparison between modified DNA extra